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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Le but de cette publication est de démontrer l’application potentielle d’un nouveau dispositif utilisant des lésions simulées d’organe solide dans un modèle porcin.

Résumé

L’hémorragie d’organe solide (foie, rate, et rein) est souvent représentant un danger pour la vie et peut être difficile à arrêter chez les patients gravement malades. Les techniques traditionnelles pour arrêter ce saignement continu incluent la coagulation par électrocautéuté à haute tension, application hémostatique topique, et la livraison du gaz d’argon enflammé. Le but de cette étude/vidéo était de démontrer l’efficacité d’un nouveau dispositif d’énergie pour arrêter l’hémorragie solide persistante d’organe. Un nouvel instrument utilisant l’énergie bipolaire de radiofréquence (RF) qui agit pour enflammer/bouillir la solution saline dégoulinant d’une simple pièce de main est employé pour arrêter le saignement continu des dommages solides d’organe dans un modèle de porcin. Cet instrument est extrapolé à partir de l’expérience dans les résections hépatiques électives. Une série croissante de blessures aux organes solides dans un modèle porcin sera créée. Elle sera suivie d’une hémorragie saisissante avec ce nouveau dispositif énergétique dans l’ordre. Un dispositif d’aspiration standard sera également utilisé. Cet instrument d’énergie saline/RF simple a le potentiel d’arrêter les saignements continus de surface/capsulaire d’organe solide, aussi bien que l’hémorragie modérée liée aux lacérations profondes.

Introduction

L’hémorragie incontrôlée due à des dommages solides d’organe demeure une cause principale de morbidité et de mortalité dans le trauma émoussé et pénétrant1. Avec l’avènement de stratégies efficaces de réanimation de contrôle des dommages, le taux de prise en charge non opératoire pour les traumatismes abdominaux continue d’augmenter2. En conséquence, les patients nécessitant la gestion opératoire ont des dommages de plus en plus complexes et le dérangement physiologique associé. Dans ces patients, le contrôle tôt de l’hémorragie est un composant essentiel de la réanimation efficace de contrôle des dommages et des résultats souhaitables.

La prise en charge chirurgicale des lésions organiques solides demeure une compétence clé pour les traumatismes, les soins actifs et les chirurgiens généraux. Une grande variété de techniques chirurgicales et d’adjonctions hémostatiques pour ces blessures ont été décrites3. Les techniques traditionnelles pour traiter le saignement solide d’organe incluent la coagulation par l’électrocautéuté à haute tension, l’application des agents hémostatiques topiques, les réparations suturées, et l’excision partielle ou totale d’organe. La coagulation du faisceau d’argon a également été décrite4. Bien que chacune de ces techniques ait un rôle à jouer dans la réalisation de l’hémostase, aucune n’est universellement applicable ou réussie.

Beaucoup d’outils nouveaux et les thérapies hémostatiques ont été décrits dans le cadre chirurgical électif. Cela est particulièrement vrai dans le domaine de la chirurgie hépatobiliaire5. Comme la familiarité avec ces outils augmente, beaucoup d’entre eux se sont également montrés prometteurs dans la gestion chirurgicale des blessures traumatiques. Un tel dispositif utilise une combinaison d’énergie saline et de radiofréquence bipolaire enflammée pour arrêter l’hémorragie. En outre, il a la capacité de sceller simultanément les canaux biliaires de petite à moyenne taille dans le foie6. L’expérience positive avec cet outil dans la gestion des blessures d’organes solides a été décrite précédemment6,7,8.

Le but de cette publication est de démontrer l’application potentielle de ce nouveau dispositif en utilisant des lésions simulées d’organes solides dans un modèle porcin.

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Protocole

Les procédures concernant les sujets animaux ont été approuvées par le Comité des soins aux animaux de l’Université de Calgary et suivent les lignes directrices établies par le Conseil canadien des soins aux animaux. Le comité s’assure que l’étude est éthique et que les animaux sont traités avec humanité.

