Pour commencer, prenez une bouteille de mouches, transférez-les dans une nouvelle bouteille tous les sept jours en synchronisation avec leur cycle de croissance. Collectez la prochaine génération de mouches qui éclosent de la bouteille initiale trois jours après le transfert et placez-les dans une nouvelle bouteille. Ensuite, placez le tube de verre dans un grand bécher.
Remplissez-le d’eau distillée double et faites bouillir pendant 20 minutes. Retirez ensuite et regroupez le tube en verre. Rincez-le trois à cinq fois avec de l’eau distillée double et placez le tube en verre dans un four pour le faire sécher.
À l’aide d’une pipette, ajoutez quatre millilitres de tampon d’échantillon et de réserpine dans un petit bécher de 10 millilitres. Pour le groupe témoin négatif, ajouter du diméthylsulfoxyde jusqu’à ce que la concentration atteigne 0,2 %Insérez soigneusement une longueur appropriée de tube de verre dans un petit bécher pour faciliter l’écoulement du milieu. Attendez que le milieu de culture se solidifie complètement.
Avant de retirer le tube de verre, essuyez la paroi extérieure pour obtenir un tube de verre de surveillance en vous assurant qu’une extrémité contient le milieu de culture contenant les médicaments. Ensuite, chauffez la paraffine solide dans un bécher à 70 degrés Celsius jusqu’à ce qu’elle fonde. Plongez l’extrémité du tube de verre dans la paraffine liquide pendant environ cinq millimètres et retirez-la rapidement.
Attendez que la paraffine se solidifie pour sceller l’extrémité alimentaire du tube en verre. Mettez les mouches anesthésiées dans des tubes en verre scellés à la paraffine et bloquez l’extrémité non alimentaire avec une boule de coton absorbante. Chargez les tubes sur un moniteur infrarouge pour les surveiller.
Alignez chaque tube de manière à ce que les rayons infrarouges traversent verticalement le centre de la plage active des mouches. Placez le moniteur à l’intérieur d’un incubateur logé dans la chambre noire du sommeil des mouches.
