JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

שיטה מהירה להשיג leukocytes חדירה מהמוח Murine מתואר. שיטה זו מנצלת שיפוע Percoll רציפה שיפוע Ficoll רציפה כדי לבחור ולטהר את שכבת ליקוציט מועשר. Leukocytes מבודד ואז עלול להיות מאופיין על ידי מדידות זרימת cytometric.

Abstract

אנו מתארים שיטה להכנת leukocytes המוח הסתננות (BILs) מעכברים. אנו מדגימים כיצד להדביק עכברים עם Encephalomyelitis Murine Theiler של הנגיף (TMEV) באמצעות טכניקת ההזרקה מהירה תוך גולגולתי ואיך לטהר אוכלוסייה ליקוציט מועשר של תאים שחדרו מן המוח כולו. בקצרה, בעכברים מורדמים עם isoflurane בתא סגור חופשיים יד מוזרק בעזרת מזרק המילטון לתוך קליפת המוח הקדמית. עכברים נהרגים אז לאחר ההדבקה באמצעות מנת יתר isoflurane והמוח כולו בזמנים שונים המחולצים, ומעורים ב RPMI עם מטחנת רקמה Tenbroeck. Homogenates המוח הם centrifuged דרך שיפוע Percoll רציפה של 30% כדי להסיר את פסולת התא המיאלין אחרים. ההשעיה התא הוא מתוח אז 40 מיקרומטר, שטף centrifuged על שיפוע רציפה פלוס Ficoll-Paque לבחור ולטהר את לויקוציטים. Leukocytes נשטפים אז resuspended ב buffers מתאים immunophenotyping ידי cytometry הזרימה. Cytometry זרימה מגלה אוכלוסייה של תאים חיסוניים מולדים בשלבים המוקדמים של דלקת בעכברים C57BL / 6. ב 24 שעות שלאחר זיהום, תת מרובות של תאים חיסוניים נמצאים BILs, עם האוכלוסייה העשירה של Gr1 + + ו CD11b F4/80 + תאים. לכן, שיטה זו שימושית המאפיינת את התגובה החיסונית דלקת חדה במוח.

Protocol

1. וירוס הזרקה תוך גולגולתי:

הטכניקה הבאה שונתה והוא מנוצל באופן נרחב על ידי המעבדה שלנו ועמיתיו. בקצרה, הזרקה תוך גולגולתי של המתח של דניאל של Encephalomyelitis Murine Theiler של הנגיף (TMEV) או העמדת פנים, זיהום (1, 10) מתבצע על עכברים צעירים (רצוי 5-6 שבועות של גיל) כדי לעורר leukocytes המוח הסתננות (BILs). שים לב כי התוצאות יהיו שונות בין המתח של דניאל, זן שעועית, והמתח GDVII. לצורך קצירת BILs, עכברים לקבל 2x10 5 PFU של TMEV ו נגועים למשך 24 שעות.