1. Préparation du modèle

  1. Loger le porc mâle adulte de 50 kg dans un établissement de soins aux animaux pendant une semaine avant l’opération afin de s’acclimater à l’animal aux conditions de logement et aux maîtres-chiens. Jeûnez le modèle pendant un minimum de 6 h avant l’initiation de l’anesthésie.
  2. Anesthésier le modèle à l’aide d’une injection intramusculaire de kétamine (33 mg/kg), d’atropine (0,04 mg/kg) et de buprénorphine (0,05 mg/kg) ainsi que d’isoflurane inhalé (5 %)9.
  3. Déplacer le modèle dans la position de supination et pulvériser les cordes vocales avec de la lidocaïne (1%) afin d’éviter le laryngospasme. Effectuer l’intubation endotrachéale directe à l’aide d’un tube endotrachéal de 6,5 Fr. Confirmer la position correcte du tube endotrachéal à l’aide de la capnographie.
  4. Insérez une IV de 18 G dans la veine marginale de l’oreille et commencez une infusion de lactate de Ringer à une vitesse de 200 mL/h. Appliquez un onguent fade aux yeux du modèle pour prévenir la sécheresse pendant l’anesthésie générale.
  5. Surveillez la fréquence cardiaque et la saturation en oxygène du modèle à l’aide d’un oxymètre à impulsions appliqué à la queue du modèle. Ventiler le modèle entre 14 et 16 respirations/min à l’aide d’un ventilateur mécanique et d’un volume de marée de 5 à 10 mL/kg. Maintenir une anesthésie adéquate en ciblant une concentration alvéolaire minimale (MAC) d’isoflurane entre 2 et 2,5.
  6. Avant le début de la chirurgie, confirmer la profondeur adéquate de l’anesthésie en testant les réflexes de douleur avec une pince d’orteil de la jambe arrière. Réévaluer les réflexes de douleur à intervalles réguliers tout au long de la chirurgie.

2. Préparation de l’appareil

  1. Préparer la radiofréquence saline/bipolaire (SBRF; Figure 1) selon les spécifications du fabricant.
    1. Ouvrez la pièce à main (pointe d’étanchéité bipolaire 6.0) et connectez-la au générateur.
    2. Définissez le paramètre de débit salin sur Faible. Utilisez 0,9% saline pour une conduction énergétique maximale.
    3. Réglez le réglage de puissance de radiofréquence à 160 W.

3. Chirurgie: Laparotomie

  1. Effectuer une longue incision ouverte de laparotomie de ligne médiane à l’aide d’un scalpel #10 s’étendant du xiphisternum au pubis et en passant par toutes les couches de la paroi abdominale.
  2. Établir une exposition adéquate des organes solides d’intérêt(p. ex.,foie, rate, rein), mobiliser d’autres structures et insérer un rétractateur au besoin.
    REMARQUE : Par souci de simplicité, le foie sera désigné comme l’organe solide d’intérêt pour le reste de ce protocole. Ce protocole comprendra également la création de blessures de grade similaire dans le rein et la rate.

4. Chirurgie : Lésion simulée d’organe solide

REMARQUE : Les blessures décrites ci-dessous représentent une détérioration de la hiérarchie des blessures. Les blessures sont créées par un chirurgien traumatologue expert et l’hémostase sera obtenue par un autre chirurgien.

  1. À l’aide d’une lame de scalpel #10, appliquer une force abrasive (va-et-vient) à la capsule hépatique afin d’induire des saignements capsulaires. La blessure doit être superficielle(c.-à-d.,1 à 2 mm) et 2 cm2 de taille. La taille de la blessure peut alors être augmentée par incréments de 1 cm2 à la discrétion de l’opérateur.
  2. Créer des lacérations solides d’organe de plus en plus sévère en utilisant l’application directe d’un scalpel. La longueur de la lacération peut s’étendre de 5 cm à toute la longueur de l’organe. La profondeur de la lacération doit être de 1 cm, puis augmentée par incréments de 1 cm à la discrétion de l’opérateur.
  3. Créez des blessures pénétrantes à l’aide d’un dispositif contondant comme une pince Kelly à l’aide d’un mouvement de coups de couteau. Ceux-ci peuvent être d’une épaisseur partielle(c.-à-d.50% de l’organe) ou de pleine épaisseur(c.-à-d.passant complètement à travers l’organe).

5. Hémostase

  1. Déprimer le bouton de la main, initiant le flux simultané de saline et la livraison de l’énergie de radiofréquence bipolaire. La solution saline bouillira sur le site d’application.
  2. Appliquez la pointe de l’appareil directement sur la surface brute du foie, sur les zones superficielles de saignement, ou dans les défauts dans le foie lui-même. Ne poignardez pas l’organe avec l’effecteur final.
  3. Appliquer l’aspiration simultanée à partir d’un ventouse chirurgicale standard au besoin afin de fournir la solution saline chauffée et l’énergie directement aux zones d’hémorragie continue. Cela permet également de visualiser l’emplacement précis de l’hémorragie en cours.
  4. Chauffer les tissus à environ 100 °C (coagulation thermique sans carbonisation significative) à l’aide d’un léger mouvement d’avant en arrière. Un « o » auditif se produira après 3 - 5 s et signifie que la brûlure est terminée. L’utilisateur peut ensuite déplacer l’instrument de manière organisée vers le site ciblé suivant.
  5. Si nécessaire, appliquer l’électrocautésie à haute tension dirigée avec précision en conjonction avec l’application du SBRF et des dispositifs d’aspiration afin d’obtenir l’hémostase. Ceci peut être exigé pour l’hémorragie la plus grande et la plus vigoureuse.

