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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ce protocole décrit la procédure de dissociation rapide des échantillons de tumeurs humaines et de souris pour le séquençage de l’ARN sur cellule unique.

Résumé

Les échantillons de tumeurs humaines contiennent une pléthore d’informations sur leur microenvironnement et leur répertoire immunitaire. La dissociation efficace d’échantillons de tissus humains en suspensions cellulaires viables est une donnée d’entrée nécessaire pour le pipeline de séquençage de l’ARN unicellulaire (scRNAseq). Contrairement aux approches de séquençage de l’ARN en vrac, le scRNAseq nous permet de déduire l’hétérogénéité transcriptionnelle dans les échantillons tumoraux au niveau de la cellule unique. L’intégration de cette approche au cours des dernières années a conduit à de nombreuses découvertes, telles que l’identification d’états cellulaires immunitaires et tumoraux et de programmes associés aux réponses cliniques aux immunothérapies et à d’autres types de traitements. De plus, les technologies unicellulaires appliquées aux tissus dissociés peuvent être utilisées pour identifier les régions de chromatine accessibles, le répertoire des récepteurs des lymphocytes T et B, et l’expression des protéines, à l’aide d’anticorps à code-barres d’ADN (CITEseq).

La viabilité et la qualité de l’échantillon dissocié sont des variables critiques lors de l’utilisation de ces technologies, car elles peuvent affecter considérablement la contamination croisée de cellules uniques avec de l’ARN ambiant, la qualité des données et l’interprétation. De plus, les protocoles de dissociation longs peuvent conduire à l’élimination de populations cellulaires sensibles et à la régulation positive d’une signature génique de réponse au stress. Pour surmonter ces limitations, nous avons conçu un protocole de dissociation universelle rapide, qui a été validé sur plusieurs types de tumeurs humaines et murines. Le processus commence par une dissociation mécanique et enzymatique, suivie d’une filtration, d’une lyse des globules rouges et d’un enrichissement des cellules mortes vivantes, ce qui convient aux échantillons à faible apport de cellules (par exemple, les biopsies à l’aiguille). Ce protocole garantit une suspension unicellulaire propre et viable, essentielle à la génération réussie d’émulsions de billes de gel (GEM), de codes-barres et de séquençage.

Introduction

Bien que de nombreuses avancées dans la recherche sur le cancer aient conduit au développement et à l’approbation par la FDA d’agents ciblant les récepteurs inhibiteurs exprimés sur les cellules immunitaires et tumorales, connus sous le nom d’inhibiteurs de blocage de points de contrôle, la résistance au traitement et l’identification des mécanismes qui déterminent la réponse des patients restent difficiles1. Le défi complexe de caractériser l’hétérogénéité tumorale sur sa diversité moléculaire et l’interaction complexe entre les cellules tumorales et le microenvironnement immunitaire nécessite de nouvelles approches pour disséquer cet écosystè....

Protocole

Cette étude a respecté toutes les directives institutionnelles concernant l’échantillonnage de tissus humains. Le consentement éclairé des patients a été reçu et les données identifiables de l’échantillon ont été anonymisées. Les échantillons sont prélevés dans la salle d’opération, placés dans une solution de RPMI, de sérum physiologique ou de PBS, et confirmés cancéreux par le service de pathologie avant d’être utilisés dans la recherche. Toutes les étapes, sauf indication contraire, doivent être effectuées à 4 °C ou sur glace. Travaillez à l’intérieur d’une cagoule de biosécurité lors du traitement de tissus humains. Voir le tableau des matériaux p....

Résultats Représentatifs

Une biopsie du mélanome suspendue dans un RPMI a été obtenue et immédiatement placée sur de la glace. L’échantillon a été transféré dans un tube de microcentrifugation de 1,5 mL contenant 420 μL de RPMI et d’enzymes de digestion, haché en petits morceaux à l’aide de ciseaux, puis soumis à une digestion enzymatique pendant 15 min dans un mélangeur thermique positionné verticalement à 37 °C (figure 1). Après la digestion, l’échantillon a été filtré à travers un .......

Discussion

Ce protocole décrit la dissociation d’échantillons tumoraux humains ou murins en une suspension unicellulaire pour le séquençage de l’ARNsc à l’aide du système microfluidique 10x Genomics. Lors du traitement de tissus qui proviennent souvent de cancers rares ou qui font partie d’essais cliniques en cours ou de longues expériences pour des tumeurs murines, l’échantillon doit être conservé de manière optimale et soigneuse entre toutes les étapes. Toutes les étapes doivent être effectuées rapidement.......

Déclarations de divulgation

M.S-F. a reçu un financement de Bristol Myers-Squibb, d’Istari Oncology, et a été consultant pour Galvazine Therapeutics.

Remerciements

Cette étude a été financée par la Fondation Adelson pour la recherche médicale (AMRF), l’Alliance de recherche sur le mélanome (MRA) et U54CA224068. Les figures 1, 4 et 5 ont été créées à l’aide de BioRender.com.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
1x PBSCorning21-040-CV
10 mL serological pipetteCorning357551
1000 μL low-retention pipette tipsRainin30389213
1000 μL low-retention wide pipette tipsRainin30389218
1000 μL pipette tipsRainin30389212
10x Magnetic Separator10x Genomics120250
15 mL conical tubesCorning430052
2 mL aspirating pipetteCorning357558
20 μL low-retention pipette tipsRainin30389226
20 μL pipette tipsRainin30389225
200 μL low-retention pipette tipsRainin30389240
200 μL pipette tipsRainin30389239
50 mL Polypropylene Conical TubeFalcon352098
60 x 15 mm Tissue Culture DishFalcon353004
ACK Lysing BufferGibcoA10492-1
BD 1 mL syringeBecton, Dickinson and Company3090659
Bright-Line HemocytometerHausser Scientific551660
Calcium Chloride SolutionSigma Aldrich2115-100ML
Cell Ranger 10x GenomicsN/Ahttps://www.10xgenomics.com/support/software/cell-ranger/latest
Cell counting slides for TC20 cell counterBio-Rad1450015
CellTrics 30μm sterile disposable filtersSysmex04-004-2326
CellTrics 50μm sterile disposable filtersSysmex04-004-2327
Dead Cell removal Kit Miltenyi Biotec130-090-101Store at -20 °C; kit 2
Dissecting Forceps, Fine TipVWR82027-386
DNA LoBind Microcentrifuge tubes, 1.5 mLEppendorf22431021
EasySepTM Dead Cell Removal
(Annexin V) Kit
STEMCELL Technologies17899Store at 4 °C; Kit 1
Eppendorf centrifuge 5425REppendorf5406000640
Eppendorf centrifuge 5910REppendorf2231000657
Eppendorf Easypet 3 Electronic Pipette controllerEppendorfEP4430000018
Eppendorf Thermomixer F1.5 Model 5384EppendorfEP5384000012
FBSGibco26140-079Store at 4 °C, use in a Biological hood
German Stainless ScissorsFine Science Tools14568-12
Leica Dmi1 MicroscopeLeica Microsystems454793
LS ColumnMiltenyi Biotec130-042-401
MACS MultistandMiltenyi Biotec130-042-303
Pipet-Lite LTS Pipette L-1000XLS+Rainin17014382
Pipet-Lite LTS Pipette L-200XLS+Rainin17014391
Pipet-Lite LTS Pipette L-20XLS+Rainin17014392
Quadro MACS MagnetMiltenyi Biotec130-091-051
RPMI Medium 1640 (1x)Gibco21870-076Store at 4 °C
TempAssure 0.2 mL PCR 8-Tube stripsUSA Scientific1402-4700
Trypan blue stain 0.4%Thermo Fisher ScientificT10282
Tumor Dissociation Kit, HumanMiltenyi Biotec130-095-929Store at -20 °C, prepare enzymes according to kit instructions:
Reconstitute lyophilized Enzyme H vial in 3 mL of RPMI 1640
Reconstitute lyophilized Enzyme R vial in 2.7 mL of RPMI 1640
Reconstitute lyophilized Enzyme A vial in 1 mL of Buffer A supplied with the kit.
Tumor Dissociation Kit, MouseMiltenyi Biotec130-096-730Store at -20 °C, prepare enzymes according to kit instructions:
Reconstitute lyophilized Enzyme D vial in 3 mL of RPMI 1640
Reconstitute lyophilized Enzyme R vial in 2.7 mL of RPMI 1640
Reconstitute lyophilized Enzyme A vial in 1 mL of Buffer A supplied with the kit.
UltraPure Distilled WaterInvitrogen10977-015Store at 4 °C

Références

  1. Liu, C., Yang, M., Zhang, D., Chen, M., Zhu, D. Clinical cancer immunotherapy: Current progress and prospects. Front Immunol. 13, 961805 (2022).
  2. Baghban, R., et al. Tumor microenvironment complexity and therapeutic i....

Réimpressions et Autorisations

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