  1. צרף את מחט הזריקה (27 מד, ¼ ב, Kendall), כדי מזרק אוטומטי המילטון 1 מ"ל ולהגדיר לספק 10 μl של הנגיף.
  2. צייר את TMEV ב 10 DMEM μL לתוך המזרק עם תשומת לב קפדנית בועות אוויר. כאשר מתאים, עכברים דמה נגוע לקבל 10 μl של מווירוסים DMEM.
  3. רק לפני הזריקה, לשפוך כ 1 מ"ל של isoflurane לצנצנת פעמון המכיל רשת חוטי כותנה עם המצע שמתחת.
  4. עכברים מקום direclty על רשת תיל בצנצנת בפעמון עד שהם הופכים הרדים בקלילות, רגישות לצבוט-הבוהן משותקת על ידי נשימתית הרדמה, כ 10-15 שניות. עכברים לא צריך לבוא במגע ישיר עם isoflurane, כחומר יכול להיות מעצבן מאכל.
  5. בעוד תחת הרדמה, להכין עכברים להזרקה על ידי במהירות באיתור הקואורדינטות המתאימות באזור קליפת המוח הקדמית על הגולגולת באמצעות גילוח דיות. המיקום הכללי להזרקה הוא 1 מ"מ הקדמי כדי גבחת ו 1 מ"מ לרוחב תפר sagittal בצד ימין (איור 1). בעוד זריקה stereotactic עשוי להתאים כמה מצבים ניסיוני, מצאנו כי יד חופשית הזרקה ללא גילוח או דיות מתאים רוב הניסויים. קריעת פרווה עם נקודת מחט לאורך צירים גם מתאים ההזרקה.
  6. כדי לעשות זריקה, המזרח בניצב מחט לגולגולת ולחץ דרך העצם עד לעומק של כ 3 מ"מ.
  7. אקספרס וירוס לתוך המוח ידי לחיצה על כפתור מזרק המילטון למטה מחכים 2 שניות הנגיף להזין את המוח לפני נסיגה.
  8. מוציאים בזהירות את המחט במקום עכבר בכלוב, נקי ויבש. עכברים להתעורר מן ההרדמה במהירות ולהמשיך לתפקד נורמלי בתוך דקות. תנו תשומת לב ראויה עכברים סימפטומים חריגים, כגון דימום יתר מאתר ההזרקה, כמו המתת חסד של בעלי החיים עשויים להיות מתאימים. טיפול בבעלי חיים פרופר 6 ודבקות המכונים הלאומיים לבריאות טיפוח בעלי חיים מוסדיים ועדת הנחיות שימוש חייב להיות אחריו.

2. Brain-הסתננות הכנה תא ליקוציט:

  1. הכן מסביב לתחתית באוקרידג' צנטריפוגות צינורות אשר יכול להכיל קיבולת של 30 מ"ל עם 10 מ"ל RPMI 1640, 9 Percoll מ"ל ו 1 מ"ל PBS 10X וצינורות צריך לשבת על הספסל RT במהלך תהליך הסרת המוח.
  2. תביאו Ficoll-Paque פלוס לטמפרטורת החדר (RT).
  3. להרדים בעלי חיים על ידי יתר isoflurane שונה 5 במהירות להסיר את המוח באמצעות נירוסטה רקמות מרית ומכניסים צינור חרוטי 15 מ"ל המכיל 5 מ"ל RPMI על הקרח. בנסיבות מסוימות, PBS-זלוף עשוי להיות מתאים כדי להסיר את התאים במחזור הדם ההיקפית של הכנת BILs. עכברים צריך להיות מלא כראוי הרדים לפני זלוף-PBS.
  4. העברת המוח פתרון RPMI ל 7 מ"ל מטחנת זכוכית פיירקס Tenbroeck רקמות המותג homogenize בעדינות עם 10-15 ושבץ.
  5. Pipet נוסף 5 מ"ל RPMI לתוך homogenizer ו pipet למעלה ולמטה פעמיים. העברת המוח homogenate (בערך 10 מ"ל) ל צינור עגול התחתונה הכין בעבר בעדינות להפוך 2-3 פעמים כדי לערבב.
  6. ספין homogenate המוח בבית 7800g שד 'למשך 30 דקות ב RT ב הרוטור קבוע זווית F0360 ב צנטריפוגה אלגרה X-22R Beckman קליניים.
  7. לאחר צנטריפוגה, להסיר שאריות המיאלין אשר צפו לחלק העליון של השיפוע. איסוף שכבת ליקוציט שצף מעל תא דם אדום גלולה (איור 2).
  8. מסננים שכבת ליקוציט דרך מסננת תא 40 מיקרומטר לתוך 50 מ"ל חרוטי. תביאו פתרון עד נפח 50 מ"ל עם RMPI.
  9. צינורות ספין המכיל ההשעיה תא בדילול בצנטריפוגה קליני ב 1500 סל"ד (600g Ave) במשך 5 דקות ב RT.
  10. לשאוב supernatant לאסוף את התא גלולה. Resuspend גלולה ב 1 מ"ל FACS חוצץ (1% שור אזיד סרום אלבומין, נתרן 0.02% סידן ומגנזיום ללא PBS) ולהעביר את ההשעיה תא עגול 5 מ"ל צינורות התחתונה FACS.
  11. בזהירות בבסיס ההשעיה עם פלוס 1 Ficoll-Paque מ"ל.
  12. ספין צינור ב 2500 סל"ד (1,400 נתן) בצנטריפוגה קליניים עבור 25 דק 'ב RT עם הבלם לא.
  13. הסרת שכבת לבנים, מוכי על הממשק (איור 2) עם פיפטה 1 מ"ל ולהעביר צינור חדש FACS 5 מ"ל. לשטוף גאמות עם חיץ 4 FACS מ"ל.
  14. ספין צינור ב 1500 סל"ד (600g Ave) במשך 5 דקות ב RT בצנטריפוגה קליניים בתאי גלולה.
  15. לשאוב supernatant ולאסוף תא גלולה. Resuspend גלולה ליקוציט במאגר המתאימים ולשמור על קרח בצינור FACS חדש.
  16. ספירת תאים, להעריך את כדאיות התא על ידי הרחקה Trypan כחול לנתח ידי cytometry הזרימה. באופן כללי, החוקרים יכולים לצפות לרכוש כ 5 x 10 5 תאים / החי.

