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Method Article
Nous présentons une méthode pour isoler les cellules endothéliales et les noyaux de la lumière des artères carotides de souris exposées à des conditions d’écoulement stables ou perturbées pour effectuer des expériences omiques unicellulaires.
L’athérosclérose est une maladie inflammatoire des régions artérielles exposées à un flux sanguin perturbé (d-flow). Le flux D régule l’expression des gènes dans l’endothélium aux niveaux transcriptomique et épigénomique, ce qui entraîne des réponses proathérogènes. Récemment, des études de séquençage de l’ARN unicellulaire (scRNAseq) et de dosage unicellulaire pour le séquençage de la chromatine accessible par transposase (scATACseq) ont été réalisées pour déterminer les changements transcriptomiques et d’accessibilité de la chromatine à une résolution unicellulaire à l’aide du modèle de ligature partielle des carotides (LCP) chez la souris. Comme les cellules endothéliales (CE) représentent une fraction mineure des populations cellulaires totales dans la paroi artérielle, une méthode de digestion luminale a été utilisée pour obtenir des préparations unicellulaires enrichies en CE. Pour cette étude, des souris ont été soumises à une chirurgie PCL pour induire un flux d dans l’artère carotide gauche (ACL) tout en utilisant l’artère carotide droite (RCA) comme témoin. Les artères carotides ont été disséquées deux jours ou deux semaines après la chirurgie du LCP. La lumière de chaque carotide a été soumise à une digestion de collagénase et des cellules uniques enrichies en endothéliales ou des noyaux simples ont été obtenus. Ces préparations unicellulaires et mononucléiformes ont ensuite été codées à barres à l’aide d’une configuration microfluidique 10x Genomics. Les cellules uniques et les noyaux uniques codés à barres ont ensuite été utilisés pour la préparation de l’ARN, la génération de bibliothèques et le séquençage sur un séquenceur d’ADN à haut débit. Après le traitement bioinformatique, les ensembles de données scRNAseq et scATACseq ont identifié divers types de cellules à partir de la digestion luminale, principalement constituées de CE. Des cellules musculaires lisses, des fibroblastes et des cellules immunitaires étaient également présents. Cette méthode d’enrichissement de la CE a aidé à comprendre l’effet du flux sanguin sur l’endothélium, ce qui aurait pu être difficile avec la méthode de digestion de l’artère totale. La méthode de préparation unicellulaire enrichie en CE peut être utilisée pour effectuer des études omiques unicellulaires chez des souris knockouts EC et transgéniques lorsque l’effet du flux sanguin sur ces gènes n’a pas été étudié. Il est important de noter que cette technique peut être adaptée pour isoler des cellules uniques enrichies en CE à partir d’explants d’artères humaines afin d’effectuer des études mécanistiques similaires.
Ce laboratoire a précédemment démontré que l’induction du flux d conduit à un développement rapide et robuste de l’athérosclérose chez les souris hyperlipidémiques 1,2. Le nouveau modèle murin d’athérosclérose induite par le flux d a été possible en utilisant la chirurgie de ligature carotidienne partielle (LCP) 3. La chirurgie PCL induit un débit sanguin faible et oscillatoire ou un flux d dans l’artère carotide gauche ligaturée (ACL). En revanche, l’artère carotide droite controlatérale (ARC) continue de faire face à un flux laminaire stable (s-flux....
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Toutes les procédures relatives aux animaux décrites ci-dessous ont été approuvées par le comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux de l’Université Emory. Des souris C57BL/6 non hypercholestérolémiques, appariées selon l’âge et le sexe ont été utilisées pour atténuer la variation dépendante du sexe et compenser toute complication des conditions hypercholestérolémiques.
1. Chirurgie de ligature partielle de la carotide (LCP)
NOTE: La ligature partielle de l’artère carotide de l’ACL a été réalisée comme décrit précédemment et démontré3.
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Des chirurgies partielles de ligature carotidienne ont été effectuées sur 44 souris, et le début du flux d dans l’ACL a été validé en effectuant une échographie un jour après la chirurgie de ligature partielle. Une chirurgie de ligature partielle réussie entraîne une réduction de la vitesse du flux sanguin et inverse le flux sanguin (flux perturbé) dans l’ACL3. Les artères carotides ont été disséquées soit deux jours, soit deux semaines après la ligature. La lumièr.......
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Cet article fournit un protocole détaillé pour isoler les préparations unicellulaires des artères carotides de souris. L’influence du flux d sur les cellules endothéliales peut être étudiée avec précision si la chirurgie PCL est effectuée correctement. Il est crucial d’identifier correctement les branches de la carotide commune, telles que la carotide externe, la carotide interne, l’artère occipitale et l’artère thyroïdienne supérieure. La validation des schémas d’écoulement par échogr.......
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HJ est le fondateur de FloKines Pharma. Les autres auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à déclarer.
Ce travail a été soutenu par le financement des subventions HL119798, HL095070 et HL139757 des National Institutes of Health à HJ. HJ est également soutenu par le Wallace H. Coulter Distinguished Faculty Chair Professorship. Les services fournis par l’Emory Integrated Genomics Core (EIGC) ont été subventionnés par la faculté de médecine de l’Université Emory et ont également été partiellement soutenus par la Georgia Clinical and Translational Science Alliance des National Institutes of Health sous le numéro d’attribution. UL1TR002378. Le contenu fourni ci-dessus relève de la seule responsabilité des auteurs et ne reflète pas les opinions officielles des National Insti....
