Fondamentalement, tous les champignons sont des symbiotes végétaux anciens et essentiels, et ils améliorent l’absorption des nutriments par l’hôte et sont également des acteurs clés de la santé cellulaire. Bien que les micro-organismes cellulaires soient difficiles à étudier, notre protocole permet une surveillance en temps réel, une observation numérique et l’établissement efficace de cultures à rayon unique. Actuellement, les champignons AM sont multipliés en culture en pot, en serre ou in vitro à l’aide de racines transformées Ri T-DNA.
Les deux technologies ont contribué de manière significative à la connaissance de ces champignons AM au cours de la dernière décennie, mais elles ont des limites spécifiques. L’évaluation de l’établissement réussi du partenaire fongique repose sur la présence d’arbuscules dans les racines ou de spores dans le sol. La multiplication in vitro permet des vies, plus de suivi, mais nécessite des voies de transformation et des conditions stériles limitant son applicabilité à de nombreuses espèces fongiques de MA.
Les techniques de culture en pot ou de culture in vitro utilisées pour étudier les CMA ont des limites en termes d’observation vivante et de propagation réussie. Pour surmonter ces limitations, nous avons développé ce système autotrophe super absorbant à base de polymères, SAP-AS, qui est une technique simple et peu coûteuse qui combine les avantages de la culture in vitro et de la culture en pot. Notre laboratoire se concentrera sur l’amélioration de l’établissement de nouvelles espèces fongiques AM dans les cultures de spores uniques et sur l’étude de l’interaction que nous avons supervisée chez les micro-organismes.
Cette technique nous permettra d’étudier la dynamique compétitive entre les différentes espèces de champignons AM, le mécanisme de propagation des défauts élevés et les processus d’absorption des nutriments.
