JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Cardiac pressure-volume loop analysis is the most comprehensive way to measure cardiac function in the intact heart. We describe a technique to perform and analyze cardiac pressure volume loops, using conductance catheters.

Abstract

Cardiac pressure-volume loop analysis is the “gold-standard” in the assessment of load-dependent and load-independent measures of ventricular systolic and diastolic function. Measures of ventricular contractility and compliance are obtained through examination of cardiac response to changes in afterload and preload. These techniques were originally developed nearly three decades ago to measure cardiac function in large mammals and humans. The application of these analyses to small mammals, such as mice, has been accomplished through the optimization of microsurgical techniques and creation of conductance catheters. Conductance catheters allow for estimation of the blood pool by exploiting the relationship between electrical conductance and volume. When properly performed, these techniques allow for testing of cardiac function in genetic mutant mouse models or in drug treatment studies. The accuracy and precision of these studies are dependent on careful attention to the calibration of instruments, systematic conduct of hemodynamic measurements and data analyses. We will review the methods of conducting pressure-volume loop experiments using a conductance catheter in mice.

Introduction

ניתוח נפח לולאת לחץ לב מספק מידע מפורט של תפקוד לב ואת תקן הזהב להערכה תפקודית 1. בעוד שיטות הדמיה כגון אקו או MRI של הלב לספק אמצעים פונקציונליים, אמצעים אלה תלויים מאוד בתנאי טעינה. צעדי עומס עצמאי של התכווצות והרפיה של הלב דורשים מדידות דינמיות של לחץ חדרית ויחס נפח על פני טווח של preload וafterload. הבנה זו של יחס לחץ-הנפח נובעת מעבודתו פורצת הדרך של Sagawa ועמיתי 2,3. הם הפגינו בvivo לשעבר לב הכלבי perfused כי צעדי ההתכווצות נובעים לחץ-נפח הלולאה היו עצמאיים של תנאי טעינה 4.

ביישום vivo של ניתוחים אלו התאפשרו עם ההתפתחות של צנתרים מוליכות בשנת 1980. מראש טכני זה אפשר קהss ועמיתים לבצע ניתוח לולאת לחץ-נפח בבני האדם 5,6. מזעור של צנתרים מוליכות ושיפורים בטכניקות ניתוחיות בסוף 1990 7 עשה ניתוח של תפקוד לב מכרסמים אפשרי, המאפשר למחקרים גנטיים ותרופתיים שיש לבצע. מראש זה מאז להוביל לשימוש הנרחב בניתוח לולאת לחץ-נפח ויצר הרבה תובנה הפיסיולוגיה של לב של יונקים.

מושג מפתח בשימוש בצנתרי מוליכות והפרשנות של נתונים המתקבלים ממנו הוא מערכת היחסים בין הנפח ומוליכות. מוליכות היא ביחס הפוך למתח, הנמדד באמצעות צנתר עם ​​אלקטרודות המונחות proximally, בדרך כלל ממוקם מתחת לשסתום אב העורקים, וdistally, בשיא LV 8. שינויים במתח או מוליכות נמדדים על ידי שינויים בזרם מהפרוקסימלי לאלקטרודה דיסטלי. למרות לתרום בריכת הדםזה משמעותי למוליכות, התרומה של קיר החדר, מכונה מוליכות מקבילות (עמ 'V), למוליכות נמדדות חייבות להיות מופחתים להשיג מדידות LV נפח מוחלטות.

השיטות לבצע תיקון זה, הנקרא כיול מלוח, הם דנו בפרוטוקול בהמשך. מערכת היחסים המתמטיות בין מוליכות ונפח, שתוארו על ידי Baan ועמיתים, הוא נפח ש= 1 / α; (L ρ 2) (עמ 'GG), שבו גורם תיקון α = שדה אחיד, ρ = התנגדות דם, L = מרחק בין האלקטרודות, G = מוליכות וp G = הלא דם מוליכות 9. ראוי לציין, גורם תיקון השדה האחיד בעכברי גישות 1.0 בשל כרכי תא קטנים 10. יחד עם מתמרי לחץ, קטטר המוליכות מספק נתוני לחץ ונפח בו זמנית בזמן אמת.

