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Ce protocole fournit un guide étape par étape pour l’obtention d’un pancréas porcin pour l’isolement et la purification des îlots de Langerhans.
La transplantation d’îlots pancréatiques est un traitement émergent du diabète de type I ; Cependant, il est limité par l’appariement des donneurs et la disponibilité. La xénotransplantation d’îlots porcins offre une alternative prometteuse à l’allotransplantation, avec un potentiel de production à grande échelle d’îlots fonctionnels à la demande. Le rendement et la viabilité des îlots isolés sont très sensibles à la qualité du pancréas du donneur et à la méthode d’obtention, en particulier à la durée de la période d’ischémie chaude. Pour améliorer la préservation des organes ainsi que le rendement et la viabilité ultérieurs des îlots, nous avons développé un protocole de perfusion chirurgicale et de résection du pancréas porcin. Ce protocole utilise la canulation aortique infrarénale directe et la perfusion d’organes pour minimiser le temps d’ischémie chaude et simplifier la procédure pour les opérateurs qui n’ont pas une expertise chirurgicale approfondie. La perfusion artérielle ultérieure du pancréas via l’aorte évacue le sang stagnant de la microvascularisation, réduisant ainsi la thrombose et les dommages oxydatifs aux tissus. Ce manuscrit fournit un protocole détaillé pour la perfusion chirurgicale et la résection du pancréas porcin, suivies de l’isolement et de la purification des îlots.
Le diabète de type 1 est causé par la destruction auto-immune des cellules bêta pancréatiques1. Par conséquent, les patients sont dépendants de l’insuline exogène, ce qui les expose à des fluctuations glycémiques à haut risque avec des épisodes d’hyperglycémie et d’hypoglycémie2. L’allotransplantation d’îlots est un remède potentiel contre le diabète de type I ; Cependant, la disponibilité limitée de donneurs d’organes pancréatiques demeure un obstacle majeur à l’adoption généralisée de la procédure 2,3. La xénotransplantation d’....
Toutes les procédures impliquant des animaux sont approuvées par le Comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux (IACUC) de la Division de médecine comparative de la faculté de médecine de l’Université de Washington. Les porcs Yorkshire adultes pesant de 35 à 35 kg sont idéaux pour cette procédure ; Cependant, le protocole peut être adapté pour des porcs de différentes tailles en fonction du contexte expérimental. L’ensemble de la procédure doit être effectué de manière stérile dans une salle d’opération.
1. Préparation préopératoire et anesthésie
La configuration opératoire et la laparotomie médiane sont illustrées à la figure 1. L’incision de la laparotomie doit être incurvée pour éviter l’ouverture urogénitale (Figure 1B). Lors de la mise en place de l’enrouleur, fixez le poteau de l’enrouleur Omni ou Bookwalter dans le coin inférieur gauche de la table. La rétraction idéale comprend deux lames d’écarteur pour la paroi abdominale droite, deux pour.......
La xénotransplantation d’îlots pancréatiques avec des donneurs porcins est une stratégie prometteuse pour le traitement du diabète de type I. L’isolement des îlots est difficile, et la viabilité et le rendement finaux des îlots sont très sensibles à l’hypotension et à l’ischémie tissulaire rencontrées lors de l’approvisionnement en organes16,17. Pour optimiser l’approvisionnement et la préservation du pa.......
Les auteurs ne signalent aucun conflit d’intérêts.
Ce manuscrit a été soutenu par une subvention d’innovation clinique de la Mid-America Transplant Foundation.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 M NaOH, 100 mL | Millipore Sigma | 1310-73-2 | |
10x HBSS, 500 mL (15 to 30 °C) | Thermo Fisher | 14065056 | |
1x D-PBS, 500 mL | Thermo Fisher | 14200075 | |
1x HBSS, 1 L | Thermo Fisher | 14025076 | |
250 mL Conical Tubes | Millipore Sigma | CLS430236-6EA | |
Amphotericin B [50 mg] | Millipore Sigma | PHR1662 | |
Antiseptic Povidone Iodine 10% | Millipore Sigma | 25655-41-8 | |
BioRad Gradient Former | BioRad | 395 | |
Calcium Chloride dihydrate | Thermo Fisher | 10035-04-8 | |
COBE Cell Processor | Ebay | 317690 | |
Digestion circuit reservoir, Gibco bottle, 1 L | Thermo Fisher | 10341001 | |
Dimethylsulfoxide (DMSO) | Thermo Fisher | 85190 | |
Dithizone | Thermo Fisher | 60-10-6 | |
Gradient Former Connection Kit | BioRad | 1652008 | |
Heparin [1000 U/mL] | Emergency Medical Products | 0409-2720-01 | |
HEPES Buffer (1 M), 100 mL | Thermo Fisher | 15630080 | |
Human Serum Albumin 25%, 100 mL | Celprogen | HSA2001-25-1 | |
Isoflurane | Covetrus | Item#:11695067772 | |
Ketamine | Patterson | Item #:07-894-8462 | |
Liberase (100 mg) | Millipore Sigma | 5401020001 | |
LIVE/DEAD Viability/Cytotoxicity Kit | Thermo Fisher | L3224 | |
Lympholyte 1.1 Media 500 mL | Cedarlane Labs | CL5020 | |
Masterflex LS 16 Tubing | Masterfle | 96419-16 | |
Masterflex Peristaltic Pump | Masterflex | 07522-30 | |
PenStrep (2 mg/mL) | Celprogen | PS-30-002 | |
Pulmozyme (1 mg/mL, 2.5 mL/vial) | Dornase Alfa | 8931278 | |
Recovery Medium, PIM(R) | Prodo Laboratories, Inc. | PIM-R001GMP | |
RPMI 1640 | Millipore Sigma | R8758-1L | |
Standard Culture Medium, PIM(S) | Prodo Laboratories, Inc. | PIM-S001GMP | |
Tzed™ (tiletamine and zolazepam) Injection C | Patterson | Item #:07-894-6240 | |
University of Wisconsin (UW) Solution, 3 L | Global Transplant Solutions | 1000-0046-06 | |
Waterbath | Sigma Alderich | CLS6783-1EA | |
Xylazine | Patterson | Item #:07-891-6165 |
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