Positionieren Sie zunächst den Mikrofluidik-Chip auf dem Massenphotometerhalter und messen Sie die Massenphotometrieprobe. Öffnen Sie nach Abschluss der Datenerfassung die Datenanalysesoftware. Um eine Datei zur Analyse zu laden, klicken Sie auf das Plus-Symbol oben links und wählen Sie die MP-Calibrant-Datei aus.
Die Software beginnt mit der Analyse der Datei und die benötigte Zeit kann je nach Dateigröße und Messanzahl variieren. Um die Masse zu kalibrieren, klicken Sie auf die Schaltfläche Massenkalibrierung erstellen, die sich unten rechts befindet. Es erscheint ein Dialogfenster mit einer Tabelle mit den Kontrastwerten der angepassten Peaks.
Ändern Sie die Tabellenwerte so, dass sie mit den bekannten Massenwerten für die angepassten Peaks übereinstimmen. Klicken Sie dann auf Speichern. Die neue Kalibrierungsdatei wird im Massenkalibrierungsfenster unten links in der Datenanalysesoftware angezeigt.
Um eine Beispieldatei hinzuzufügen, klicken Sie auf das Plus-Symbol oben links und wählen Sie die MP-Beispieldatei aus. Um ein Massenhistogramm zu erstellen, navigieren Sie zur Registerkarte Analyse, wählen Sie den Histogrammmodus und wählen Sie die Option Massendiagramm. Passen Sie die Behälterbreite, die Massengrenzen und andere notwendige Parameter nach Bedarf an.
Passen Sie die Handlung auf der Registerkarte "Zahlen" nach Bedarf weiter an. Exportieren Sie nach der Anpassung die Abbildungen, oder speichern Sie den gesamten Arbeitsbereich als DMP-Datei. Die massenphotometrischen Messungen mit manueller Verdünnung ergaben ein Massenhistogramm, bei dem die beiden größten Peaks ungebundenen FcRn-Monomeren und Immunglobulin-G-Antikörpermonomeren entsprachen.
Außerdem wurden zwei zusätzliche Peaks bei 196 und 251 Kilodalton deutlich beobachtet, was Immunglobin-G-FcRn-Komplexen mit einer zu eins- und einer zu zwei-Stöchiometrie entspricht.
