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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Lorsqu’elle est intégrée à une plaque de tête et à une conception optique compatible avec les microscopes à un ou deux photons, la lentille à microprisme présente un avantage significatif pour mesurer les réponses neuronales dans une colonne verticale dans diverses conditions, y compris des expériences bien contrôlées dans des états de tête fixe ou des tâches comportementales naturelles chez des animaux en mouvement libre.

Résumé

Avec les progrès de la microscopie multiphotonique et des technologies moléculaires, l’imagerie par fluorescence se développe rapidement pour devenir une approche puissante pour étudier la structure, la fonction et la plasticité des tissus cérébraux vivants. Par rapport à l’électrophysiologie conventionnelle, la microscopie à fluorescence peut capturer l’activité neuronale ainsi que la morphologie des cellules, permettant des enregistrements à long terme des populations de neurones identifiées à une résolution unicellulaire ou subcellulaire. Cependant, l’imagerie haute résolution nécessite généralement une configuration stable et fixe à la tête qui limite le mouvement de l’animal, et la préparation d’une surface plane en verre transparent permet de visualiser les neurones à un ou plusieurs plans horizontaux, mais est limitée dans l’étude des processus verticaux à différentes profondeurs. Ici, nous décrivons une procédure pour combiner une fixation de plaque de tête et un microprisme qui donne une imagerie multicouche et multimodale. Cette préparation chirurgicale donne non seulement accès à toute la colonne du cortex visuel de la souris, mais permet une imagerie à deux photons en position fixe de la tête et une imagerie à un photon dans un paradigme en mouvement libre. En utilisant cette approche, on peut échantillonner des populations cellulaires identifiées à travers différentes couches corticales, enregistrer leurs réponses sous des états fixes et mobiles et suivre les changements à long terme sur des mois. Ainsi, cette méthode fournit un test complet des microcircuits, permettant une comparaison directe des activités neuronales évoquées par des stimuli bien contrôlés et sous un paradigme comportemental naturel.

Introduction

L’avènement de l’imagerie fluorescente à deux photons in vivo 1,2, combinant les nouvelles technologies des systèmes optiques et des indicateurs de fluorescence génétiquement modifiés, est devenu une technique puissante en neurosciences pour étudier la structure, la fonction et la plasticité complexes du cerveau vivant 3,4. En particulier, cette modalité d’imagerie offre un avantage inégalé par rapport à l’électrophysiologie traditionnelle en capturant à la fois la morphologie et les activités dynamiques des neurones, facilitant ainsi le suivi à long terme....

Protocole

Toutes les expériences ont été menées conformément à la loi britannique de 1986 sur les animaux (procédures scientifiques) en vertu de licences personnelles et de projets approuvées et délivrées par le ministère de l’Intérieur britannique après un examen éthique approprié. Lignées transgéniques adultes CaMKII-TTA ; GCaMP6S-TRE21 ont été élevés et leur progéniture a été utilisée dans l’expérience. Pour la sécurité des expérimentateurs et le maintien de conditions stériles, toutes les procédures ont été effectuées dans des conditions aseptiques et avec un équipement de protection individuelle complet.

1. Préparat....

Résultats Représentatifs

La méthode d’imagerie calcique chronique multicouche in vivo de la même population neuronale sur une période de plusieurs semaines, en utilisant des modalités d’imagerie à un et deux photons, dans des conditions de mouvement libre et de fixation de la tête, a été montrée. Ici, la capacité d’identifier des populations neuronales correspondantes sous imagerie à un photon pendant que l’animal explorait une arène ouverte dans l’obscurité a été démontrée (Figure 7A

Discussion

Ici, nous avons montré la capacité d’observer et de comparer directement les neurones dans des conditions de tête fixe et de mouvement libre dans les mêmes populations neuronales. Bien que nous ayons démontré l’application dans le cortex visuel, ce protocole peut être adapté à une multitude d’autres zones du cerveau, à la fois les zones corticales et les noyaux profonds 24,25,26,27,28, ainsi que d’autres configurations d’acquisition de données et comportementales

Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent ou conflit d’intérêts.

