Une fois que les yeux porcins énucléés d’une boucherie inspectée par l’USDA arrivent au laboratoire, procédez à l’ablation des tissus extérieurs. Tenez le muscle attaché à l’œil d’une main. À l’aide d’un scalpel, coupez doucement le tissu entourant la sclérotique avec l’autre main.
Utilisez des ciseaux à iris incurvés pour couper le nerf optique. Placez ensuite l’œil sur la glace avec la cornée vers le bas. Pour la dissection, à l’aide d’une pince à épiler, transférez l’œil dans le puits contenant une solution de povidone iodée à 10 % et faites-le pivoter pour vous assurer qu’il est entièrement enrobé.
Placez une gaze stérile sur le couvercle inversé peu profond de la boîte de Pétri. Placez une passoire dans une boîte de Pétri séparée. Transférez l’œil de la solution de povidone iodée dans le puits contenant le DPBS et lavez-le pendant environ cinq secondes.
Ensuite, déplacez-le progressivement vers les puits suivants contenant du DPBS pour diluer la solution d’iode. Ensuite, placez l’œil sur la gaze stérile. À l’aide d’un scalpel, faites une petite incision sous l’ora serrata, ou environ un tiers du globe à partir du bord de l’iris.
Utilisez des ciseaux à iris pour couper uniformément le long de la circonférence du globe parallèle à la cornée. Utilisez la pince à épiler pour saisir le nerf optique et soulevez doucement le globe de la gaze. Placez l’œilleton dans la passoire de cellules préparée, l’intérieur de l’œilleton vers le haut.
Ajoutez doucement du DPBS froid dans l’œilleton, en vous assurant que le niveau de liquide est juste en dessous du point le plus bas de l’incision.