pressu לבמחדש נפח ניתוח מציג יתרונות מסוימים על פני מדדים אחרים של תפקוד לב, מאחר שהם מאפשרים למדידת התפקוד חדרים העצמאיים של תנאי טעינה ושל קצב לב. מדדי לב ספציפיים עומס עצמאי של התכווצות כוללים: יחס לחץ נפח הסוף-סיסטולי, ביחס ד P / D מקס לא -end-דיאסטולי נפח, elastance המקסימאלי (מקסימום E) (ESPVR) ולטעון מראש עבודת recruitable שבץ (PRSW). מדד עומס עצמאי של פונקציה הדיאסטולי הוא יחסי לחץ נפח סוף דיאסטולי-(EDPVR) 11. הפרוטוקול הבא מתאר את ההתנהגות של ניתוח לולאת לחץ נפח לב, באמצעות שתי תרדמה וגישת הפסגה. בעוד המתודולוגיה לבצע מחקרים אלה תוארה בפירוט בעבר 8,11, נסקור שלבים עיקריים להשיג מדידות לחץ-נפח מדויקים, כוללים שני התיקון המלוח וכיול קובט, ולספק הפגנה חזותית של thesנהלי דואר. מחקר עם בעלי חיים שבוצעו במחקר זה טופל על פי פרוטוקולים שאושרו ותקנות צער בעלי החיים של ועדת הטיפול ושימוש בבעלי חיים המוסדיים של המרכז הרפואי של אוניברסיטת דיוק.

Protocol

1. הכנות מוליכות צנתר וכיול לחץ

  1. חבר קטטר מוליכות למודול קטטר המודינמית. אלקטרוני לכייל מדידות לחץ ונפח על ידי הקלטת לחץ קבוע מראש ונפח מוגדר על מודול קטטר. להקליט מעקב של 0 מ"מ כספית ו -25 מ"מ כספית (איור 1 א) ולהקצות מתחים לשני העתקים הלחץ (איור 1 ו1C). באופן דומה, להקליט מעקב נפח של RVU 5 ו -25 RVU (1D איור) ולהקצות מתחים לשני העתקים הנפח (1E ו1F).
  2. לאשר את כיול לחץ האלקטרוני עם כיול לחץ ידני, באמצעות מד לחץ דם עמודת כספית. התאם את נמל שרוול מד לחץ דם עם ברזלים 3-דרך. מלא מערכת 3 יציאות סתום עצירת דימום, המשמשת לעתים קרובות לאנגיופלסטיקה כלילית, עם מים RT באמצעות יציאת הצד.
    1. הנח את קצה צנתר מוליכות לשסתום עצירת דימום נוזל מלא ובעדינות לאבטח שנינותHout מסתלסל קטטר. חבר את שסתום עצירת הדימום ולמד לחץ הדם לנפח 200 מ"מ כספית ולנעול ברזלים 3-דרך. לבחון האם הלחץ שנמדד בקנה אחד עם הלחץ המנופח במד לחץ הדם.
  3. קטטר מקום במלח מחומם ל -37 מעלות צלזיוס, כי הוא ברמה של לחץ שדה ההפעלה ומידה. התאם בקרת לחץ עד לחצים נרשמו הוא באפס.

2. הרדמה / אינטובציה

  1. לנהל קטמין / xylazine (80-100 / 10 קילוגרם מ"ג -1) כזריקה intraperitoneal.
    הערה: ניתן להשתמש בחומרי הרדמה אלטרנטיביים. רשימה מקיפה של הרדמה מסופקות בביקורות קודמות של טכניקה זו 11,12. הרדמה נכונה יכולה להיות מאושרת על ידי קמצוץ זנב עדין.
  2. הרדימו פעם, לגלח את הצוואר וחזה עם קוצץ שיער ומניחים על משטח לוהט. לשמור על הטמפרטורה רקטלית העכבר ב36.5-37.5 מעלות צלזיוס. טמפרטורות נמוכות גוףיגרום קצב לב מדוכא. החל משחה לעיניים למניעת יובש
  3. לעשות חתך קו האמצע בצוואר ובלנתח את שרירי הנשימה משם כדי לחשוף את קנה הנשימה. הנח הטובוס דרך הפה, בעוד לדמיין את קנה הנשימה כדי להבטיח אינטובציה, ולהתחבר למכונת הנשמה.
  4. לשמור על עכבר על ההנשמה במהלך ההליך. הגדרות הנשמה נקבע על בסיס משקל בעלי חיים כמתואר בעבר 11. נפח גאות (מיליליטר) = 6.2 x (משקל בבעלי חיים בקילו) 1.01 וקצב נשימה = 53.5 x (משקל בבעלי חיים בקילו) -.26.