3. תזרים cytometric immunophenotyping

  1. לאחר בידוד ספירת לויקוציטים, לסובב את התאים במשך 3 דקות על 1500 סל"ד (600 נתן) בצנטריפוגה קליני.
  2. Resuspend גלולה בחסימת למאגר המכיל את הפעולות הבאות: חיץ FACS, supernatant מ 2.4G2 hybridoma (FC לחסום; anti-CD16/32) ו בסרום שור העובר ביחס של 10:05:01 ו דגירה במשך 30 דקות ב 4 ° C .
  3. הכן ולהוסיף נוגדנים כנגד אנטיגנים מצומדות תאיים על התאים חסומים בריכוז של 1:200 ו דגירה במשך 30 דקות ב 4 ° C בחושך. כתם דגירה תאים μl 200 בצלחת V-96-התחתונה היטב. בקרות מתאימות כוללות תאים בלא כתם דגימות פיצוי fluorochrome, לפי הצורך.
  4. ספין התאים מוכתם ב RT במשך 3 דקות על 1500 סל"ד (600 נתן) בצנטריפוגה קליני באמצעות המתאים הרוטור עבור 96-גם הצלחות.
  5. לשאוב supernatant לשטוף את התאים עם FACS חיץ 200 μl ידי pipetting בעדינות מעלה ומטה 3 פעמים.
  6. חזור על טכניקה כביסה מעל פעמיים.
  7. לאחר כביסה, resuspend התאים paraformaldehyde 2% ולהעביר צינורות FACS. קיבוע נדרש ניתוח תזרים cytometric של תאים נגועים של biosafety 2 ריאגנטים רמה.
  8. הפעל את התאים קבוע על FACS BD Calibur הבא שיטה שונה תזרים cytometry 8 ולנתח את הקבצים הלא מקוונים באמצעות FlowJo, WinMDI או cytometry אחרים הזמינים תזרים תוכנת ניתוח.
  9. ניתוח של אירועים 50-100,000 לדגימה נדרש בדרך כלל עבור immunophenotyping הולם.

נוגדנים מצומדות ישירות השתמשו בניסוי זה:

CD45 זוהה עם שיבוט 30-F11. Ly6C / G זוהה עם Gr1 שיבוט, RB6-8C5. CD11b זוהה עם שיבוט M1/70. F4/80 זוהה עם שיבוט BM8.

