Para comenzar, prepare dos miligramos por mililitro de solución de nanopartículas de óxido de zinc usando DPBS. Realice una dilución en serie doble para hacer diferentes concentraciones. Agregue 100 microlitros de cada concentración de nanopartículas de óxido de zinc probada en una placa de 96 pocillos.
Diluya el cultivo bacteriano a un millón de UFC por mililitro con caldo de soja tríptico o medio TSB. Agregue 100 microlitros a cada pocillo que contenga diferentes concentraciones de solución de nanopartículas de óxido de zinc. Incubar la placa a 37 grados centígrados durante 24 horas.
Pipetear 100 microlitros de nanopartículas de óxido de zinc con solución bacteriana de cada pocillo y preparar varias diluciones de cereales diez veces hasta 10 a menos seis. Transfiera 50 microlitros de cuatro diluciones a placas de medios TSA de agar de soja tríptica. Incubar las placas de agar a 37 grados centígrados durante 24 horas.
Después de seleccionar un factor de dilución que sea contable para cada grupo, marque todas las colonias en la placa de dilución contable y vuelva a calcular para que la concentración se convierta en el número de UFC por mililitro. Utilice los datos obtenidos para representar el porcentaje de bacterias vivas en relación con las del control negativo. Las propiedades antibacterianas de las nanopartículas de óxido de zinc se probaron en 0,5 millones de UFC por mililitro de cepa de Pseudomonas aeruginosa.
La actividad antimicrobiana de las nanopartículas aumentó en función de la concentración. Sin embargo, no se evidenció una disminución visible en el número de colonias bacterianas desde el inicio del cultivo bacteriano sin diluir. Cuando se probaron contra una cepa de SARM de 0,5 millones de UFC por mililitro, estas nanopartículas mostraron una mayor actividad antibacteriana, lo que llevó a una reducción significativa en la formación de colonias bacterianas.