3. מיקום של מוליכות צנתר בתא LV

  1. גישה הראשי
    1. כדי להבטיח סטריליות, שני סטים של מכשירי ניתוח סטרילי הם used- אחד לחתך בעור ראשוני ואחד לפעול בפתיחת בית החזה. מכשירים יש לחטא באמצעות מעקר יבש בין בעלי החיים במהלך פגישת כירורגים בודדתND autoclaved בסוף כל יום כירורגית.
    2. לאחר העור כבר לחטא עם שלושה מחזורים של לשפשף chlorhexidine + אלכוהול עור (0.5% אלכוהול פתרון / 70% chlorhexidine), עושה חתך מעל הצוואר תקין מלסת תחתונה לעצם חזה. לנתח רקמות לחשוף את הצוואר תקין, וחתך את העצב התועה אשר פועל בסמוך לתרדמה.
    3. מניחים תפר 6-0 משי סטרילי סביב הקצה הדיסטלי (מהחזה) של עורק התרדמה, עניבה ומאובטחת. מניחים שני תפרים נוספים מתחת להפרוקסימלי של עורק תרדמה (קרובים יותר לחזה) לתפר הראשון, באופן רופף קשירת תפר האמצע. משוך בעדינות את התפר הפרוקסימלי ומאובטח על ידי הידוק אותו לעור. ודא שהעורק הראשי כבר הידק את שני proximally ו distally לפני שימשיך.
    4. לעשות חתך קטן בעורק הראשי ר ', הפרוקסימלי לתפר הראשון, ולהאריך longitudinally כיוון החזה.
    5. הכנס את קצה צנתר מוליכות,ספוג בעבר במלח חם למשך 30 דקות, לספינה דרך החתך ולאבטח את הצנתר באמצעות תפר האמצע.
    6. בעדינות לקדם את הקטטר בחדר השמאלי דרך הצוואר, תוך כדי צפייה בלולאת לחץ-נפח התחקות על מנת להבטיח מיקום נכון.
      הערה: מיקום אופטימלי של קטטר אמור להניב לולאות לחץ-נפח המופיעות מלבני (ראה איור 2). אם כל התנגדות למעבר של קטטר הוא נתקל, משוך בעדינות בחזרה ולקדם שוב עם לחץ עדין. סיבוב עדין של קטטר עשוי לעזור עם מיקום לתוך החדר השמאלי. מכריח את הקטטר המוליכות יכול להוביל לסיבוכי לב וכלי דם חמורים או נזק לקטטר.
    7. לחץ נפח הקלטה בסיסי לולאות ~ 10 דקות אחרי מיקום צנתר והשגת מצב יציב (איור 2).
  2. גישת הפסגה
    1. בעכבר הרדים ומאוורר, לעשות חתך frאום ולחתוך את תהליך xiphoid דרך קיר החזה רוחבי עד הסרעפת היא גלויה.
    2. חותך למרות הסרעפת ולדמיין את שיאו של הלב.
    3. הכנס את קטטר המוליכות לשיא של החדר השמאלי דרך פצע דקירת מחט (באמצעות מחט G 25-30), עד אלקטרודה הפרוקסימלי היא רק בתוך החדר.
    4. לחץ נפח הקלטה בסיסי לולאות ~ 10 דקות אחרי מיקום צנתר והשגת מצב יציב.

