Pour commencer, placez la souris anesthésiée en décubitus dorsal sur le champ opératoire. Appliquez de l’i-gel et fixez le cône nasal avec du ruban chirurgical. Fixez ensuite les pattes avant et arrière de la souris avec du ruban chirurgical.
Examinez le bas-ventre de la souris à la recherche de la vessie. Pour aider à créer de l’espace dans l’abdomen pendant la chirurgie, induisez la miction en appliquant doucement une pression externe sur la vessie entre le pouce, l’index et le majeur. Utilisez un morceau de gaze pour évacuer l’urine.
Désinfectez l’abdomen avec de l’iode ou un gommage à base de chlorhexidine, en commençant par le centre et en travaillant vers l’extérieur dans un mouvement circulaire. Puis répétez trois fois avec 70% d’alcool. Effectuez un pincement des orteils pour confirmer la profondeur de l’anesthésie.
Ensuite, placez un champ chirurgical sur la souris avec l’ouverture directement sur l’abdomen préparé chirurgicalement. Remplacez les gants par des gants stériles. Utilisez un scalpel pour faire une incision abdominale médiane d’environ 2 à 3 centimètres de longueur.
Soulevez les muscles droits avec une pince pour identifier la linea alba translucide. Utilisez des ciseaux pour pénétrer dans la cavité abdominale par la linea alba. S’étendent ensuite le long de la linea alba proximale et distale.
Humidifiez une bande de gaze et deux cotons-tiges avec une solution saline chaude. Créez un rouleau abdominal en roulant fermement une extrémité de la gaze à mi-chemin, en laissant une queue généreuse. À l’aide d’un écarteur cutané, rétractez la paroi abdominale droite.
À l’aide d’écouvillons en coton humide, effectuez une rotation viscérale médiale droite en balayant doucement l’intestin grêle et le gros intestin vers le quadrant supérieur gauche pour visualiser l’aorte et la veine cave inférieure. Après avoir rétracté l’intestin hors de vue, rentrez l’extrémité roulée de la gaze sous l’intestin. Ensuite, amenez la queue autour et hors du corps pour emmailloter doucement l’intestin.
Appliquez une légère tension sur la queue de la gaze pour maintenir l’intestin hors du champ de vision. Ajustez le rouleau abdominal et l’écarteur cutané pour obtenir une vue optimale des organes rétropéritonéaux. Après avoir confirmé que la veine cave inférieure et l’aorte infrarénale sont bien visibles, exposez l’aorte en pénétrant et en divisant le fascia rétropéritonéal.
Identifiez les artères gonadiques qui sont parallèles le long de l’aorte infrarénale antérieure. À l’aide d’une pince, divisez brusquement le fascia entre les artères gonadiques et continuez longitudinalement pour exposer l’aorte vers l’avant. Maintenant, à l’aide des pointes de pinces, écartez doucement les fibres du tissu conjonctif entre l’aorte et la veine cave inférieure et continuez à travailler circonférentiellement autour de l’aorte à ce niveau.
Continuez à disséquer brusquement le plan entre l’aorte et la veine cave inférieure, en travaillant caudalement vers la bifurcation aortique. Une fois que le bord droit de l’aorte est séparé de la veine cave inférieure, retournez proximalement au niveau de la veine rénale gauche. Disséquez le fascia rétropéritonéal du bord latéral gauche de l’aorte, en travaillant circonférentiellement autour jusqu’à ce que l’aorte soit complètement isolée.
Après avoir examiné l’aorte isolée, placez une bande de gants le long des bords droit et gauche de l’aorte. À l’aide d’un pied à coulisse portatif stérile, mesurez le diamètre aortique le plus large. Tamponnez tout excès de sang ou de liquide de l’aorte à l’aide d’un coton-tige.
Placez un morceau de gaze sèche de 10 x 2 millimètres sur l’aorte. À l’aide d’une pipette, ajoutez 5 microlitres d’élastase pour saturer la gaze et l’aorte. Pliez doucement les morceaux du gant autour de l’aorte pendant 5 minutes.
Après 5 minutes, réinitialisez les rétractions intestinales et dépliez les morceaux du gant. Irriguez la cavité abdominale avec 1 millilitre de solution saline chaude stérile à 0,9 % tout en retirant soigneusement la gaze et les morceaux de gants de l’aorte. Absorbez la solution saline dans l’abdomen avec de la gaze.
À l’aide d’un pied à coulisse portatif, mesurez à nouveau le diamètre aortique le plus large après l’application d’élastase. Retirez délicatement le rouleau abdominal sous l’intestin et hors du corps. Observez pour vous assurer que l’intestin semble rose et correctement perfusé.
Rapprochez le fascia abdominal à l’aide d’une suture monofilament non résorbable 5-0. Fermez la peau avec 3-4 agrafes cutanées. Les souris mâles traitées à l’élastase ont montré une augmentation de 43,4 % du diamètre de l’aorte après 5 minutes d’exposition par rapport aux diamètres aortiques de base non traités, tandis que les aortes femelles traitées ont augmenté de 33,6 %.
Parmi les souris traitées par des femelles, trois sur six sont mortes d’une rupture de l’AAA, tandis qu’aucune rupture de l’AAA n’a été observée chez les mâles traités. À 28 jours, le diamètre moyen de l’AAA des mâles traités était d’environ 2,86 millimètres, avec une variation moyenne en pourcentage de 257. Alors que les diamètres AAA des souris femelles traitées survivantes étaient de 3,6 millimètres, avec une variation moyenne en pourcentage de 417.
Les souris factices, qui n’ont montré aucun changement dans les diamètres aortiques.
