Befestigen Sie zunächst das Mikrolaufwerk auf einer Kopfkappe. Befestigen Sie alle drei Schrauben am Mikroantriebssystem. Senken Sie die Siliziumsonde mit der Schraubsteuerung am Mikroantrieb ab und drehen Sie sie alle 1 bis 2 Sekunden, bis die Einheiten an der Array-Spitze beobachtet werden.
Sobald die Neuronen beobachtet sind, ziehen Sie die eine Umdrehung des Mikroantriebs zurück, um die Eintrittsgeschwindigkeit der Elektrode zu verringern, während sie sich durch die Silastic und Dura in das kortikale Gewebe bewegt. Fahren Sie das Array langsam weiter in den Kortex und bewegen Sie sich 4 bis 6 Umdrehungen über 20 bis 30 Minuten, bis die Neuronen gleichmäßig über die Länge der Sonde verteilt sind. Ziehen Sie dann das Array langsam um 1 bis 2 Umdrehungen zurück, um den Druck auf das Gewebe zu verringern.
Nachdem die Aufzeichnung abgeschlossen ist, ziehen Sie das Array langsam mit einer ähnlichen Geschwindigkeit wie beim ersten Einfügen aus dem Kortex zurück. Sobald keine Neuronen mehr auf der Sonde sichtbar sind, ziehen Sie das Array schneller zurück, bis es in die vollständig eingefahrene Ausgangsposition zurückkehrt. Nachdem Sie die Sonde aus der Aufnahmekammer entfernt haben, weichen Sie sie 20 Minuten lang in Kontaktlinsenlösung ein, um Gewebe oder Blut zu entfernen.
Legen Sie die Sonde eine Minute lang in Alkohol, um die Kontaktlinsenlösung zu entfernen und die Elektrode trocknen zu lassen. Die durch Kilosort erhaltenen Spike-sortierten Array-Daten zeigten, dass sich die Hauptkomponentenmerkmale ausgewählter Spitzen in einem Cluster von Hintergrundspitzen unterschieden, was die Stabilität der Aufzeichnung im Laufe der Zeit bestätigte. Die Zuverlässigkeit der X-Y-Positionierung zeigte eine 70,8%ige Überlappung der mittleren HF-Positionen zwischen zwei Sitzungen im Abstand von einer Woche.
Präzise Bewegungen des Netzhautthemenraums wurden in einer Reihe von Aufnahmesitzungen beobachtet, die die MT- und MTC-Grenzen mit geringfügigen Positionsänderungen überquerten.