4. משתנה afterload שימוש חלוף אבי העורקים ספיגה

  1. כדי לבצע חסימה של אב העורקים חולף, לעשות חתך אופקי קטן בחזה העליון ולנתח רקמות לחשוף את אב העורקים הרוחביים.
  2. הנח מייתר 6-0 משי מתחת לאב העורקים הרוחביים. לאחר לולאות לחץ-נפח חזרו לנקודת התחלה, לאחוז בשני הקצוות של התפר עם מהדק מחט, בעדינות ולאט לאט להעלות את התפר מעל 1-2 שניות, ולשחרר את המתח לאט.
  3. חזור על תהליך זה, עד שלוש הקלטות אופטימליות נפרדות עשויות מאותו בעל החיים.
    הערה: הקלטות אופטימליות צריכים להיות לפחות 5 מחזורי לולאת לחץ נפח ועלייה מתמדת בלחצים הסיסטולי הסוף במהלך היישום של מתח על התפר (איור 3 א ו3C).

5. משתנה Preload שימוש הנבוב נחות חלוף קאווה ספיגה (IVC)

  1. כדי לבצע חסימת וריד הנבוב נחות חולפת, לעשות חתך אופקי מתחת לתהליך xiphoid, מתחת לסרעפת לחשוף IVC.
  2. הנח מייתר 6-0 משי מתחת IVC. לאחר לולאות לחץ-נפח חזרו לנקודת התחלה, לאחוז בשני הקצוות של התפר עם מהדק מחט; בעדינות ולאט לאט להעלות את התפר מעל 1-2 שניות, ולשחרר את המתח לאט. חסימת IVC גם יכולה להתבצע על ידי היישום העדין של לחץ באמצעות כותנה הטתה ספוגית.
  3. חזור על תהליך זה, עד שלוש הקלטות אופטימליות נפרדות מ 'ADE מאותו בעלי החיים.
    הערה: הקלטות אופטימליות צריכים להיות לפחות 5 מחזורי לחץ נפח לולאה וירידה מתמדת בלחצי הסוף-דיאסטולי של חדר שמאל במהלך היישום של מתח על תפר (איור 4 א ו -4 ב).

6. מלוח כיול

  1. בסיומו של המחקר, מוליכות מקבילות ערך (עמ 'V) יכול להיות להשיג על ידי הזרקת בולוס 10 μl של תמיסת מלח hypertonic (15%) לבעלי החיים דרך וריד הצוואר (איור 5 א ו5B).
    הערה: בולוס זה יגרום עלייה ניכרה בנפח ללא שינוי בלחץ. שינוי נראית לעין זה בנפח הוא התוצאה של שינוי במוליכות בריכת דם ולא בשל עלייה ממשית בנפח. ירידה זמנית במקסימום / DT DP ניתן לצפות, כמלוח hypertonic יש השפעה שלילית האינוטרופית 13. P V מחושב יכול להיות נכנס לתוך תוכנת ניתוח לולאת לחץ נפח לאורךעם הפרמטרים של כיול קובט וללהמיר מRVUs במיקרוליטר.

7. קובט כיול

  1. כדי לבצע כיול קובט, מקום קובט עם בארות של קטרים ​​ידועים המסופקים על ידי יצרן על כרית חימום או אמבט מים מחומם ל -37 מעלות צלזיוס. מלא 4-5 החורים הראשונים עם דם heparinized חם טרי מעכברים שעברו הערכות המודינמית.
    הערה: כיול קובט מאפשר הערכה מדויקת של בריכת הדם של חדר השמאלי באמצעות עכבר הדם ומאפשר להמרה של נתונים נפח מRVUs למיקרוליטר.
  2. הכנס את קטטר המוליכות לתוך הבאר הראשונה, עד שכל האלקטרודות שקועות. בעדינות להזיז את הצנתר בבאר, שיפיק RVUs שונה.
  3. רשום את שינויי המוליכות בערוץ הנפח בRVUs. בחר RVU הגבוה ביותר לכיול.
    הערה: הנפח של הבארות או יכול להיות מחושב על ידי 1) באמצעות המשוואה לvolumדואר של גליל, שבו הוא שהרדיוס של באר קובט והאורך מבוסס על האורך בין שתי אלקטרודות חישה הפנימיות או 2) בדיקה בהוראות היצרן. פלט המוליכות יכול להיות מתואם עם הכרכים הידועים לפתח משוואת כיול הממירה את הנתונים מRVUs למיקרוליטר 11.

