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Method Article
Cette vidéo montre et compare deux modèles expérimentaux pour étudier le développement de maladies des voies respiratoires oblitérante (OAD) chez la souris, le modèle orthotopique transplantation hétérotopique et la trachée.
Oblitérante des voies respiratoires maladie (OAD) est la complication majeure après transplantation pulmonaire qui limite la survie à long terme (1-7).
Pour étudier la physiopathologie, le traitement et la prévention des OAD, différents modèles animaux de la transplantation de la trachée chez les rongeurs ont été développés (1-7). Ici, nous utilisons deux modèles établis de la trachée de transplantation, le modèle orthotopique et hétérotopique et démontrer leurs avantages et leurs limites.
Pour le modèle hétérotopique, la trachée donneur est enveloppé dans le grand épiploon du destinataire, alors que la trachée donateurs est anastomosée à la fin-en-bout anastomose dans le modèle orthotopique.
Dans les deux modèles, le développement des lésions histologiques oblitérante similaires à ADO clinique a été démontrée (1-7).
Cette vidéo montre comment effectuer les deux, le hétérotopique ainsi que la technique de transplantation orthotopique de la trachée chez des souris, et compare le cours du temps de développement ADO dans les deux modèles en utilisant l'histologie.
PRÉPARATION DES DONATEURS
DESTINATAIRE: transplantation hétérotopique
DESTINATAIRE: LA TRANSPLANTATION orthotopique
Figure 1: Donateur trachée.
1A: Donateur trachée in situ après la préparation.
1B: la trachée donateurs excisées.
1C: Donateur trachée après l'explantation.
Figure 2: Modèle hétérotopique.
2A: Le greffon est positionné au centre du grand épiploon.
2B: La greffe est fixée aux deux extrémités par une suture simple.
2C: Le greffon est enveloppé dans le grand épiploon et fixé avec une suture simple.
Figure 3: modèle orthotopique.
3A: Le greffon est interposé entre les bénéficiaires de la trachée et les défauts de la paroi postérieure est anastomosée à la mode fonctionnement continu.
3B: La paroi antérieure est terminée à l'aide d'une suture simple.
Figure 4: Histologie.
4A: Réformé trachée hétérotopique transplanté après 28 jours dans la sta H + EMINIER (15x). Notez l'effacement de 100% luminal.
4B: Réformé orthotopique trachée transplantée après 60 jours dans la coloration H + E (15x). Maximal anéantissement atteint luminale est d'environ 45%.
Hétérotopique modèle de transplantation trachéale | Orthotopique modèle de transplantation trachéale | |
Avantages | + Facile à exécuter + Effacement Luminal avec une occlusion complète des voies aériennes après 28 jours + Pas d'affection physique des animaux par ADO | Ventilation + physique de la greffe + Administration des médicaments inhalés possibles + Forte réactions immunologiques telles que la production d'anticorps IgM alloréactives + Milieu physiologique thoraciques + Trachéale-trachéale anastomose imite le contexte clinique |
Inconvénients | - Pas de ventilation de la trachée transplantée - Aucune évaluation des agents pathogènes inhalés possibles - Inhibition de la clairance mucociliaire et les sécrétions retenues - Microenvironnement péritonéal, au lieu du milieu thoraciques | - La formation chirurgicale nécessaire - L'effacement Luminal avec l'occlusion luminale app. 45% après 60 jours - Les animaux peuvent développer des symptômes de ADO |
Tableau 1: Avantages et inconvénients de la transplantation orthotopique et hétérotopique trachéales.
Les souris sont disponibles en différentes transgeneic et le modèle KO, et convient donc d'étudier des questions liées aux mécanistes ADO (4).
Les deux modèles de la transplantation trachéale montré dans cette vidéo peut être utilisé comme modèles fiables pour étudier le développement ADO.
Cependant, chaque modèle démontre les avantages et les limites.
La transplantation hétérotopique trachéale est facile à réaliser et ne nécessite pas...
Sonja Schrepfer a reçu une subvention de recherche de la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992/3-1).]
Tous les animaux ont reçu des soins humains en conformité avec les Principes de protection des animaux de laboratoire, des expériences sur les animaux ont été effectuées en conformité avec les directives et règlements établis par la Société nationale pour la recherche médicale et le Guide pour les soins et l'utilisation des animaux de laboratoire publié par le National Institutes of Health (Instituts nationaux de santé de publication 85-23, révisée en 1985).
Tous les animaux ont été obtenus à partir de Charles River Laboratories (Sulzfeld, Allemagne) et ont été maintenus dans les installations de soins aux animaux de l'Hôpital universitaire Eppendorf à Hambourg. Les animaux ont reçu la norme chow et eau ad libitum.
Les auteurs remercient Christiane Pahrmann (Lab Manager).
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