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Cet article décrit comment la microscopie à deux photons sensible à la polarisation pourrait être appliquée pour caractériser l’organisation locale au sein de superstructures-sphérolites amyloïdes sans marquage. Il décrit également comment préparer et mesurer l’échantillon, assembler la configuration requise et analyser les données pour obtenir des informations sur l’organisation locale des fibrilles amyloïdes.
Par rapport à son homologue à un photon, l’excitation à deux photons est bénéfique pour les expériences de bio-imagerie en raison de sa phototoxicité plus faible, de sa pénétration tissulaire plus profonde, de son fonctionnement efficace dans les systèmes densément emballés et de la photosélection angulaire réduite des fluorophores. Ainsi, l’introduction de l’analyse de polarisation en microscopie à fluorescence à deux photons (2PFM) permet une détermination plus précise de l’organisation moléculaire d’un échantillon par rapport aux méthodes d’imagerie standard basées sur des processus optiques linéaires. Dans ce travail, nous nous concentrons sur la 2PFM sensible à la polarisation (ps-2PFM) et son application dans la détermination de l’ordre moléculaire au sein de bio-structures complexes-sphérolites amyloïdes. Les maladies neurodégénératives telles que la maladie d’Alzheimer ou la maladie de Parkinson sont souvent diagnostiquées par la détection d’agrégats amyloïdes-protéines formés en raison d’un processus de mauvais repliement des protéines. L’exploration de leur structure permet de mieux comprendre leur parcours de création et, par conséquent, de développer des méthodes de diagnostic plus sensibles. Cet article présente le ps-2PFM adapté à la détermination de l’ordre local des fibrilles à l’intérieur des sphérulites d’insuline bovine et des agrégats de protéines amyloïdogènes sphériques. De plus, nous démontrons que la technique proposée permet de résoudre l’organisation tridimensionnelle des fibrilles à l’intérieur de la spherulite.
Au cours des dernières décennies, bien qu’il y ait eu un développement significatif de nombreuses techniques de microscopie à fluorescence pour la bio-imagerie des protéines et de leurs agrégats1, seules quelques-unes ont été utilisées pour résoudre leur ordre local au sein de l’échantillon 2,3. La microscopie d’imagerie à durée de vie de fluorescence4 a été utilisée pour étudier l’hétérogénéité structurale intrinsèque des superstructures-sphérolites amyloïdes. De plus, la détermination quantitative de l’ordre local à l’intérieur de biostructures complexes et den....
1. Préparation des lames de microscope avec des sphérulites adultes
REMARQUE : Voir le tableau des matériaux pour plus de détails sur tous les matériaux, réactifs et équipements utilisés dans ce protocole. Toutes les solutions ont été préparées avec de l’eau déminéralisée (18,2 MΩ·cm à 25 °C) obtenue à partir du système de purification de l’eau.
Le protocole présenté fournit des conseils étape par étape tout au long de la préparation des superstructures amyloïdes pour les tests avec ps-2PFM, la construction du système microscopique et les mesures de l’échantillon approprié. Cependant, avant la dernière série de mesures, il est essentiel d’aligner correctement les APD avec une référence isotrope, ce qui devrait permettre de collecter un signal symétrique de forme et d’intensité similaires sur les deux détecteurs (Figure .......
La microscopie à deux photons sensible à la polarisation est un outil précieux pour étudier l’ordre local des fibrilles à l’intérieur des superstructures amyloïdes, ne nécessitant que de petites modifications de la configuration multiphotonique standard. Puisqu’il fonctionne sur des phénomènes optiques non linéaires, il est possible d’obtenir une photo-sélection angulaire réduite et une résolution axiale améliorée par rapport aux méthodes de microscopie à fluorescence excitée par un photon. De .......
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.
Ce travail a été soutenu par le projet Sonata Bis 9 (2019/34/E/ST5/00276) financé par le Centre national des sciences en Pologne.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Sample preparation | |||
Coverslips, 24 x 24 mm | Chemland | 04-298.202.04 | |
DPX mountant for histology | Sigma-Aldrich | 6522 | Slide mountant |
Eppendorf Safe-Lock tubes, 1.5 mL, polypropylene | Chemland | 02-63102 | |
Eppendorf ThermoMixer C | Eppendorf | Used for spherulite incubation | |
HLP 5UV Water purification system | Hydrolab | Source of dionized water used in sample preparation | |
Hydrochloric acid (≥37%, APHA ≤10), | Sigma-Aldrich | 30721-M | |
Insulin powder from the bovine pancreas (≥25 units/mg (HPLC)) | Sigma-Aldrich | I5500 | |
Methanol (HPLC grade) | Sigma-Aldrich | 270474 | |
Microscope slides with a concave, 76 x 26 x 1 mm | Chemland | 04-296.202.09 | |
Olympus BX60 | Olympus | Polarized Optical Microscope used in Figure 2 | |
PTFE thread seal tape, 12 mm x 12 mm x 0.1 mm, 60 gm2 | Chemland | VIT131097 | |
Microscope ps-2PFM setup | |||
Chameleon Ultra II | Coherent | ||
FELH0800 - Ø25.0 mm Longpass Filter | Thorlabs | ||
FESH0700 - Ø25.0 mm Shortpass Filter | Thorlabs | ||
IDQ100 photon-counting avalanche photodiodes | ID Quantique | ||
Multiphoton short-pass emission filter 720 nm | Semrock | ||
Mounted Achromatic Half-Wave Plate, 690-1200 nm | Thorlabs | ||
Nikon Plan Apo Oil Immersion 100x/1.4 NA | Nikon | ||
piezo 3D stage | Piezosystem Jena | ||
Polarizing Beamsplitter | Thorlabs | ||
S130C - Slim Photodiode Power Sensor, Si, 400 - 1100 nm, 500 mW | Thorlabs | ||
Software | |||
LabView 2018 | National Instruments | Version 18.0.1f2 | |
Matplotlib library | Version 3.3.2 | ||
NumPy library | Version 1.19.2 | ||
SciPy library | Version 1.5.2 | ||
Spyder Python 3 IDE | Version 4.1.5 |
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