8. המתת חסד

  1. בסיומו של הפרוטוקול, עכברים מורדמים באמצעות נקע בצוואר הרחם בזמן הרדמה.
  2. כדי להבטיח את המוות, עכברים שיש נקע בצוואר הרחם עבר חייבים לעבור שיטה משנית של המתת חסד. אנו משתמשים בexsanguination תחת הרדמה, עם קציר של רקמת לב לניסויים, או פתיחת בית החזה בין שתי המדינות תחת הרדמה.

9. נפח לחץ באמצעות ניתוח נתונים Loop תוכנת ניתוח

  1. חישוב p V מתמיסת מלח כיול
    1. לחץ וvolu בחרשלי לולאות שהושגו במהלך הפליטה של תמיסת מלח hypertonic (איור 5 א 'ו5B)
    2. יצוא לולאות לתוכנת ניתוח לחץ נפח. בחר באפשרות לכיול מלוח (איור 5 ג)
    3. רשום את ערך p V מחושב (איור 5D).
      הערה: ערך p V מחושב על ידי זיהוי בצומת של הנפח) 1 הסוף-דיאסטולי לעומת הסוף-סיסטולי נפח מהכיול המלוח ו -2) קו נפח הנפח = הסוף-סיסטולי סוף-דיאסטולי. הצומת של קווים אלה מספקת p V, המחושב על ידי תוכנת ניתוח לולאת לחץ נפח.
  2. הזן את המוליכות לנפח (RVU) ביחס באפשרויות ערוץ נפח (איור 1F)
  3. למדוד ביחס לולאת לחץ-נפח Baseline
    1. בחר 8-10 מחזורי לב מערוצי לחץ ונפח פעם מצב יציב הושג (איור 2 א) ויצוא לניתוח רךכלי. לזהות 5-6 לולאות הסוף-נשיפה (איור 2)
    2. השתמש בערך p V לתקן למוליכות מקבילות. בחר באפשרות "המצב יציב", וליצור טבלת סיכום המודינמית (איור 2 ג)
  4. יחס לולאת לחץ-נפח מדד במהלך אבי העורקים התכווצות
    1. בחר 8-10 מחזורי לב מערוצי לחץ והנפח שמתאימים להתכווצות אב העורקים לפני העלייה לחצים סוף-דיאסטולי (איור 3 א) ויצוא לתוכנת ניתוח. לזהות 5-6 לולאות הסוף-נשיפה (איור 3 ג)
    2. ניתוח בחר "התכווצות" (איור 3), שיחשב את יחס נפח לחץ הקצה הסיסטולי (ESPVR)
  5. יחס לולאת לחץ-נפח מדד במהלך התכווצות IVC
    1. בחר 8-10 מחזורי לב מערוצי לחץ והנפח שמתאימים להתכווצות IVC (Figur4A ה) ויצוא לתוכנת ניתוח. לזהות 5-6 לולאות הסוף-נשיפה (איור 4)
    2. בחר ניתוח "התכווצות" (איור 3), שיחשבו עבודה שבץ Recruitable Preload (PRSW) (איור 4C), המרבי DP / DT vs EDV (איור 4D), כמו גם את ESPVR ויחס לחץ נפח סוף דיאסטולי-(איור 4E)

תוצאות

ניתוח לולאת לחץ-נפח ניתן להשתמש כדי למדוד תפקוד לב בעכברים מהונדסים גנטי 14,15 או עכברים שעברו את הלימודים בסמים 16. לולאות לחץ נפח נציג מסופקות מהעבודה שפורסמה בעבר 16 חוקרים את ההשפעה של SS-Arrestin מוטה יגנד AT1R, TRV120023. כדי לבדוק אם TRV120023 משפיע על תפקוד לב in...