4. נציג תוצאות:

אנחנו מראים phenotyping תא תוצאות BILs העכבר על זיהום 24 שעות שלאחר (איור 3). Leukocytes הוכתמו עכבר אנטי PerCP מצומדות-CD45 לזהות תאים חיסוניים, PE-מצומדות אנטי עכבר Ly6C / G לזהות מונוציטים דלקתיות, APC-מצומדות אנטי עכבר CD11b ו-APC מצומדות אנטי עכבר F4/80 כדי לזהות תאים השושלת מונוציטים. הניתוח בוצע באמצעות מכשיר FACS Calibur BD.

figure-protocol-8182
באיור 1. לוקליזציה האנטומי של הזריקה. ההזרקה ממוקם 1 מ"מ הקדמי כדי גבחת ו 1 מ"מ לרוחב תפר sagittal בצד ימין.

figure-protocol-8444
איור 2. Leukocytes איור של הפרדת צבע של לויקוציטים ו BILs. נאספים בתחילה ישירות מתחת לשכבת פסולת המיאלין ומעל גלולה RBC ב השיפוע Percoll. השכבה הלבנה, רכות (BILs) בממשק נאסף השיפוע Ficoll.

figure-protocol-8803
איור 3. Immunophenotype של המוח infilatrating leukocytes ב 24 שעות לאחר ההדבקה. Leukocytes עכבר בודדו מן המוח על ידי צנטריפוגה ההפרש צפיפות רקמת homogenates מוכן מחיות ב 24 שעות לאחר ההדבקה תוך גולגולתי. תאים הוכתמו נוגדנים fluorescently-מצומדות נגד עכבר CD45, Ly6C / G, CD11b ו F4/80. Gating ראשוני בוצע על ידי התוויית CD45, סמן תאים חיסוניים, נגד פיזור קדימה (FSC), אינדיקטור של גודל התא (C). היי CD45 (A, D), CD45 lo (B, E), ו CD45 נג (F, G) אוכלוסיות נותחו לאחר מכן על רמות הביטוי היחסי של סמנים מונוציטים ו macrophage Ly6C / G, F4/80 (A, B , ו), ו CD11b (D, E, G). Ly6C / G + + F4/80 CD11b + מונוציטים דלקתיות נמצאו כמעט אך ורק באוכלוסיה היי CD45 (A, D), עולה בקנה אחד עם חדירה של תאים אלה מהפריפריה. לעומת זאת, Ly6C/G-F4/80 lo CD11b מקרופאגים + נמצאו כמעט אך ורק CD45 lo (B, E) CD45 נג (G) אוכלוסיות, עולה בקנה אחד עם פנוטיפ תושב. בניסויים רבים, מעולם לא נצפתה CD45 בתאי היי או Ly6C / G + + F4/80 CD11b + מונוציטים דלקתית במוח של נגוע או זיוף-infecטד עכברים (מידע לא מוצג).

Discussion

אנו משתמשים באופן שגרתי cytometry זרימה כדי לקבוע את איכות ההכנה שחדר המוח תא, להבדיל אוכלוסיות שונות של תאים חיסוניים 2, 9. בשלב נקודות חריפה, שיטה BILs שלנו תשואות באחוזים גבוהים של מונוציטים דלקתי בתוך האוכלוסייה CD45hi כמו גם באחוזים גבוהים של מקרופאגים באוכלוסייה CD45l...