Remerciements

Nous remercions Mme Charu Reddy et le professeur Matteo Carandini (Cortex Lab) pour leurs conseils sur le protocole chirurgical et le partage de souches de souris transgéniques. Nous remercions le Dr Norbert Hogrefe (Inscopix) pour ses conseils et son aide tout au long du développement de la chirurgie. Nous remercions Mme Andreea Aldea (Sun Lab) pour son aide dans la configuration chirurgicale et le traitement des données. Ce travail a été soutenu par la Moorfields Eye Charity.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
0.9% Sodium Chloride solution for infusion (Vetivex 11) 250mlDechra20091607Saline for hydration and drug reconsitution
18004-1 Trephine 1.8mm diameter burFST18004-18Drill bit
1ml syringeTerumoMDSS01SE1ml syringe
23G x 5/8 inch 6% LUER needleTerumoNN-2316R23G needle
71000 Automated stereotaxic apparatus w/ built-in softwareRWD-RWD
Absorbable Haemostatic Gelatin Sponge (10x10x10mm)SurgisponSSP-101010gel-foam
Alcohol pads 70% isopropyl alcoholBraun9160612Alcohol pads
Aluminium foilAny retailer-Foil to cover eyes during surgery
Articifical Cerebrospinal Fluid Tocris Bioscience a Bio-Techne Brand3525/25MLACSF
Automated microinjection pumpWPI8091
Betadine solution (10% iodinated Povidone) 500mlVidene/Ecolab3030440Betadine
Bruker Ultime 2Pplus (customised)Bruker-Two-photon imaging system 
Cardiff AldasorberVet-TechAN006Anaesthesia absorber
CFI S Plan Fluor ELWD ADM 20XCNikonMRH4823020x objective lens
Compact Anaesthesia system - single gas - isoflurane K/F, with oxygen concentrator model: ZY-5AC and scavenging unitVet-TechAN001Compact anaesthesia system 
Contec Prochlor Aston PharmaAP2111L1Disinfectant (hypochlorous acid)
Dexamethasone Sodium Phosphate Injection, USP, 4mg/ml, NDC: 0641-6145-25HikmaCovetrus:70789Dexamethasone
Dissecting Knife, cutting edge 4mm, thickness 0.5mm, stainless steelFine Science Tools10055-12Knife for incisino of cortex
Dual-Sided, Non-Puncture Mouse & Neonatal Rat Ear BarsStoelting51649Ear bar
Dummy microscopeInscopixDummy microscopeTo help with implantation
Ethanol (100%) VWR40-1712-25Used to make 70% ethanol 
Fisherbrand Nitrile Indigo Disposable Gloves PPE Cat IIIFischerScientific17182182Gloves
Homeothermic Monitor 50-7222-FHarvard Apparatus50-7222-FHomeothermic monitoring system/heating pad
Image processing softwareImageJ-Image processing software
Inscopix Data Processing Software (IDPS)Inscopix-One-photon calcium imaging processing software
Insight Duals-232, S/N 2043InSightInsight Spectra X3Two-photon imaging laser
IsoFlo 250ml 100% w/w inhalationZoetisWM 42058/4195Isoflurane
Kwik-Sil Low Toxicity Silicone AdhesiveWorld Precision Intruments (WPI)KWIK-SILSilicone adhesive
MICROMOT mains adapter NG 2/S, w/ Drill unit 60/EPROXXONNO 28 515Handheld drill
nVoke Integrated Imaging and Optogenetics System packageInscopix-One-photon Imaging system and software
ProView Implant KitInscopixProView Implant KitDummy microscope, stereotaxic arm and attachment 
ProView Prism ProbeInscopix1050-002203Microprism lens
Rimadyl (50mg/ml)ZoetisVM 42058/4123Carprofen 
Stereotaxis Microscope on Articulated arm with table clampWPIPZMTIII-AAC Microscope
Super-Bond Universal kit, SUN MedicalPrestige-DentalK058EAdhesive cement
Two-photon calcium image softwareSuite2P-Two-photon calcium imaging processing software
VapouriserVet-Tech-Isoflurane vapouriser
Xailin Lubricating Eye Ointment 5gXailin-NightMLG/28/1551Ophthalmic ointment 

Références

  1. Denk, W., Strickler, J. H., Webb, W. W. Two-photon laser scanning fluorescence microscopy. Science. 248 (4951), 73-76 (1990).
  2. Svoboda, K., Yasuda, R. Principles of two-photon excitation microscopy and its applications t....

Réimpressions et Autorisations

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