S'identifier

Un abonnement à JoVE est nécessaire pour voir ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre essai gratuit.

Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ce protocole présente un modèle de tumeur sur puce physiologiquement pertinent pour effectuer des recherches fondamentales et translationnelles à haut débit sur le cancer humain, en faisant progresser le dépistage des médicaments, la modélisation des maladies et les approches de médecine personnalisée avec une description des procédures de chargement, d’entretien et d’évaluation.

Résumé

L’absence de modèles de cancer validés qui récapitulent le microenvironnement tumoral des cancers solides in vitro reste un goulot d’étranglement important pour la recherche préclinique sur le cancer et le développement thérapeutique. Pour surmonter ce problème, nous avons développé la microtumeur vascularisée (VMT), ou puce tumorale, un système microphysiologique qui modélise de manière réaliste le microenvironnement complexe de la tumeur humaine. La VMT se forme de novo au sein d’une plate-forme microfluidique par co-culture de plusieurs types de cellules humaines dans des conditions d’écoulement dynamiques et physiologiques. Cette construction micro-tumorale issue de l’ingénierie tissulaire intègre un réseau vasculaire perfusé vivant qui soutient la masse tumorale en croissance, tout comme les vaisseaux nouvellement formés le font in vivo. Il est important de noter que les médicaments et les cellules immunitaires doivent traverser la couche endothéliale pour atteindre la tumeur, modélisant in vivo les barrières physiologiques à l’administration et à l’efficacité thérapeutiques. Étant donné que la plate-forme VMT est optiquement transparente, l’imagerie haute résolution de processus dynamiques tels que l’extravasation des cellules immunitaires et les métastases peut être obtenue grâce à la visualisation directe des cellules marquées par fluorescence dans le tissu. De plus, le VMT conserve l’hétérogénéité tumorale in vivo , les signatures d’expression génique et les réponses médicamenteuses. Pratiquement n’importe quel type de tumeur peut être adapté à la plate-forme, et les cellules primaires de tissus chirurgicaux frais se développent et répondent au traitement médicamenteux dans le VMT, ouvrant la voie à une médecine véritablement personnalisée. Ici, les méthodes d’établissement de la VMT et de son utilisation pour la recherche en oncologie sont décrites. Cette approche novatrice ouvre de nouvelles possibilités pour l’étude des tumeurs et des réponses aux médicaments, offrant aux chercheurs un outil puissant pour faire avancer la recherche sur le cancer.

Introduction

Le cancer reste un problème de santé majeur dans le monde et est la deuxième cause de décès aux États-Unis. Pour la seule année 2023, le National Center for Health Statistics prévoit plus de 1,9 million de nouveaux cas de cancer et plus de 600 000 décès par cancer aux États-Unis1, soulignant le besoin urgent d’approches thérapeutiques efficaces. Cependant, à l’heure actuelle, seulement 5,1 % des traitements anticancéreux entrant dans les essais cliniques obtiennent finalement l’approbation de la FDA. L’échec des candidats prometteurs à progresser avec succès dans les essais cliniques peut être en partie attribué à l’utilisation de systèmes modè....

Protocole

1. Conception et fabrication

  1. Conception de l’appareil
    1. Pour la fabrication d’un dispositif microfluidique, créer un moule SU-8 à l’aide d’une couche de 200 μm de SU-8 enrobée par centrifugation sur une plaquette de Si-1 (nettoyée au RCA-1 et traitée au fluorure d’hydrogène (HF) à 2 %), suivie d’une étape de photolithographie à masque unique comme décrit précédemment 8,9.
    2. Coulez une réplique en polydiméthylsiloxane (PDMS) de 4 mm d’épaisseur à partir du moule SU-8 pour générer un moule en polyuréthane durable pour les étapes de fabrication en aval. Diverses itérations....

Résultats Représentatifs

Conformément aux protocoles décrits ici, les VMO et les VMT ont été établies à l’aide de la lignée cellulaire de cancer du sein triple négatif MDA-MB-231 achetée dans le commerce, de la lignée cellulaire de cancer du sein triple négatif. Des VMO établis ont également été perfusés avec des cellules cancéreuses pour imiter les métastases. Dans chaque modèle, au jour 5 de la co-culture, un réseau vasculaire s’auto-assemble en réponse à un écoulement gravitationnel à travers la chambre tissulaire,.......

Discussion

Presque tous les tissus du corps reçoivent des nutriments et de l’oxygène par le biais du système vasculaire, ce qui en fait un élément essentiel pour la modélisation réaliste des maladies et le dépistage des médicaments in vitro. De plus, plusieurs tumeurs malignes et états pathologiques sont définis par un dysfonctionnement de l’endothélium vasculaire et une hyperperméabilité3. Notamment, dans le cancer, la vascularisation associée à la tumeur est souvent mal perfus?.......

Déclarations de divulgation

Le CCWH détient une participation dans Aracari Biosciences, Inc., qui commercialise une version de la technologie décrite dans le présent document. Les termes de cet arrangement ont été examinés et approuvés par l’Université de Californie à Irvine, conformément à ses politiques en matière de conflits d’intérêts. Il n’y a pas d’autres conflits d’intérêts.

Remerciements

Nous remercions les membres du laboratoire du Dr Christopher Hughes pour leur précieuse contribution aux procédures décrites, ainsi que nos collaborateurs du laboratoire du Dr Abraham Lee pour leur aide dans la conception et la fabrication de la plateforme. Ces travaux ont été financés par les subventions suivantes : UG3/UH3 TR002137, R61/R33 HL154307, 1R01CA244571, 1R01 HL149748, U54 CA217378 (CCWH) et TL1 TR001415 et W81XWH2110393 (SJH).

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
Fabrication
(3-Mercaptopropyl)trimethoxysilane, 95% Sigma-Aldrich175617-100G
Greiner Bio-One μClear Bottom 96-well Polystyrene MicroplatesGreiner Bio-One655096
Methanol ≥99.8% ACSVWR Chemicals BDHBDH1135-1LP
MILTEX Sterile Disposable Biopsy Punch with Plunger, 1mm diameter,Integra Miltex33-31AA-P/25
PDMS membranePAX IndustriesHT-6240
Plasma Cleaner PDC-001Harrick PlasmaN/A
Smooth-Cast 385Smooth-OnN/A
SP Bel-Art Lab Companion Clear Polycarbonate Cabinet Style Vacuum DesiccatorBel-ArtF42400-4031
Standard Lids with Condensation Rings, 96-well plateVWR82050-827
SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit (PDMS)Dow4019862
Cell culture/Loading
BioTek Lionheart FX Automated MicroscopeAgilent CYT5MFAW
CELLvo Human Endothelial Progenitor CellsStemBioSysN/A
Collagen I, rat tailEnzo Life Sciences
Collagenase from Clostridium histolyticum (type 4)Sigma-AldrichC5138
Corning Hank’s Balanced Salt Solution, 1X without calcium and magnesiumCorning21-021-CV
Corning DMEM with L-Glutamine, 4.5g/L Glucose and Sodium PyruvateCorning10013CV
DAPISigma-AldrichD9542
DPBS, no calcium, no magnesiumGibco14190144
EGM-2 Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKitLonzaCC-3162
Fibrinogen from bovine plasmaNeta ScientificSIAL-341573
Fibronectin human plasmaSigma-AldrichF0895
Fluorescein isothiocyanate–dextran (70kDa)Sigma-AldrichFD70S-1G
Gelatin from porcine skinSigma-AldrichG1890
Hyaluronidase from sheep testes (type 4)Sigma-AldrichH6254
Laminin Mouse ProteinGibco23017015
Leica TCS SP8LeicaN/A
MDA-MB-231ATCCHTB-26
NHLF – Normal Human Lung FibroblastsLonzaCC-2512
Nikon Eclipse TiNikonN/A
Paraformaldehyde 4% in 0.1M Phosphate BufferSaline, pH 7.4Electron Microscopy Sciences 15735-90-1L
PBMCs - Peripheral blood mononuclear cellsLonzaCC-2702
PBS, pH 7.4Gibco10010049
Premium Grade Fetal Bovine Serum (FBS), Heat InactivatedAvantor Seradigm97068-091
ProLong Gold Antifade MountantInvitrogenP10144
Quick-RNA Microprep KitZymo ResearchR1051
Thrombin from bovine plasmaSigma-AldrichT4648
Triton X-100 (Electrophoresis),Fisher BioReagentsBP151-100
TrypLE Express Enzyme (1X), phenol redGibco12605028
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol redGibco25300062
VasculifeLifeline Cell TechnologyLL-0003

Références

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Wagle, N. S., Jemal, A. Cancer statistics, 2023. CA Cancer J Clin. 73 (1), 17-48 (2023).
  2. Hachey, S. J., Hughes, C. C. W. Applications of tumor chip technology. Lab Chip. 18 (19), 2893-2912 (2018).
  3. Ewald, M.....

Réimpressions et Autorisations

Demande d’autorisation pour utiliser le texte ou les figures de cet article JoVE

Demande d’autorisation

Explorer plus d’articles

Mod le de micro tumeur vascularis eRecherche sur le cancerMicroenvironnement tumoralCancers solidesRecherche pr clinique sur le cancerD veloppement th rapeutiquePuce tumoraleSyst me microphysiologiqueTypes de cellules humainesPlateforme microfluidiqueR seau vasculaire perfusCouche endoth lialeAdministration th rapeutiqueExtravasation des cellules immunitairesM tastasesCellules marqu es par fluorescenceH t rog n it tumoraleSignatures d expression g niqueR ponses m dicamenteusesM decine personnalis e

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Confidentialité

Conditions d'utilisation

Politiques

Recherche

Enseignement

À PROPOS DE JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Tous droits réservés.