Disclosures

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי מענק NS64571 מן NINDS (CLH), על ידי בפרס פיתוח קריירה מוקדמת ממרפאת מאיו (CLH), ועל ידי מתנה נדיבה של דונלד פרנסיס Herdrich (CLH). ברצוננו להודות תזרים מרפאת מאיו Core cytometry לסיוע.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
מגיב חברה מספר קטלוגי תגובות
TMEV האו מעבדה N / A
דניאל זן Invitrogen 21063-029
isoflurane Novaplus NDC 0409-3292-49
מסביב לתחתית באוקרידג' צנטריפוגות מבחנות Nalgene 3118-0030
RPMI 1640 Invitrogen 11875-093
Percoll GE Healthcare 17-0891-02
10X PBS רוש 11666789001
Ficoll Paque-Plus GE Healthcare 17-1440-02
Trypan כחול 0.4% (w / v) Mediatech 25-900-CI
15 צינורות חרוטי מ"ל BD פלקון 352097
7 מ"ל מזכוכית פיירקס המותג Tenbroeck מטחנת רקמה דיג 08-414-10B
תא 40 מיקרומטר מסננת BD פלקון 352340
50 מ"ל חרוטי BD פלקון 352070
שור בסרום אלבומין סיגמא A9647
נתרן אזיד סיגמא S8032
CMF-PBS Mediatech 21-040-CV
FACS צינורות BD פלקון 352054
בסרום שור העובר סיגמא F4135
2.4G2 hybridoma ATCC HB-197
שחקן המשנה V-התחתונה צלחת קורנינג 3894
אלגרה X-22R צנטריפוגה או שווה ערך Beckman N / A
96 גם צלחת דלי הרוטור Beckman S2096
קבוע זווית הרוטור Beckman F0360
paraformaldehyde סיגמא P6148
BD FACS Calibur BD Biosciences N / A
FlowJo 7.5 עץ הכוכבים, Inc N / A
CD45 BD Biosciences 557235 שיבוט: 30-F11
Gr1 (Ly6C / G) BD Biosciences 553128 שיבוט: RB6-8C5
CD11b ebiosciences 17-0112-83 שיבוט: M1/70
F4/80 ebiosciences 17-4801-82 שיבוט: BM8

References

  1. Buenz, E. J., Howe, C. L. Picornaviruses and cell death. Trends Microbiol. 14, 28-36 (2006).
  2. Buenz, E. J., Limberg, P. J., Howe, C. L. A high-throughput 3-parameter flow cytometry-based cell death assay. Cytometry A. 71, 170-173 (2007).
  3. Deb, C., Lafrance-Corey, R. G., Zoecklein, L., Papke, L., Rodriguez, M., Howe, C. L. Demyelinated axons and motor function are protected by genetic deletion of perforin in a mouse model of multiple sclerosis. J. Neuropath. Exp. Neurol. 68, 1037-1048 (2009).
  4. Deb, C., Howe, C. L. NKG2D contributes to efficient clearance of picornavirus from the acutely infected murine brain. J. Neurovirol. 14, 261-266 (2008).
  5. Donovan, J., &, P. . B. r. o. w. n., , P. Euthanasia. Current Protocols in Neuroscience. , A.4H.1-A.4H.4 (2005).
  6. Donovan, J., Brown, P. Handling & restraint. Current Protocols in Immunology. 73, 1.3.1-1.3.6 (2006).
  7. Donovan, J., Brown, P. Parenteral injections. Current Protocols in Neuroscience. , A.4F.1-A.4F.9 (2005).
  8. Holmes, K. L., Otten, G., Yokoyama, W. M. Flow cytometry analysis using Becton Dickinson FACS Calibur. Current Protocols in Immunology. , 5.4.1-5.4.22 (2002).
  9. Howe, C. L., Ure, D., Adelson, J. D., LaFrance-Corey, R., Johnson, A., Rodriguez, M. CD8+ T cells directed against a viral peptide contribute to loss of motor function by disrupting axonal transport in a viral model of fulminant demyelination. J Neuroimmunol. 188, 13-21 (2007).
  10. Lipton, H. L. Theiler's virus infection in mice: An unusual biphasic disease process leading to demyelination. Infect Immun. 11, 1147-1155 (1975).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

Neuroscience52LeukocytesneuroimmunologyEncephalomyelitis Murine Theilercytometry

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved