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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Une nouvelle méthode d’injection intrapéritonéale (IP) chez le poisson-zèbre adulte est décrite. Lors de la manipulation de composés toxiques tels que la doxorubicine, cette procédure est plus efficace que les deux méthodes de propriété intellectuelle précédemment mentionnées. La technique est conçue pour être facilement adoptée par les chercheurs ayant une expérience limitée du modèle du poisson zèbre.

Résumé

Le poisson-zèbre adulte (Danio rerio), qui est génétiquement accessible, est utilisé comme un modèle de vertébré précieux pour étudier des troubles humains tels que la cardiomyopathie. L’injection intrapéritonéale (IP) est une méthode importante qui délivre des composés dans le corps pour tester des effets thérapeutiques ou générer des modèles de maladies tels que la cardiomyopathie induite par la doxorubicine (CIVD). Actuellement, il existe deux méthodes d’injection IP. Les deux méthodes ont des limites lors de la manipulation de composés toxiques tels que la doxorubicine, qui entraînent des effets secondaires se manifestant par de graves dommages à la forme du corps et la mort des poissons. Bien que ces lacunes puissent être surmontées par une formation approfondie des enquêteurs, une nouvelle méthode d’injection de PI qui a un minimum d’effets secondaires est souhaitable. Ici, une méthode d’injection IP unique capable de gérer des composés toxiques est rapportée. Une réduction constante de la fonction cardiaque peut entraîner sans entraîner de mort significative des poissons. La technique peut être facilement maîtrisée par des chercheurs qui ont une expérience minimale avec les poissons-zèbres adultes.

Introduction

Le poisson-zèbre (Danio rerio) a attiré l’attention en tant que modèle expérimental pour l’étude des maladies humaines parce que cet animal présente une homologie élevée de gènes et d’organes avec les humains, une fécondation externe, une facilité de manipulation génétique et une transparence corporelle jusqu’à la maturité précoce, ce qui facilite une myriade d’applications d’imagerie1. Contrairement au processus simple consistant à administrer des médicaments directement dans l’eau pour les embryons et les larves de poisson-zèbre, l’administration de médicaments aux poissons-zèbres adultes présente une entreprise plus complexe et plus....

Protocole

Toutes les procédures effectuées ont été approuvées par le comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de la Mayo Clinic, conformément aux normes décrites dans le « Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire » (National Academies Press, 2011). Tous les poissons-zèbres de l’étude appartiennent à la souche Wild Indian Karyotype (WIK). Les détails des réactifs et de l’équipement utilisé pour l’étude sont répertoriés dans la table des matériaux.

1. Préparation et stockage de la solution mère de doxorubicine

  1. Obtenez le stock de doxorubicine d’une source commerciale.<....

Résultats Représentatifs

Auparavant, deux méthodes intrapéritonéales (IP) ont été employées pour l’administration de doxorubicine chez le poisson-zèbre adulte 4,10. Dans la méthode I, également connue sous le nom de méthode d’injection IP classique décrite par Kinkel et al.4, l’aiguille a été insérée à un angle de 45° par rapport à la ligne médiane entre les nageoires pelviennes, l’abdomen vers le haut. Dans la méthode II, ou la méthod.......

Discussion

Différente des deux méthodes d’injection IP existantes 4,10, la nouvelle méthode d’injection IP se caractérise par les caractéristiques distinctes suivantes. Tout d’abord, un angle de pénétration unique de l’aiguille est utilisé (proche de zéro) ; deuxièmement, l’aiguille pénètre dans le poisson par un emplacement unique, c’est-à-dire un trou naturel sur la surface ventrale d’un poisson, ce qui faciliterait l’injection ; et .......

Déclarations de divulgation

Aucun.

Remerciements

Cette étude a été soutenue par le NIH (HL107304 et HL081753) et la Fondation Mayo (Center for Biomedical Discovery and Cardiovascular Research Center) à X.X. J.L. est financée par les Fonds de recherche fondamentale pour les Universités centrales de l’Université Central South, n° 56021702. Un merci spécial à Beninio Gore et Quentin Stevens pour la gestion de l’installation de poisson zèbre.

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
10 μL NanoFil-syringeWorld Precision Instruments, IncNANOFILinjection tool
34 G needleWorld Precision Instruments, IncNI34BV-2injcetion tool
60 mm Petri dishfisher scientific/fisherbrandFB0875713Aplacing the sponge 
Dissecting microscopeNikonSMZ800Injceting the Dox
Doxorubicin hydrochlorideSigmaD1515-10MGdrug for creating DIC model 
EchocardiographyVISUAL SONICSVevo 3100measuring cardiac function
Foam SpongeJaece IndustriesL800-Dplacing the fish
Hank's balanced salt solution (HBBS)Thermo Fisher14025076Vehicle for Dox
Microcentrifuge southernlabwareMyFuge/C1012collect the Dox solution 
Precision Balance ScaleTorbalAD60Digital scales
TricaineArgentMS-222Anesthetizing fish
TubeEppendorf1.5 mLstorage 
vevo LAB  softwareFUJIFILM VISUAL SONICS 5.6.0quantification of the heart

Références

  1. Tavares, B., Lopes, S. S. The importance of Zebrafish in biomedical research. Acta Medica Portuguesa. 26 (5), 583-592 (2013).
  2. Dang, M., Henderson, R. E., Garraway, L. A., Zon, L. I. Long-term drug adm....

Réimpressions et Autorisations

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