Discussion

אנו מתארים שיטה לניתוח perfoming לולאת לחץ-נפח באמצעות צנתר מוליכות בעכברים, להפיק ניתוחים מקיפים של שני התכווצות והרפיה של הלב. Suga, Sagawa ועמיתים מנוצלים לחץ-נפח הלולאות להגדיר מדדים של התכווצות לב, במיוחד במדרון של ESPVR, או elastance הסוף-סיסטולי (ES E), ומקסימום E. Elastanc...

Disclosures

יש המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכת על ידי איגוד הלב האמריקאי 14FTF20370058 (DMA) וNIH T32 HL007101-35 (DMA).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
AnaSed (xylazine) Lloyd LaboratoriesNADA no. 139-236Anesthetic
Ketaset (ketamine)Pfizer440842Anesthetic
VIP3000Matrx Medical Inc.Anesthesia machine
VentilatorHarvard ApparatusModel 683Surgical Equipment
Tubing kitHarvard Apparatus72-1049Surgical Equipment
Homeothermic Blanket Kaz Inc.5628Surgical Equipment
Stereo microscopeCarl Zeiss Optical Inc.Stemi 2000Surgical Equipment
IlluminatorCole–Parmer41720Surgical Equipment
Dumont no. 55 Dumostar Forceps Fine Science Tools Inc11295-51Surgical Instruments
Graefe forceps, curved Fine Science Tools Inc11052-10Surgical Instruments
Moria MC31 forceps Fine Science Tools Inc11370-31Surgical Instruments
Mayo scissors Fine Science Tools Inc14512-15Surgical Instruments
Iris scissors Fine Science Tools Inc14041-10Surgical Instruments
Halsey needle holder Fine Science Tools Inc12501-13Surgical Instruments
Olsen–Hegar needle holder Fine Science Tools Inc12002-12Surgical Instruments
spring scissorsFine Science Tools Inc15610-08Surgical Instruments
disposable underpadsKendall/Tyco Healthcare1038Surgical Supplies
Sterile gauze sponges, sterile Dukal62208Surgical Supplies
Cotton-tipped applicators, sterile Solon368Surgical Supplies
Surgical suture,  silk, 6-0 DemeTECHFT-639-1Surgical Supplies
1 cc Insulin syringes Becton Dickenson329412Surgical Supplies
Access 9 Hemostasis ValveMerit Medical MAP111Hemodynamic equipment
SphygmomanometerBaumanometer320Hemodynamic equipment
Millar PV system MPVS-300/400 or MPVS Ultra (includes calibration cuvette)ADInstruments IncHemodynamic equipment
1.4F conductance catheter ADInstruments IncSPR-839Hemodynamic equipment
PowerLab 4/30 with Chart ProADInstruments Inc.ML866/PHemodynamic software
animal clipperWahl8787-450AMiscellaneous
Intradermic tubing PE-10Becton Dickenson427401Miscellaneous
Intradermic tubing PE-50Becton Dickenson427411Miscellaneous
Needle assortment (18, 25 and 30 gauge; Thomas Scientific)Miscellaneous
0.9% (wt/vol) sodium chloride injection, USP)HospiraNDC no. 0409-4888-50Miscellaneous
Surgical tapeMiscellaneous
Alconox (Alconox Inc.) for catheter cleaningADInstruments Inc.Miscellaneous

