Nachdem Sie die Paraffinabschnitte der Niere und das Peyer-Pflaster vorbereitet haben, die aus Immunglobulin A- oder IgA-Nephropathie-Modellmaus isoliert wurden, fahren Sie fort, den gewünschten Paraffinabschnitt mit periodischer saurer Lösung bei Raumtemperatur für 10 Minuten zu entwachsen und zu färben, wobei Sie Lichteinwirkung vermeiden. Spülen Sie den Abschnitt mit destilliertem Wasser ab, bevor Sie ihn trocken tupfen. Anschließend färben Sie den Trockenbereich 20 bis 30 Minuten lang mit der Schiff'schen Färbelösung und vermeiden Sie dabei Lichteinwirkung.
Spülen Sie den Schnitt mit destilliertem Wasser ab, bis er unter dem Mikroskop rot erscheint. Tauchen Sie den gespülten Abschnitt drei Minuten lang in Hämatoxylin-Färbelösung, um die Zellkerne zu färben, und spülen Sie ihn dann unter fließendem Wasser ab, bis der Schnitt farblos wird. Nach der routinemäßigen Dehydrierung mit Xylol- und Ethanolgradienten versiegeln Sie den Schnitt mit neutralem Gummi, um ihn unter einem Mikroskop zu untersuchen.
Im Vergleich zur Kontrollgruppe weist das Mausmodell der mukosalen Immun-induzierten IgA-Nephropathie eine sichtbare IgA-Ablagerung in der gesamten Mesangialregion auf. Die PAS-Färbung des Nierengewebes zeigte in der Modellgruppe eine Mesangialzellproliferation und Stromahyperplasie, die in der Dioscinsondengruppe reduziert war.