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Chemicals, Peptides, and Recombinant Proteins | |||
1x PBS (Cell Culture Grade) | Corning | 21040CMX12 | |
1.5 mL Protein LoBind Microcentrifuge Tubes | Eppendorf | 022-43-108-1 | |
15 mL Centrifuge Tube - Foam Rack, Sterile | Fablab | FL4022 | |
50 mL SuperClear Centrifuge Tubes | Labcon | 3191-335-028 | |
6-0 Silk Suture Sterile | Covidien | s-1172 c2 | |
70 µm Cell Strainer, White, Sterile, Individually Packaged | Thermo Fisher Scientic | 08-771-2 | |
Accutase solution,sterile-filtered | Sigma-Aldrich | A6964-100ML | or equivalent |
ATAC Buffer (Component I of Transposition Mix) | 10x Genomics | 2000122 | |
ATAC Enzyme (Component II of Transposition Mix) | 10x Genomics | 2000123/ 2000138 | |
Bovine Serum albumin | Sigma-Aldrich | A7906-500G | |
Buprenorphine | Med-Vet International | RXBUPRENOR5-V | |
Chromium Controller & Next GEM Accessory Kit | 10X Genomics | 1000204 | |
Chromium Next GEM Single Cell 3' Reagent Kits v3.1 | 10X Genomics | 1000121 | |
Chromium Next GEM Single Cell ATAC Reagent Kits v1.1 | 10X Genomics | 1000175 | |
Collagenase II | MP Biomedicals | 2100502.5 | |
Digitonin | Sigma-Aldrich | D141-100MG | |
Dissecting Forceps | Roboz Surgical Instruments Co | RS-5005 | |
Dnase1 | New England Biolabs Inc | M0303S | |
Centrifuge (Benchtop-Model # 5425) | Eppendorf | 22620444230VR | |
Fetal Bovine Serum - Premium Select | R&D systems | S11550 | |
Fixed Angle Rotor | Eppendorf | FA-45-24-11-Kit Rotor | |
HEPES buffered saline | Millipore Sigma | 51558 | |
Insulin syringe (3/10 mL 29 G syringe) | BD | 305932 | |
Isoflurane | Patterson vet | 789 313 89 | |
MACs Smart Strainers (30 µm) | Miltenyi Biotec | 130-098-458 | |
MACS SmartStrainers (100 µm) | Miltenyi Biotec | 130-098-463 | |
Normal Saline (0.9% sodium chloride) | Baxter International Inc | 2B1323 | |
Nuclei Buffer (20x) | 10x Genomics | PN 2000153/2000207 | |
PBS (10x), pH 7.4 | Thermo Fisher Scientic | 70011-044 | |
Small scissors | Roboz Surgical Instruments Co | RS-5675 | |
Stainless Steel Micro Clip Applying Forceps With Lock | Roboz Surgical Instruments Co. | RS-5480 | or similar |
Tissue Mend II | Webster Veteinanry | 07-856-7946 | |
Type II Collagenase | MP biomedicals | 2100502.1 | |
Deposited Data | |||
scATACseq FastQ files | NCBI | www.ncbi.nlm.nih.gov/bioproject Accession # PRJNA646233 | |
scRNAseq FastQ files | NCBI | www.ncbi.nlm.nih.gov/bioproject Accession # PRJNA646233 | |
Software and Algorithms | |||
Cell Ranger 3.1.0 | 10X Genomics | https://support.10xgenomics.com/ single-cell-gene-exp | |
Cicero | Pliner et al., 2018 | https://cole-trapnell-lab.github.io/cicero-release/ | |
Ggplot2 v3.2.1 | Hadley Wickham | https://cran.r-project.org | |
Harmony | Korsunsky et al., 2019 | https://github.com/immunogenomics/harmony | |
ImageJ | Schneider et al., 2012 | https://imagej.nih.gov | |
Monocle 2.8.0 | Qiu et al., 2017 | https://github.com/cole-trapnell-lab/ monocle-release | |
R version 3.6.2 | R Foundation | https://www.r-project.org | |
Seurat 3.1.3 | Stuart et al., 2019 | https://github.com/satijalab/seurat | |
Signac 0.2.5 | Stuart et al., 2019 | https://github.com/timoast/signac |
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An erratum was issued for: Isolation of Endothelial Cells from the Lumen of Mouse Carotid Arteries for Single-cell Multi-omics Experiments. The Authors section was updated.
The Authors section was updated from:
Sandeep Kumar*1
Aitor Andueza*1
Juyoung Kim1
Dong-Won Kang1
Hanjoong Jo1,2
1Wallace H. Coulter Department of Biomedical Engineering, Georgia Institute of Technology and Emory University, 2Division of Cardiology, Georgia Institute of Technology and Emory University
* These authors contributed equally
to:
Sandeep Kumar*1
Aitor Andueza*1
Nicolas Villa-Roel1
Juyoung Kim1
Dong-Won Kang1
Hanjoong Jo1,2
1Wallace H. Coulter Department of Biomedical Engineering, Georgia Institute of Technology and Emory University, 2Division of Cardiology, Georgia Institute of Technology and Emory University
* These authors contributed equally
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