References

  1. Clark, J. E., Marber, M. S. Advancements in pressure-volume catheter technology - stress remodelling after infarction. Exp Physiol. 98 (3), 614-621 (2013).
  2. Sunagawa, K., Maughan, W. L., Burkhoff, D., Sagawa, K. Left ventricular interaction with arterial load studied in isolated canine ventricle. Am J Physiol. 245 (Pt 1), H773-H780 (1983).
  3. Suga, H., Sagawa, K., Demer, L. Determinants of instantaneous pressure in canine left ventricle. Time and volume specification. Circ Res. 46 (2), 256-263 (1980).
  4. Suga, H., Sagawa, K., Shoukas, A. A. Load independence of the instantaneous pressure-volume ratio of the canine left ventricle and effects of epinephrine and heart rate on the ratio. Circ Res. 32 (3), 314-322 (1973).
  5. Kass, D. A., et al. Improved left ventricular mechanics from acute VDD pacing in patients with dilated cardiomyopathy and ventricular conduction delay. Circulation. 99 (12), 1567-1573 (1999).
  6. Kass, D. A., et al. Diastolic Compliance of Hypertrophied Ventricle Is Not Acutely Altered by Pharmacological Agents Influencing Active Processes. Annals of Internal Medicine. 119 (6), 466-473 (1993).
  7. Georgakopoulos, D., et al. In vivo murine left ventricular pressure-volume relations by miniaturized conductance micromanometry. Am J Physiol. 274 (4 pt 2), H1416-H1422 (1998).
  8. Cingolani, O. H., Kass, D. A. Pressure-volume relation analysis of mouse ventricular function. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301 (6), H2198-H2206 (2011).
  9. Baan, J., et al. Continuous Measurement of Left-Ventricular Volume in Animals and Humans by Conductance Catheter. Circulation. 70 (5), 812-823 (1984).
  10. Pearce, J. A., Porterfield, J. E., Larson, E. R., Valvano, J. W., Feldman, M. D. Accuracy considerations in catheter based estimation of left ventricular volume. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 2010, 3556-3558 (2010).
  11. Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Batkai, S., Kass, D. A. Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats. Nature Protocols. 3 (9), 1422-1434 (1038).
  12. Hanusch, C., Hoeger, S., Beck, G. C. Anaesthesia of small rodents during magnetic resonance imaging. Methods. 43 (1), 68-78 (2007).
  13. Georgakopoulos, D., Kass, D. A. Estimation of parallel conductance by dual-frequency conductance catheter in mice. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 279 (1), H443-H450 (2000).
  14. Esposito, G., et al. Increased myocardial contractility and enhanced exercise function in transgenic mice overexpressing either adenylyl cyclase 5 or 8. Basic Res Cardiol. 103 (1), 22-30 (2008).
  15. Kohout, T. A., et al. Augmentation of cardiac contractility mediated by the human beta(3)-adrenergic receptor overexpressed in the hearts of transgenic mice. Circulation. 104 (20), 2485-2491 (2001).
  16. Kim, K. S., et al. beta-Arrestin-biased AT1R stimulation promotes cell survival during acute cardiac injury. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 303 (8), H1001-H1010 (2012).
  17. Suga, H., Sagawa, K. Mathematical Interrelationship between Instantaneous Ventricular Pressure-Volume Ratio and Myocardial Force-Velocity Relation. Annals of Biomedical Engineering. 1 (2), 160-181 (1972).
  18. Suga, H. Ventricular energetics. Physiol Rev. 70 (2), 247-277 (1990).
  19. Kass, D. A., et al. Influence of contractile state on curvilinearity of in situ end-systolic pressure-volume relations. Circulation. 79 (1), 167-178 (1989).
  20. Little, W. C. The left ventricular dP/dtmax-end-diastolic volume relation in closed-chest dogs. Circ Res. 56 (6), 808-815 (1985).
  21. Glower, D. D., et al. Linearity of the Frank-Starling relationship in the intact heart: the concept of preload recruitable stroke work. Circulation. 71 (5), 994-1009 (1985).
  22. Sharir, T., et al. Ventricular systolic assessment in patients with dilated cardiomyopathy by preload-adjusted maximal power. Validation and noninvasive application. Circulation. 89 (5), 2045-2053 (1994).
  23. Baan, J., Van der Velde, E. T. Sensitivity of left ventricular end-systolic pressure-volume relation to type of loading intervention in dogs. Circ Res. 62 (6), 1247-1258 (1988).
  24. Wei, C. L., et al. Volume catheter parallel conductance varies between end-systole and end-diastole. IEEE Trans Biomed Eng. 54 (8), 1480-1489 (2007).
  25. Porterfield, J. E., et al. Dynamic correction for parallel conductance, GP, and gain factor, alpha, in invasive murine left ventricular volume measurements. J Appl Physiol (1985). 107 (6), 1693-1703 (2009).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

103

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved