Pour commencer, inspectez les muscles d’intérêt disséqués de la souris sacrifiée pour l’absence d’éclats d’os ou de bords déchiquetés et coupez-les avec des ciseaux tranchants si nécessaire. Pesez les muscles nettoyés à l’aide d’une balance analytique et notez leur poids. Après avoir placé le muscle dans au moins 0,1 millilitre de 1% SDS par milligramme de poids, placez la plaque de puits sur un agitateur à bascule réglé sur 50 à 80 Hertz.
Inspectez visuellement la solution SDS périodiquement. Lorsque la solution devient trouble, retirez la solution à l’aide d’une pipette sans aspirer les muscles et remplacez-la par un volume égal de SDS frais à 1 %. Lorsque la solution reste claire pendant 24 heures, retirez la solution finale de SDS des muscles décellularisés et remplacez-la par un volume égal de PBS.
Inspectez les muscles décellularisés au microscope stéréoscopique et retirez soigneusement les poils ou les débris collés au muscle à l’aide d’une pince. Retirez délicatement le PBS et remplacez-le par un volume égal de formaldéhyde à 3,7 % avant de remettre la plaque dans le shaker à bascule pendant 24 heures.
