Pour commencer, positionnez la puce microfluidique sur le support des photomètres de masse et mesurez l’échantillon de photométrie de masse. Une fois l’acquisition des données terminée, ouvrez le logiciel d’analyse des données. Pour charger un fichier à analyser, cliquez sur l’icône plus en haut à gauche, puis sélectionnez le fichier d’étalonnage mp.
Le logiciel commencera à analyser le fichier et le temps nécessaire peut varier en fonction de la taille du fichier et du nombre de mesures. Pour calibrer la masse, appuyez sur le bouton de création d’étalonnage de masse situé en bas à droite. Une boîte de dialogue affichant un tableau avec les valeurs de contraste des pics ajustés apparaîtra.
Modifiez les valeurs de la table pour qu’elles correspondent aux valeurs de masse connues des pics ajustés. Cliquez ensuite sur Enregistrer. Le nouveau fichier d’étalonnage sera affiché dans le panneau d’étalonnage de masse en bas à gauche du logiciel d’analyse de données.
Pour ajouter un fichier d’exemple, cliquez sur l’icône plus en haut à gauche et sélectionnez le fichier d’exemple mp. Pour créer un histogramme de masse, accédez à l’onglet d’analyse, sélectionnez le mode d’histogramme, puis choisissez l’option de tracé de masse. Ajustez la largeur du bac, les limites de masse et d’autres paramètres nécessaires au besoin.
Personnalisez davantage le tracé dans l’onglet des figures comme vous le souhaitez. Après la personnalisation, exportez les figures ou enregistrez l’intégralité de l’espace de travail sous forme de fichier DMP. Les mesures par photométrie de masse avec dilution manuelle ont abouti à un histogramme de masse où les deux plus grands pics correspondaient à des monomères FcRn non liés et à des monomères d’anticorps d’immunoglobuline G.
De plus, deux pics supplémentaires ont été clairement observés à 196 et 251 kilodaltons correspondant à des complexes d’immunoglobine G FcRn avec des stœchiométries un à un et un à deux stœchiométries.
