Modelos y métodos para evaluar el transporte de Drug Delivery Systems a través de barreras celulares

Resumen

Muchas aplicaciones terapéuticas requieren un transporte seguro y eficiente de los portadores de fármacos y sus cargas a través de barreras celulares en el cuerpo. En este artículo se describe una adaptación de los métodos establecidos para evaluar la tasa y el mecanismo de transporte de nanovehículos drogas (NCS) a través de barreras celulares, tales como el tracto gastrointestinal (GI) epitelio.

Resumen

Portadores Sub-micrométricas (Nanocarriers; CN) mejorar la eficacia de los medicamentos mediante la mejora de la solubilidad, estabilidad, tiempo de circulación, la orientación, y la liberación. Además, atravesar las barreras celulares en el cuerpo es crucial tanto para la administración oral de los CN terapéuticos en la circulación y el transporte de la sangre a los tejidos, donde se necesita la intervención. NC transporte a través de barreras celulares se logra mediante: (i) la ruta paracelular, a través de la interrupción transitoria de las uniones que se entrelazan las células adyacentes, o (ii) la ruta transcelular, donde los materiales son internalizados por endocitosis, transportados a través del cuerpo celular, y secretada en la superficie de la célula opuesta (transyctosis). Entrega a través de barreras celulares puede facilitarse mediante el acoplamiento de la terapéutica o de sus portadores con agentes de direccionamiento que se unen específicamente a los marcadores de la superficie celular implicadas en el transporte. Aquí, ofrecemos métodos para medir el alcance y el mecanismo de transporte de Carolina del Norte a través de una barrera de células modelo, WHICH consta de una monocapa de gastrointestinal (GI) las células epiteliales cultivadas en una membrana porosa situada en un inserto Transwell. La formación de una barrera de permeabilidad se confirmó mediante la medición de la resistencia transepitelial eléctrica (TEER), el transporte transepitelial de una sustancia de control, y la inmunotinción de las uniones estrechas. Como un ejemplo, se utilizan 200 ~ CN polímero nm, y que llevan una carga terapéutico y están recubiertos con un anticuerpo que se dirige a un determinante de la superficie celular. El anticuerpo terapéutico o de carga se marca con ^125I para el rastreo de radioisótopos y los CN marcados se añaden a la cámara superior sobre la monocapa de células durante períodos variables de tiempo. NCs asociados a las células y / o transportados a la cámara subyacente puede ser detectado. Medición de free ¹²⁵ I permite la sustracción de la fracción de degradado. La ruta paracelular se evalúa mediante la determinación de cambios potenciales causados ​​por el transporte del NC para los parámetros de barrera descritas anteriormente. Transcelular i transportes determinar examinando el efecto de la modulación de la endocitosis y transcitosis vías.

Introducción

Barreras celulares en el cuerpo actúan como una puerta de enlace entre el ambiente externo y compartimentos internos. Este es el caso para el revestimiento epitelial que separa la superficie expuesta externamente del tracto gastrointestinal (GI) y el torrente sanguíneo ^1-3. Barreras celulares también representan la interfaz entre el torrente sanguíneo y el parénquima y componentes celulares de los tejidos y órganos. Este es el caso para el revestimiento endotelial interior en los vasos sanguíneos, tales como la barrera sangre-de pulmón, la barrera sangre-cerebro, etc ¹ La capacidad de atravesar estas barreras celulares en el cuerpo es crucial para la entrega eficaz de los agentes terapéuticos y de diagnóstico en la circulación y tejidos / órganos donde se necesita la intervención.

Para mejorar el suministro de agentes terapéuticos o de diagnóstico, estos compuestos se pueden cargar en nanovehículos sub-micrométricos (NCS). Estos vehículos de administración de fármacos se pueden formular con una variedad dequímicas y estructuras para optimizar la solubilidad del fármaco, la protección, la farmacocinética, la liberación y el metabolismo ^{de 4,5.} CN también se puede funcionalizar con afinidad o restos de direccionamiento (por ejemplo, anticuerpos, péptidos, azúcares aptámeros, etc) para facilitar la adhesión a las áreas del cuerpo donde se requiere la acción terapéutica ^2,6. Focalización de los Comités Nacionales de los determinantes expresados ​​en la superficie de las barreras celulares puede facilitar aún más el transporte en y / oa través de estos forros de ^2,6.

El papel de transportar selectivamente sustancias entre dos entornos requiere ciertas características únicas entre las capas de células. Una de estas características es la polaridad celular, por lo que la membrana apical dirigida a la luz de las cavidades varía desde la membrana basolateral orientada hacia el intersticio de tejido, con respecto a la morfología de la membrana y la composición de los lípidos, transportistas y receptores ^2. Otra característica implica junctio intercelularns conectan células adyacentes. La regulación de las proteínas que forman las uniones estrechas, moléculas de adhesión sobre todo de unión (mermeladas), occludins y claudins, modulan la función de barrera para permitir o no el transporte de sustancias entre las células, conocidas como el transporte paracelular, que permite el paso de materiales desde la luz a el espacio basolateral ^3. La unión de muchos elementos naturales y sintéticos (leucocitos, moléculas, partículas y sistemas de administración de fármacos) a barreras celulares en el cuerpo puede inducir la apertura de células-unión, que puede ser transitoria y relativamente inocuo o más prolongada y, por lo tanto, peligroso con el acceso de sustancias no deseadas a través de la barrera ^2,5,7-9. Por consiguiente, esta vía se puede evaluar mediante la medición de la resistencia eléctrica transepitelial (TEER) y la difusión paracelular pasiva de las moléculas (en este documento denominado fugas paracelular), por lo que la disminución de la resistencia a una corriente eléctrica o el aumento de las fugas paracelular de un INEcompuesto rt en el espacio basolateral indican apertura de los cruces de células, respectivamente ^5,10,11. Para complementar estos métodos, cualquiera de las proteínas de unión estrecha enumerados anteriormente se puede teñir para evaluar su integridad, donde la tinción debe aparecer concentrada en las fronteras de célula-célula todo alrededor de la periferia de la célula ^5,10,12.

Alternativamente, los sistemas de administración de fármacos que se dirigen a los determinantes específicos de la superficie celular, tales como los asociados a depresiones revestidas de clatrina o invaginaciones de membrana forma de matraz llamadas caveolas, pueden desencadenar la captación vesicular en células por endocitosis, proporcionando una vía para la administración de fármacos a los compartimentos intracelulares ^{5, 13.} Además, la endocitosis puede conducir a tráfico de vesículas de todo el cuerpo de la célula para la liberación en el lado basolateral, un fenómeno conocido como transyctosis, o el transporte transcelular ^14. Por lo tanto, el conocimiento de la cinética y el mecanismo de endocitosis puede ser utilizado para explotar un intracelularND administración de fármacos transcelular, que ofrece un modo relativamente seguro y controlado de entrega en comparación con la ruta paracelular. (Endocitosis, tales como el caso de la molécula de adhesión celular (CAM)-mediada) El mecanismo de la endocitosis se puede evaluar con moduladores de la vía clásica (clatrina y la endocitosis mediada por caveolina, y macropinocitosis) o rutas no clásicos ^5,13,15 .

Considerando que el tráfico intracelular se estudia a menudo en pozos o cubreobjetos estándar, la ausencia de un compartimento basolateral se opone a la polarización celular y la capacidad de estudiar el transporte a través de capas de células. Para superar este obstáculo, el transporte a través de monocapas de células se ha estudiado durante mucho tiempo el uso de insertos Transwell ^10,11,16,17, que consisten en una cámara superior (apical), una membrana permeable poroso donde las células se unen y forman una monocapa apretado, y una menor (basolateral) cámara (Figura 1). En esta configuración, el transporte se puede medir en el-apical a basolateral dirección mediante la administración de un tratamiento en la cámara superior, después del transporte a través de la monocapa de células y la membrana porosa subyacente, y finalmente recoger el medio en la cámara inferior para la cuantificación de material transportado. Transporte en la dirección basolateral a apical también se puede medir por la administración inicial a la cámara inferior y la recogida posterior de la cámara superior ^5,10,12,16. Existen diversas técnicas para verificar la formación de barrera de permeabilidad en los cultivos polarizados, incluyendo la TEER y ensayos de transporte paracelular, como se describió anteriormente. Además, el filtro permeable en el que se cultivan las células se puede quitar para análisis de imágenes (por ejemplo, por fluorescencia, confocal, microscopía electrónica), como una validación adicional del modelo de monocapa celular, así como el mecanismo de transporte. La selección del tipo de membrana, que está disponible en diferentes tamaños de poros, materiales, y áreas de superficie, depende de varios factors, tales como el tamaño de las sustancias u objetos a ser transportados, tipo de célula, y el método de formación de imágenes ^16,18-20. Transwell inserciones también facilitan la cuantificación controlada y precisa de transporte en comparación con los sistemas de mamíferos complejos, como volúmenes de las cámaras y el área de superficie de la célula son constantes conocidas. Mientras que se eliminan muchos factores involucrados en la entrega en vivo, incluyendo la presencia de moco intestinal, tensión de cizallamiento, enzimas digestivas, las células inmunes, etc, esta pequeña escala modelo in vitro proporciona información preliminar útil en materia de transporte.

Como ejemplo para ilustrar la adaptación de estos métodos para estudiar el transporte NC a través de barreras celulares ^10,11,16,17, describimos aquí un caso en que el potencial de transporte NC a través del epitelio GI fue modelado mediante la evaluación de paso de un modelo de administración de fármacos sistema a través de una monocapa de células Caco-(2) células de adenocarcinoma colorrectal epitelial humana. Para este propósito, Cells se cultivaron en insertos Transwell, en un 0,8 micras de poro de tereftalato de polietileno (PET) filtro (6,4 mm de diámetro), que es transparente y puede ser utilizado para obtener imágenes de microscopía. El estado de la barrera de permeabilidad se valida mediante la medición de la TEER, el transporte apical a basolateral de una sustancia de control, la albúmina, y la visualización microscopía de fluorescencia de un elemento de las uniones estrechas, la proteína ocludina. Se utiliza un modelo de polímero específica Carolina del Norte, que consta de 100 nm, las nanopartículas de poliestireno no biodegradables. CN están recubiertas por adsorción superficial con un anticuerpo dirigido solo o una combinación de un anticuerpo dirigido y una carga terapéutica, donde cualquiera de los componentes puede ser marcado con ^125I para el rastreo de radioisótopos. En el ejemplo seleccionado, el anticuerpo reconoce molécula de adhesión intercelular-1 (ICAM-1), una proteína expresada en la superficie de células epiteliales GI (y otros), células que se ha demostrado para facilitar intracelular y transcelular o transporte portadores de fármacos f y sus cargas ^21. La carga es la alfa-galactosidasa (α-Gal), una enzima terapéutica utilizada para el tratamiento de la enfermedad de Fabry, una enfermedad de depósito lisosomal genética ^22.

Los CN recubiertos, de alrededor de 200 nm de tamaño, se añaden a la cámara apical sobre la monocapa de células y se incubaron a 37 ° C durante períodos variables de tiempo, después de lo cual ¹²⁵ I en los CN puede ser detectada asociada a la monocapa de células y / o transportados a la cámara basolateral por debajo de las células. Determinación adicional de free ¹²⁵ I permite la sustracción de la fracción degradada y la estimación de los transportes recubierto NC. El mecanismo de transporte se evaluó adicionalmente mediante el examen de los cambios en la permeabilidad de la barrera perteneciente a la ruta paracelular, a través de los parámetros descritos anteriormente, mientras que el transporte transcelular se determina mediante el examen de los cambios en el transporte cuando la modulación de las vías de endocitosis y transcitosis.

ontenido "> Estos métodos proporcionan información valiosa acerca de los modelos de barrera celular, el alcance y la velocidad de transporte de un sistema de administración de medicamentos, y el mecanismo de este tipo de transporte, lo que en conjunto la evaluación de las posibilidades de la administración de fármacos a través de barreras celulares.

Protocolo

1. El cultivo de una monocapa de células en Transwell inserciones

1. En un nivel de bioseguridad 2 células campana de cultivo estéril, coloque 0,8 mm de poro PET Transwell inserciones en una placa de 24 pocillos (4 pozos por condición, para la significación estadística) con fórceps. Todos los materiales que entran en la campana deben ser esterilizadas con etanol.

Nota: El tamaño de poro del filtro tiene que ser seleccionado de acuerdo con el tamaño medio de la NC utilizado, para permitir el transporte a través de la membrana. Además, para obtener resultados estadísticamente significativos, cada condición experimental requiere un mínimo de cuatro repeticiones (pozos) dentro del mismo experimento, y un mínimo de 3 experimentos independientes.

2. Preparar medio de cultivo celular que contiene medio DMEM suplementado con 4,5 g / L de glucosa, suero bovino fetal al 15%, y 1% pen-strep, y el calor a 37 ° C en un baño de agua.
3. Diluir adenocarcinoma colorrectal epitelial humana (Caco-2) células en medio celular y el lugar200-400 l de la solución de células en el (apical) cámara superior del inserto Transwell, a una densidad de 1,5 x 10 ⁵ células / cm ^2. Llene el (basolateral) cámara baja con 700 a 900 l de medio celular.
4. Células de cultivo a 37 ° C, 5% de CO _2, y 95% de humedad durante 16-21 días, reemplazando el medio en la cámara superior e inferior, cada 3-4 días, utilizando los volúmenes indicados en el paso 1.3. Reemplazar medio en el orden siguiente para mantener la presión por encima de (en vez de debajo) de la monocapa de células: Aspirar el medio desde la cámara inferior, aspirar el medio de la cámara superior, llenar la cámara superior con medio fresco, y llenar la cámara inferior con medio fresco.

2. Validación de la GI epitelial Permeabilidad Barrera Usando resistencia eléctrica transepitelial (TEER) y La inmunotinción de uniones estrechas

1. Para el almacenamiento a corto plazo (menos de 2 semanas), se sumergen los electrodos en una solución STX100 electrolitoción (0,1-0,15 M KCl o NaCl). Conectar el cable del electrodo al electrodo de puerto en el metro EVOM voltios-ohmios de modo que el sistema es internamente en cortocircuito y la simetría del electrodo se mantiene. Para el almacenamiento a largo plazo, enjuagar con dH ₂ O y almacenar en una condición seco y oscuro.
2. Para esterilizar los electrodos, se sumergen en etanol durante 15 minutos y dejar secar al aire durante 15 segundos. Alternativamente, los electrodos pueden ser almacenados en una campana de UV. Enjuagar los electrodos en una solución estéril de electrolito (solución salina tampón de fosfato, PBS) o solución M de KCl o NaCl 0,1-0,15, antes de cada medición de la resistencia.
3. Con el medidor de voltios-ohmios establece en el ajuste de la resistencia, colocar verticalmente electrodos en un pozo que contiene el inserto Transwell, con el electrodo corto en la cámara superior y el largo electrodo en la cámara inferior de tocar la parte inferior del pozo. Una vez que la lectura se estabilice EVOM, registre el valor de la resistencia (dado en ohmios; Ω) para cada pozo.
4. Calcular la resistividad (resistance normalizó a la zona; Ω × ² cm) de las muestras de restar la resistencia de fondo (TEER de insertos transwell sin células) y multiplicando por área de superficie de la membrana. Los valores de resistividad son más a menudo en la literatura. (Véase el debate)
5. Repetir las mediciones cada 1-2 días hasta que la TEER valores de aumento de hasta un máximo y meseta, indicando la formación de una barrera de permeabilidad, que típicamente toma de 2-3 semanas desde el momento de Platting celular. Valores y el tiempo necesario para lograr la integridad de la barrera Meseta TEER pueden variar en función del número de pases celulares.
6. Para verificar la presencia de uniones estrechas en monocapas de células con alta TEER (igual o por encima del valor umbral para la formación de la barrera), fijar las células por incubación con frío 2% de paraformaldehído durante 15 min. A continuación, lavar las células con PBS y se incuban durante 30 min a temperatura ambiente con 1 mg / ml de anti-ocludina. Lavar las células de nuevo con PBS y se incuban durante 30 min a temperatura ambiente con 7,5 g / ml fanticuerpos secundarios luorescently marcados. Utilice pozos con bajo TEER como un control negativo para la formación de la barrera.

Nota: Como sustituto para el anti-ocludina, se pueden usar anticuerpos frente a proteínas de unión estrecha alternativos.

7. Escindir con cuidado la membrana de filtro en la que se adjunta la monocapa fijo, y montar en portaobjetos para formación de imágenes utilizando epifluorescencia o microscopía confocal.

3. Evaluar Transepitelial Transporte de Portadores focalizados

1. Marcar el anticuerpo (anticuerpo de ratón monoclonal contra ICAM-1, anti-ICAM, en este ejemplo) que apunta con ¹²⁵ I, como se ha descrito previamente ^7. Utilice ensayo de Bradford para estimar la concentración de proteínas y un contador gamma para determinar ^125I contenido en el anticuerpo, a continuación, calcular la actividad específica en cuentas por minuto (CPM) / mg de anticuerpo marcado.

Nota: Para el control de la especificidad, returba el procedimiento mediante el etiquetado de IgG de ratón, que se utiliza para preparar los CN recubiertos no dirigidas. Para estudiar el transporte de una carga terapéutica, repita el procedimiento de etiquetado de la carga, por ejemplo, alfa-galactosidasa (α-Gal) en este ejemplo. Las alternativas pueden ser utilizados para el agente de dirección, el control no específico, o de carga terapéutica. Los métodos alternativos también pueden ser utilizados para etiquetar compuestos y estimar la concentración de los homólogos marcados.

2. Acoplar el marcado objetivo de anticuerpos (anti-ICAM en nuestro ejemplo) a la superficie de los Comités Nacionales. En este ejemplo, incubar nanobeads de poliestireno (diámetro 100 nm) durante 1 hora a temperatura ambiente con ¹²⁵ I-anti-ICAM para permitir la adsorción superficial, tal como se describe ^7.

Nota: Para el control no específica utilizar ^125I-IgG. Para rastrear el transporte de una carga, utilice una combinación de focalización de anticuerpos y ¹²⁵ de carga que llevan la etiqueta (α-Gal en nuestro ejemplo).

3. Se centrifuga a 13.000 g durante 3 min y retirar las contrapartes no-revestidos en el sobrenadante por aspiración. Resuspender el sedimento que contiene los CN recubiertos usando 1% de albúmina de suero bovino (BSA) en PBS mediante pipeteo, y se somete a ultrasonidos a baja potencia para interrumpir agregados de partículas potenciales (20-30 breves pulsos).
4. Para la caracterización de Carolina del Norte, medir el tamaño, la polidispersidad, y ζ-potencial de partículas recubiertas utilizando dispersión dinámica de luz (siguiendo las instrucciones del proveedor), y cuantificar el número de marcado con ^125I de metas de moléculas de anticuerpo (por ejemplo anti-ICAM) en la superficie de la partícula usando un contador gamma.

Nota: Estos métodos se pueden repetir para las contrapartes no específicas y terapéuticas. El tamaño de partículas recubiertas oscila alrededor de 200 nm.

5. Añadir ¹²⁵ CN I-anticuerpo (por ejemplo, ¹²⁵ I-anti-ICAM NCs; 56 nCi / ml) a la cámara superior por encima de confluentes Caco-2 monocapas con la TEER y# 8805; 350 Ω × ² cm (ver Discusión) sobre el fondo (16 a 21 días después de la siembra). Incubar a 37 ° C durante uno o más de tiempo deseado intervalos. Mida TEER (Sección 2.3), antes y después de la incubación para evaluar los efectos de los Comités Nacionales sobre la permeabilidad de la barrera.

Nota: Este procedimiento se puede repetir para las contrapartes no específicas y terapéuticas.

6. Recoger medio de las cámaras superior e inferior y lavar una vez con 0,5 ml de DMEM a 37 ° C (cámara superior) o 1 ml dH ₂ O (cámara baja). Recoger los lavados para la medición del contenido total de radioisótopo utilizando un contador gamma.
7. Para la medición de la fracción de células, escindir el filtro permeable, por ejemplo, utilizando una hoja de afeitar para cortar alrededor de los bordes, y se incuba en un tubo contador gamma con 1% de Triton X-100 durante 10 min (para liberar el contenido de celdas), antes de la medición de células total asociada a la radiactividad.
8. Para medir ¹²⁵ me rearrendado de los CN durante el transporte o debido a la degradación potencial, primera mezcla 300 l de muestra (de las fracciones superiores, inferiores o celulares) con 700 l de BSA al 3% en PBS y 200 l de ácido tricloroacético (TCA). Incubar a temperatura ambiente durante 15 min. Mientras tanto este tiempo, medir la radiactividad total de esta muestra en un contador gamma.
9. Centrifugar las muestras de TCA en 3000 xg durante 5 minutos para separar la proteína intacta (gránulo) de la proteína degradada o ^125I fracción (sobrenadante). Cuantificar la radiactividad de la fracción libre de ^125I y restar este valor de la radioactividad total medida antes de la centrifugación. Esto proporcionará la cantidad de proteína marcada que no se degrada.

4. Mecanismo de Transepitelial Transporte de Nanocarriers focalizados

1. Etiqueta albúmina con ^125I como se describe en la Sección 3.1 y se informó anteriormente ^7.

Nota: La albúmina es un 66,5kDa de proteínas y, por lo tanto, una sustancia relativamente grande. Aunque un control válido para el transporte pasivo de objetos más grandes (por ejemplo, 200 nm CN usado aquí), que debe ser sustituido con moléculas de trazador inerte más pequeñas cuando se estudia el transporte de portadores de fármacos más pequeños (véase la discusión).

2. Para evaluar el transporte paracelular utilizando albúmina de fugas paracelular, de cultivo de Caco-2 monocapas sobre Transwell inserciones como se describió anteriormente.
3. Para el medio de cámara superior por encima de la monocapa de células, añadir ya sea solo ¹²⁵ I-albúmina (control negativo que muestra el nivel basal de fugas), o ¹²⁵ CN anticuerpos dirigidos I-albúmina y no radiomarcados (como se describe en la Sección 3.5). Se incuba a 37 ° C para el intervalo de tiempo seleccionado (s), que debe coincidir con los examinados al probar el transporte NC. Mida TEER (Sección 2.3) antes, durante y después de la incubación, se recogen todas las fracciones para el total de ¹²⁵ I y ¹²⁵ I gratuitas mediciones como se indica. en la Sección 3 Nota: adición concomitante de ¹²⁵ de control de la I-albúmina y no radiomarcado CN IgG puede ser utilizado como un control.
4. Como control positivo para la apertura de las uniones intercelulares, añadir medios de células que contiene 5 mM de H ₂ O ₂ a las cámaras superior e inferior de la pieza de inserción Transwell, y se incuba a 37 ° C durante 30 min. Luego, mida TEER (Sección 2.3) y añadir ¹²⁵ I-albúmina a la cámara superior de los intervalos de tiempo seleccionados. Medir la TEER en varios puntos de tiempo a lo largo de la incubación para identificar la TEER decaimiento valor causada por H ₂ O ₂ inducida por la apertura de las uniones de las células.
5. En experimentos paralelos, evaluar el transporte transcelular, también llamado transcitosis, de ¹²⁵ corresponsales nacionales orientados I incubando confluentes Caco-2 monocapas, ya sea con 50 monodansylcadaverine M (MDC; inhibidor de la endocitosis mediada por clatrina), 1 mg / ml filipin (inhibidor de caveolar endocitosis mediada), Wortmann 0,5 Men (inhibidor de la fosfatidilinositol 3 quinasa [PI3K], que participan en macropinocitosis), o 20 mM [5 - (N-etil-N-isopropil) amilorida] (EIPA, inhibidor de macropinocitosis y endocitosis mediada por CAM ^15).

Nota: ¹²⁵ I-IgG de los CN y ¹²⁵ I-albúmina pueden ser utilizados como controles negativos para el efecto de estos inhibidores, y otros métodos (por ejemplo, técnicas de siRNA) pueden proporcionar una inhibición más selectiva.

6. Medir la TEER (Sección 2.3) antes, durante, y después de la incubación de las células con inhibidores y materiales radiomarcados, como un control adicional para el efecto de los inhibidores de la permeabilidad monocapa.

Resultados

Como validación de nuestro modelo celular para estudiar el transporte transepitelial de los CN dirigidos, la Figura 2 muestra que Caco-2 monocapas de células en placas a una densidad de 1,5 × 10 ⁵ células / cm ² alcanzado la confluencia ~ Día 12 y se mantienen la integridad de la monocapa hasta el día 18, indicado por la TEER (Figura 2A). Este fue validado por la presencia de uniones estrechas ocludina-positivo (Figura 2B) en monocapas con al...

Discusión

Usando los métodos discutidos más arriba, un modelo celular para el estudio de transporte de los CN dirigidos a través de barreras celulares se puede establecer, por ejemplo, el ejemplo proporcionado para Caco-2 células epiteliales, lo cual es relevante para la evaluación de transporte desde el lumen GI a la sangre en el caso de los sistemas de administración de fármacos orales. El cultivo de las monocapas de células epiteliales GI en insertos Transwell activar la medición de la TEER y fluorescencia inmunotinci...

Materiales

Name	Company	Catalog Number	Comments
Transwell inserts	BD Falcon	353095
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM), 1x	Cellgro	10-013-CM
Fetal Bovine Serum (FBS)	Cellgro	35-015-CV
Pen Strep	Gibco	15140
Human epithelial colorectal adenocarcinoma (Caco-2) cells	ATCC	HTB-37TM
125Iodine	Perkin Elmer	NEZ033H002MC	Radioactive hazard
Phosphate Buffer Saline (PBS)	Gibco	14190-235
Bovine Serum Albumin (BSA)	Equitech Bio	BAH-66
Paraformaldehyde (16%)	Fisher Scientific	15710
Mouse Immunoglobulin G (IgG)	Jackson ImmunoResearch	015-000-003
Mouse monoclonal antibodies to human ICAM-1 (anti-ICAM)	Marlin 1987
α-Galactosidase, from green coffee beans	Sigma	G8507-25UN
FITC latex beads, 100 nm	Polysciences, Inc.	17150
Triton X-100	Sigma	234729-500ML
Trichloroacetic acid (TCA)	Fisher Scientific	SA433-500
Occludin antibody (Y-12), goat polyclonal anti-human	Santa Cruz Biotechnology	Sc-27151
Monodansylcadaverine (MDC)	Sigma	D4008
Filipin	Sigma	F9765
5-(N-ethyl-N-isopropyl) amiloride (EIPA)	Sigma	A3085
Wortmannin	Sigma	W1628
Gamma counter	Perkin Elmer	Wizard2
Volt-ohm meter	World Precision Instruments	EVOM2
TEER electrodes	World Precision Instruments	STX100	Electrodes available for different well-plates
Dynamic Light Scattering (DLS)	Malvern	Nano-ZS90