Die Elektrische Impedanz-Myographie ist eine nicht oder minimal-invasive Technik zur Beurteilung des Muskelzustands. Es liefert einen quantitativen Index der Muskelgesundheit, der als diagnostisches Werkzeug oder Biomarker dient. Die Technik ist also quantitativ, schnell und erfordert keine detaillierte Bildanalyse, so dass sie als praktischer Biomarker für den Krankheitsstatus in einer therapeutischen Studie dienen kann.
Ein weiterer nützlicher Aspekt der elektrischen Impedanz-Myographie ist, dass sie empfindlich auf die meisten Arten von Skelettmuskelpathologie reagiert. Abnormale elektrische Impedanz Myographiewerte können zugrunde liegende histologische Veränderungen aufdecken. Für Oberflächenmessungen muss die Haut gut vorbereitet werden.
Man muss sich mit dem Auftreten von Kontaktimpedanzartefakten vertraut machen und bei Bedarf nachmessen. Um zu beginnen, legen Sie die Maus in Bauchlage auf die Bank, nachdem Sie das Fehlen einer Reaktion während des Zehenklemmtests bestätigt haben. Platzieren Sie das zu analysierende Bein des Tieres in einem 45-Grad-Winkel mit ausgestrecktem Knie und sichern Sie den Fuß mit medizinischem Klebeband.
Schneiden Sie das Fell, das den Musculus Gastrocnemius überlagert, mit einer Haarschneidemaschine ab und tragen Sie eine dicke Schicht Enthaarungscreme für eine Minute auf die Haut des Tieres auf. Entfernen Sie das Enthaarungsmittel mit der salzhaltigen gesättigten Gaze und wiederholen Sie diesen Vorgang bis zu dreimal, bis das gesamte Fell, das den Gastrocnemius-Muskel überlagert, entfernt ist. Verbinden Sie das Oberflächenarray mit dem Gerät für elektrische Impedanzmyographie und lassen Sie die Elektroden auf einem in Kochsalzlösung getränkten Stück Gaze ruhen.
Platzieren Sie die Oberflächenanordnung direkt auf der Haut, über dem Musculus gastrocnemius, der längs zu den Muskelfasern ausgerichtet ist. Überprüfen Sie, ob der richtige Kontakt besteht, indem Sie überprüfen, ob alle Balken in der Software grün angezeigt werden und die Widerstands-, Reaktanz- und Phasenwerte von 50 Kilohertz stabil sind. Erfassen Sie dann die Messungen der elektrischen Impedanzmyographie.
Drehen Sie die Oberflächenanordnung um 90 Grad und positionieren Sie sie auf der Haut über dem Gastrocnemius, um die Quermessungen zu erhalten. Verbinden Sie das Nadelarray mit dem Gerät für elektrische Impedanzmyographie und lassen Sie das Elektrodenarray in einem Wiegeboot mit Kochsalzlösung ruhen. Überprüfen Sie dann die Konnektivität und Signalstabilität.
Platzieren Sie die Nadelanordnung in einer Längsposition im Vergleich zu den my-Fasern und drücken Sie sie fest in die Haut, bis alle Nadeln die Haut und den darunter liegenden Muskel bis zum Kunststoffschutz auf dem Array durchdringen. Erfassen Sie die Daten. Entfernen Sie das Array vorsichtig und führen Sie es in einem 90-Grad-Winkel relativ zur ersten Messung in Querrichtung wieder durch die Haut und in den Muskel ein.
Erfassen Sie dann diese Daten. Für die Ex-vivo-Angiographie mit elektrischer Impedanz bereiten Sie die ex-vivo-dielektrische Zelle vor, geben Kochsalzlösung in die Kammer und verbinden die Zelle mit dem Gerät für die elektrische Impedanzmyographie, um die Referenzwerte zu erhalten. Legen Sie den Gastrocnemius-Muskel auf eine Zahnwachsschicht und schneiden Sie ihn mit einer Rasierklinge in einem Lineal, um einen 10 Millimeter mal 10 Millimeter großen Schnitt für Ratten zu erhalten.
Und fünf Millimeter mal fünf Millimeter Schnitt für Mäuse aus der Mitte des Musculus gastrocnemius. Legen Sie den Gastrocnemius vorsichtig mit einer Pinzette in die dialektrischen Zellen und stellen Sie sicher, dass die Fasern längs ausgerichtet sind und der Muskel vollständig mit den Metallelektroden in Kontakt steht. Befestigen Sie den oberen Teil der dialektrischen Zelle und führen Sie zwei monopolare Nadeln von 26 Gauge in die beiden Löcher ein.
Verbinden Sie die Drähte des elektrischen Impedanzmyographiegeräts mit der Ex-vivo-Zelle in der im Manuskript angegebenen Reihenfolge. Erfassen Sie dann die Längsmessung. Öffnen Sie die dialektrische Zelle und orientieren Sie den Muskel in Querrichtung neu, indem Sie ihn um 90 Grad drehen.
Befestigen Sie die Oberseite der dialektrischen Zelle wieder und erfassen Sie die Quermessung. Elektrische Impedanzmyographie kann unter vielen Bedingungen mit Oberflächen-in-vivo-Arrays, Nadel-in-vivo-Arrays und ex vivo-Dialektzellen durchgeführt werden. Repräsentative Kurven für die Oberfläche E I M werden für Phase, Reaktanz und Widerstand für longitudinal in transversalen Messungen gezeigt.
Einige Unregelmäßigkeiten, die typischerweise mit Kontaktproblemen zusammenhängen, können zu Extremwerten führen, die bei niedrigen Frequenzen beobachtet werden. Ein Diagramm, das die Reaktanz als Widerstandsfunktion sowie Längs- und Querrichtungen zeigt, wird angezeigt. Eine gute Hautvorbereitung ist entscheidend für Oberflächenmessungen.
Es kann kein Fell mehr übrig bleiben. Wiederholen Sie die Fellentfernung, Kochsalzlösung und Messung, wenn ein Kontaktartefakt identifiziert wird. Die Elektrische Impedanz-Myographie ermöglicht eine verbesserte Beurteilung des Krankheitsstatus und der Therapieeffekte in Nagetiermodellen und beschleunigt die Identifizierung vielversprechender neuer Therapien für die Behandlung neuromuskulärer Erkrankungen.
