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* Ces auteurs ont contribué à parts égales
Ici, nous détaillons une approche simple d’imagerie en direct pour quantifier la sensibilité des organoïdes tumoraux dérivés de patients aux rayonnements ionisants.
La radiothérapie (RT) est l’un des piliers de la prise en charge clinique moderne du cancer. Cependant, tous les types de cancer ne sont pas aussi sensibles à l’irradiation, souvent (mais pas toujours) en raison des différences dans la capacité des cellules malignes à réparer les dommages oxydatifs à l’ADN provoqués par les rayons ionisants. Les tests clonogéniques sont utilisés depuis des décennies pour évaluer la sensibilité des cellules cancéreuses en culture à l’irradiation ionisante, en grande partie parce que les cellules cancéreuses irradiées meurent souvent d’une manière retardée qui est difficile à quantifier avec des techniques assistées par cytométrie en flux à court terme ou par microscopie. Malheureusement, les tests clonogéniques ne peuvent pas être utilisés en tant que tels pour des modèles tumoraux plus complexes, tels que les organoïdes tumoraux dérivés de patients (PDTO). En effet, l’irradiation des PDTO établies n’interrompt pas nécessairement leur croissance en tant qu’unités multicellulaires, à moins que leur compartiment semblable à celui d’une tige ne soit complètement éradiqué. De plus, l’irradiation de suspensions unicellulaires dérivées de PDTO peut ne pas récapituler correctement la sensibilité des cellules malignes à la RT dans le contexte des PDTO établies. Ici, nous détaillons une adaptation des tests clonogéniques conventionnels qui implique l’exposition de PDTO établis à des rayonnements ionisants, suivie d’une dissociation unicellulaire, d’un replacage dans des conditions de culture appropriées et d’une imagerie en direct. Des cellules souches non irradiées (témoins) dérivées de PDTO reforment des PDTO en croissance avec une efficacité spécifique à PDTO, qui est négativement influencée par l’irradiation de manière dose-dépendante. Dans ces conditions, l’efficacité et le taux de croissance de la formation des PDTO peuvent être quantifiés comme une mesure de la radiosensibilité sur des images en accéléré collectées jusqu’à ce que les PDTO de contrôle atteignent une occupation d’espace prédéfinie.
La radiothérapie externe (RT) est l’un des piliers de l’oncologie moderne, reflétant non seulement une activité anticancéreuse prononcée associée à un spectre bien défini d’effets secondaires généralement gérables1, mais aussi une disponibilité clinique exceptionnellement répandue (la plupart des centres de cancérologie des pays développés sont équipés d’accélérateurs linéaires modernes pour la RT externe)2. Conformément à cette notion, la RT est utilisée avec succès à l’échelle mondiale à des fins curatives, généralement dans le contexte d’une maladie à un stade précoce
Les réactifs et l’équipement utilisés dans l’étude sont énumérés dans la table des matériaux.
1. Culture d’organoïdes
REMARQUE : Les PDTO TNBC#1 ont été établies dans notre laboratoire sur la base d’un tissu tumoral retiré chirurgicalement d’une patiente atteinte d’un cancer du sein triple négatif (TNBC) qui a fourni un consentement éclairé pour participer à un protocole de biobanque (IRB21-06023682). Après validation par histologie et séquençage de l’ARN (RNAseq), les PDTO TNBC#1 sont cultivés en gouttes de matrigel à 66 % (appelées « dômes ») dan....
Les PDTO TNBC#1 ont été exposés à une dose unique de rayonnement de 0 (témoins non irradiés), 2 Gy, 4 Gy, 6 Gy, 8 Gy ou 10 Gy le jour 0. Immédiatement après, les PDTO ont été dissociés pour obtenir une suspension unicellulaire pour chaque condition expérimentale. Les cellules dérivées de PDTO ont ensuite été ensemencées dans des plaques de 48 puits à l’intérieur de dômes matrigels à 66 % (50 μL chacun) déposés au centre des puits, en 3 répétitions techniques p.......
Ici, nous décrivons une adaptation des tests clonogènes conventionnels qui exploite les PDTO du cancer du sein et l’imagerie en direct pour quantifier la radiosensibilité des PDTO en fonction de (1) la persistance des cellules souches formant des PTDO lors de l’irradiation des PDTO in vitro, et (2) le taux de croissance des PDTO que ces cellules (peuvent) générer. Les étapes critiques de ce protocole comprennent (1) l’établissement de PDTO à une occupation du dôme.......
Sans rapport avec ce travail, SCF détient ou a détenu des contrats de recherche avec Merck, Varian, Bristol Myers Squibb, Celldex, Regeneron, Eisai et Eli-Lilly, et a reçu des honoraires de consultant/conseiller de Bayer, Bristol Myers Squibb, Varian, Elekta, Regeneron, Eisai, AstraZeneca, MedImmune, Merck US, EMD Serono, Accuray, Boehringer Ingelheim, Roche, Genentech, AstraZeneca, View Ray et Nanobiotix. Sans lien avec ce travail, SD a reçu des honoraires de consultation de Lytix Biopharma, d’EMD Serono, d’Ono Pharmaceutical, de Genentech et de Johnson & Johnson Enterprise Innovation Inc., et détient ou a conclu des contrats de recherche avec Lytix Biopharma, Nanobiotix et Boehringer-Ingelheim. Sans lien avec ce travail, LG détient ou a conclu des contrats de recherche avec Lytix Biopharma, Promontory et Onxeo, a reçu des honoraires de consultation et de consultation de Boehringer Ingelheim, AstraZeneca, OmniSEQ, Onxeo, The Longevity Labs, Inzen, Imvax, Sotio, Promontory, Noxopharm, EduCom et la Fondation Luke Heller TECPR2, et détient des options d’achat d’actions Promontory.
Nous remercions Raymond Briones et Wen H. Shen (Weill Cornell Medical College, New York, NY, États-Unis) pour leur aide dans le développement de ce protocole. Ce travail a été soutenu par une subvention du Transformative Breast Cancer Consortium du US DoD BCRP (#W81XWH2120034, PI : Formenti).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
40 µm mesh filter | Thomas Scientific | 1164H35 | |
B27 | Invitrogen | 17504-044 | |
Cellometer Auto T4 Bright Field Cell Counter | Nexcelom | ||
DMEM F/12 | Corning | 12634-010 | |
Epidermal Growth Factor hEGF | Peprotech | AF-100-15 | |
EVOS FL Digital Inverted Fluorescence Microscope | Thermo Fisher Scientific | 12-563-460 | |
FGF10 | Peprotech | 100-26 | |
FGF7 | Peprotech | 100-19 | |
GlutaMax | Invitrogen | 35050061 | |
Hepes | Invitrogen | 15630-080 | |
IncuCyte software 2021A | Sartorius | version: 2021A | |
Incucyte SX1 | Sartorius | model SX1 | |
Incucyte validated 48 well plate | Corning | 3548 | |
Matrigel | Discovery Labware | 354230 | |
nAc | Sigma Aldrich | A9165-5G | |
Nicotinamide | Sigma-Aldrich | N0636 | |
Noggin | Purchased from the Englander Institute for Precision Medicine, Weill Cornell, NY, USA | ||
Non-treated 6 well plate | Cellstar | 657 185 | |
NR (Heregulin) | Peprotech | 100-03 | |
p38 MAP inhibitor p38i SB202190 | Sigma Aldrich | S7067 | |
PBS | Corning | 21-040-CV | |
PenStrep | Invitrogen | 15140-122 | |
Primocin | Invivogen | ant-pm-1 | |
Rspondin Media | Purchased from the Englander Institute for Precision Medicine, Weill Cornell, NY, USA | ||
Small Animal Radiation Research Platform (SARRP) | Xstrahl Ltd | ||
TGFbeta Receptor Inhibitor A83-01 | Tocris | 2939 | |
Trypan blue Stain (0.4%) | Gibco | 15250-61 | |
TrypLE | Gibco | 112605-028 | |
Y-27632 (RhoKi) | Selleck | S1049 |
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