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* Estos autores han contribuido por igual
Presentamos un protocolo detallado para la microscopía correlativa de luz y electrónica posterior a la inclusión de Epon utilizando una proteína fluorescente llamada mScarlet. Este método puede mantener la fluorescencia y la ultraestructura simultáneamente. Esta técnica es susceptible de una amplia variedad de aplicaciones biológicas.
La microscopía correlativa de luz y electrónica (CLEM) es una microscopía integral que combina la información de localización proporcionada por la microscopía de fluorescencia (FM) y el contexto de la ultraestructura celular adquirida por la microscopía electrónica (EM). CLEM es un compromiso entre fluorescencia y ultraestructura y, por lo general, la ultraestructura compromete la fluorescencia. En comparación con otras resinas de inclusión hidrofílicas, como el metacrilato de glicidilo, HM20 o K4M, Epon es superior en propiedades de conservación y seccionamiento de la ultraestructura. Anteriormente, habíamos demostrado que mEosEM puede sobrevivir a la fijación de tetróxido de osmio y a la inclusión de Epon. Usando mEosEM, logramos, por primera vez, Epon post embeding CLEM, que mantiene la fluorescencia y la ultraestructura simultáneamente. Aquí, proporcionamos detalles paso a paso sobre la preparación de la muestra EM, las imágenes FM, las imágenes EM y la alineación de la imagen. También mejoramos los procedimientos para identificar la misma célula fotografiada por imágenes FM durante la imagen EM y detallamos el registro entre las imágenes FM y EM. Creemos que se puede lograr fácilmente la microscopía electrónica y de luz correlativa posterior a la inclusión de Epon siguiendo este nuevo protocolo en instalaciones EM tradicionales.
La microscopía de fluorescencia (FM) se puede utilizar para obtener la localización y distribución de la proteína diana. Sin embargo, se pierde el contexto que rodea a la proteína diana, lo cual es crucial para investigar a fondo la proteína diana. La microscopía electrónica (EM) tiene la resolución de imagen más alta y proporciona varios detalles subcelulares. Sin embargo, EM carece de etiquetado de objetivos. Al fusionar con precisión la imagen de fluorescencia tomada por FM con la imagen gris adquirida por EM, la microscopía correlativa de luz y electrónica (CLEM) puede combinar la información obtenida por estos dos modos de imagen
La cría de animales y los experimentos fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales del Centro Médico de la Universidad Médica de Fujian. El flujo de trabajo paso a paso del protocolo actual se muestra en la Figura 1.
1. Preparación de la muestra
Informes anteriores demostraron que mScarlet puede atacar el lisosoma15. En este protocolo, se inyectó AAV que expresa mScarlet (rAAV-hSyn-DIO-mScarlet-WPRE-pA) en el M1 (ML: ±1.2 AP: +1.3 DV: -1.5) del cerebro de ratón Vglut2-ires-cre utilizando instrumentos estereotáxicos. Siguiendo el protocolo descrito anteriormente, la imagen final correlacionada se muestra en la Figura 4A. La imagen FM se puede alinear con precisión con la imagen EM utiliza.......
El protocolo que aquí se presenta es un método de imagen versátil, que puede combinar la información de localización de la proteína diana de la microscopía óptica (LM) y el contexto que rodea a la proteína diana de la microscopía electrónica (EM)6. Con las limitaciones de las proteínas fluorescentes actuales, el método ampliamente utilizado es la microscopía correlativa de luz y electrónica (CLEM), lo que significa que la imagen de LM se realiza antes de la preparación de la muestr.......
Los autores no tienen conflictos de intereses que declarar.
Este proyecto contó con el apoyo de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (32201235 a Zhifei Fu), la Fundación de Ciencias Naturales de la Provincia de Fujian, China (2022J01287 a Zhifei Fu), la Fundación de Investigación para Talentos Avanzados de la Universidad Médica de Fujian, China (XRCZX2021013 a Zhifei Fu), la Fundación de Ciencias Especiales de Finanzas de la Provincia de Fujian, China (22SCZZX002 a Zhifei Fu), Fundación del NHC, Laboratorio Clave de Evaluación Técnica de la Regulación de la Fertilidad para Primates No Humanos y Hospital de Salud Materno-Infantil de Fujian (2022-NHP-04 a Zhifei Fu). Agradecemos a Linying Zhou, Minxia Wu, Xi Lin....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.2 M Phosphate Buffer (PB) | NaH2PO4 · 2H2O+Na2HPO4 · 12H2O | ||
0.2 M Tris-Cl (pH 8.5) | Shanghai yuanye Bio-Technology | R26284 | |
25% Glutaraldehyde (GA) | Alfa Aesar | A17876 | Hazardous chemical |
Abbelight 3D | Nanolnsights | ||
Acetone | SCR | 10000418 | |
Ammonium hydroxide | J&K Scientific | 335213 | |
BioPhotometer D30 | eppendorf | ||
Cleaning buffer of cover glasses | 50 mL Ammonium hydroxide, 50 mL Hydrogen peroxide, 250 mL H2O | ||
Coverglass | Warner | 64-0715 | |
DABCO | Sigma | 290734 | Hazardous chemical |
DDSA | SPI company | GS02827 | Hazardous chemical |
Desktop centrifuge | WIGGENS | MINICEN 10E | |
Diamond knife | DiATOME | MX6353 | |
DMP-30 | SPI company | GS02823 | Hazardous chemical |
DNA transfection reagent | Thermo Fisher | 2696953 | Lipofectamine 3000 Transfection Kit |
Epon 812 | SPI company | GS02659 | Hazardous chemical |
Ethanol | SCR | 10009218 | |
Fiji image J | National Institutes of Health | ||
Fixative solution | 4% PFA+0.25% GA+0.02 M PB | ||
Formvar | Sigma | 9823 | |
Glycerol | SCR | 10010618 | |
Gold nanoparticles | Corpuscular | 790120-010 | |
Gradient resin | Acetone to resin 3:1, 1:1, 1:3 | ||
Hydrofluoric acid | SCR | 10011118 | |
Hydrogen peroxide | SCR | 10011218 | |
ICY (https://icy.bioimageanalysis.org/about/) | Easy CLEMv0 Plugin | ||
Imaging chamber | Thermo Fisher | A7816 | |
Large gelatin capsules | Electron Microscopy Sciences | 70117 | |
Mounting buffer | Mowiol 4-88, Glycerol, 0.2 M Tris-Cl (pH 8.5), DABCO | ||
Mowiol 4-88 | Sigma | 9002-89-5 | |
Na2HPO4 ž12H2O | SCR | 10020318 | |
NaH2PO4 ž2H2O | SCR | 20040718 | |
NMA | SPI company | GS02828 | Hazardous chemical |
Oligonucleotide primers | Takara Biomedical Technology (Beijing) | Three oligonucleotides primers were used to detect Vglut2-ires-Cre and wild-type simultaneously. The primers 5,-ATCGACCGGTAATGCAGGCAA-3, and 5,-CGGTACCACCAAATCTTACGG-3, aimed to detect Vglut2-ires-Cre. The primers 5,-CGGTACCACCAAATCTTACGG-3, and 5,-CATGGTCTGTTTTGAATTCAG-3, aimed to detect wild-type. | |
Oscillating microtome | Leica | VT1000S | |
Osmium tetroxide | SCR | L01210302 | Hazardous chemical |
OsO4 solution | 1% Osmium tetroxide+1.5% K4Fe (CN)6·3H2O | ||
Parafilm | Amcor | PM-996 | |
Paraformaldehyde (PFA) | SCR | 80096618 | Hazardous chemical |
Perfusion buffer | 4% PFA+0.1 M PB | ||
Pioloform | Sigma | 63148-65-2 | Hazardous chemical |
Poly-L-lysine | Sigma | 25986-63-0 | |
Potassium ferrocyanide (K4Fe (CN)6·3H2O) | SCR | 10016818 | |
Scalpel blades | Merck | S2771 | |
Scalpel handles | Merck | S2896-1EA | |
Stereomicroscope | OLYMPUS | MVX10 | |
Transgenic mice | The Jackson Laboratory | Vglut2-ires-Cre mice (strain: 129S6/SvEvTac) were housed in standard conditions (25 °C, a 12 h light/dark cycle, with water and food given ad libitum. Male and Female mice were used at 2–3 months old, weight range 20-30 g. | |
Transmission electron microscope (TEM) | FEI | TECNAL G2 | |
UA solution (2% UA) | Aqueous solution | ||
Ultramicrotome | Leica | LEICA EM UC6 | |
Uranyl acetate (UA) | TED PELLA | 19481 | Hazardous chemical |
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