Um die Subarachnoidalblutung oder das SAB-Modell zu erstellen, führen Sie eine Mikroinjektionsnadel in die suprasellare Zisterne einer anästhesierten Ratte ein. Injizieren Sie mit einer Spritzenpumpe autologes Blut aus der Schwanzarterie der Ratte in die suprasellare Zisterne. Implantieren Sie nun eine weitere Nadel in die rechte laterale Hirnkammer an den angegebenen Koordinaten.
Injizieren Sie bei den SAH-Modellen 0,2 Milliliter Rattenschwanz-Arterienblut. Für die SHAM-Gruppen injizieren Sie das gleiche Volumen isotonischer Kochsalzlösung. Nach der Enthauptung wird das gesamte Gehirn der Ratte entnommen und in eiskalte künstliche Gehirn-Rückenmarks-Flüssigkeit (ACSF) getaucht.
Bereiten Sie mit einem Vibratom akute Hirnschnitte von 200 Mikrometern und eiskaltem, äquilibriertem ACSF vor. Legen Sie die Hirnschnitte auf ein Nylonnetz, das in äquilibriertes ACSF in einer Speicherkammer bei 35 bis 37 Grad Celsius eingetaucht ist.