6. Scellement des canaux biliaires de petite à moyenne

  1. En utilisant la même méthode que celle décrite ci-dessus, appliquer la pointe de l’instrument sur le bord coupé/blessé du parenchyme hépatique pour sceller les canaux biliaires de petite à moyenne.

7. Euthanasie modèle

  1. À la fin de l’expérience, euthanasier le modèle anesthésié par exsanguination selon les Lignes directrices de l’institution sur les soins aux animaux.

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Résultats

Le dispositif de SBRF décrit ici fournit l’hémostase efficace pour une variété de dommages solides d’organe. L’efficacité du dispositif SBRF dans un modèle porcin a été décrite précédemment8. Les résultats de cette étude sont réédités ici avec la permission des auteurs.

À l’aide d’un modèle porcin, des blessures de gravité croissante ont été appliquées à quatre modèles di...

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Discussion

Le contrôle rapide et efficace de l’hémorragie est un élément essentiel de la réanimation moderne de contrôle des dommages10. Une variété de techniques opératoires et auxiliaires sont disponibles pour arrêter l’hémorragie dans une blessure d’organe solide3. Aucune de ces techniques ne s’est avérée universellement applicable ou réussie dans la réalisation de l’hémostase. L’expérience initiale avec le dispositif SBRF décrit ici a été positive

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteurs n’ont aucune reconnaissance.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
Aquamantys pump generatorMedtronic40-402-1
Aquamantys 6.0 bipolar sealerMedtronic23-112-1
Electrosurgical pencil with tipMegadyne0039
Porcine animal
Porcine ventilator/induction and anesthetic medications
2 x 1 liter bags of 0.9% normal saline
2 x scalpels (#10)
Belfour abdominal retractor
Suction tubing
Suction tip
Suction device/wall connector
Suction canister
Debakey forceps
Metz scissors
Curved Mayo scissors
Closing suture (1-0 Nylon)
20 x Laparotomy sponges
2 x Kelley clamps
2 x snap clamps

Références

  1. Kauvar, D. S., Lefering, R., Wade, C. E. Impact of hemorrhage on trauma outcome: an overview of epidemiology, clinical presentations, and therapeutic considerations. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 60 (6), S3-S11 (2006).
  2. Shrestha, B., et al. Damage-control resuscitation increases successful nonoperative management rates and survival after severe blunt liver injury. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 78 (2), 336-341 (2015).
  3. Kozar, R. A., et al. Trauma Association/critical decisions in trauma: operative management of adult blunt hepatic trauma. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 71 (1), 1-5 (2011).
  4. Peitzman, A. B., Richardson, J. D. Surgical treatment of injuries to the solid abdominal organs: a 50-year perspective from the Journal of Trauma. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 69 (5), 1011-1021 (2010).
  5. Aloia, T. A., Zorzi, D., Abdalla, E. K., Vauthey, J. N. Two-surgeon technique for hepatic parenchymal transection of the noncirrhotic liver using saline-linked cautery and ultrasonic dissection. Annals of surgery. 242 (2), 172-177 (2005).
  6. Ball, C. G. Use of a novel energy technology for arresting ongoing liver surface and laceration hemorrhage. Canadian Journal of Surgery. 57 (4), E146(2014).
  7. Ball, C. G., et al. Use of a novel saline/bipolar radiofrequency energy instrument as an adjunct for arresting ongoing solid organ surface and laceration bleeding in critically injured patients. Injury. 47 (9), 1996-1999 (2016).
  8. Ball, C. G., et al. The efficacy of a novel saline/bipolar radiofrequency energy instrument for arresting ongoing solid and non-solid organ hemorrhage in a swine model. Injury. 47 (12), 2706-2708 (2016).
  9. Swindle, M. M., Smith, A. C. Best practices for performing experimental surgery in swine. Journal of Investigative Surgery. 26 (2), 63-71 (2013).
  10. Cantle, P. M., Roberts, D. J., Holcomb, J. B. Damage Control Resuscitation Across the Phases of Major Injury Care. Current Trauma Reports. 3 (3), 238-248 (2017).
  11. Gaarder, C., Naess, P. A., Buanes, T., Pillgram-Larsen, J. Advanced surgical trauma care training with a live porcine model. Injury. 36 (6), 718-724 (2005).
  12. Harvin, J. A., et al. Control the damage: morbidity and mortality after emergent trauma laparotomy. The American Journal of Surgery. 212 (1), 34-39 (2016).

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Réimpressions et Autorisations

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