Aufzeichnung der synchronen elektrophysiologischen Aktivität und der Kalziumaktivität in Mäusen in vivo

Implantieren Sie zunächst die Aufzeichnungselektroden und injizieren Sie die entsprechenden Viren in den Schädel der Maus. Nachdem Sie die Mäuse betäubt haben, verbinden Sie die optischen Fasern nacheinander in der Reihenfolge der Aufnahmestelle, bevor Sie den Kopftisch einsetzen. Stellen Sie dann den 635-Nanometer-Lichtimpuls mit einem Tastverhältnis von 10 % bei 20 Hertz ein und stellen Sie die Lichtstimulation während der Aufnahme auf 10 Sekunden ein.

Stellen Sie die Intensität an den Glasfaserspitzen auf drei Milliwatt ein. Verwenden Sie als Nächstes ein Faserphotometriesystem, um Gcamp6m-Signale während des Verhaltenstests aufzuzeichnen. Gleichzeitig erfassen Sie Kalziumsignale, lokale Feldpotentiale und Elektroenzephalogramme unter optogenetischer Stimulation sowie entsprechende Verhaltensleistungen.

Verwenden Sie schließlich das Tagging der Transistor-Transistor-Logiksignalsynchronisation, um die zeitliche Konsistenz der aufgezeichneten Daten sicherzustellen. Eine kurze optogenetische Stimulation löste nach der Entlassung eine robuste Stimulation aus, zusammen mit einem bemerkenswerten Anstieg der Kalziumaktivitäten in den Zielhirnregionen. In der optostimulierenden Regio wurde eine 30-Hertz-Reaktion beobachtet, die durch die Aktivierung optogenetischer Proteine über Blaulicht-LED induziert wurde.