JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Here, we present a protocol to knockout a gene of interest involved in plasmid conjugation and subsequently analyze the impact of its absence using mating assays. The function of the gene is further explored to a specific region of its sequence using deletion or point mutations.

Abstract

The transfer of genetic material by bacterial conjugation is a process that takes place via complexes formed by specific transfer proteins. In Escherichia coli, these transfer proteins make up a DNA transfer machinery known as the mating pair formation, or DNA transfer complex, which facilitates conjugative plasmid transfer. The objective of this paper is to provide a method that can be used to determine the role of a specific transfer protein that is involved in conjugation using a series of deletions and/or point mutations in combination with mating assays. The target gene is knocked out on the conjugative plasmid and is then provided in trans through the use of a small recovery plasmid harboring the target gene. Mutations affecting the target gene on the recovery plasmid can reveal information about functional aspects of the target protein that result in the alteration of mating efficiency of donor cells harboring the mutated gene. Alterations in mating efficiency provide insight into the role and importance of the particular transfer protein, or a region therein, in facilitating conjugative DNA transfer. Coupling this mating assay with detailed three-dimensional structural studies will provide a comprehensive understanding of the function of the conjugative transfer protein as well as provide a means for identifying and characterizing regions of protein-protein interaction.

Introduction

העברת גנים והחלבונים ברמת המיקרו-האורגניזם משחקת תפקיד מרכזי הישרדות חיידקים ואבולוציה וכן תהליכי דלקת. חילופי DNA בין חיידקים או בין חיידק לתא יכולים להיות מושגים באמצעות תמרת טרנספורמציה, נטייה או וקטור. 1,2 הצמיד הוא ייחודי בהשוואה לטרנספורמציה התמרה ב שבמהלך הנטייה בין חיידקים גראם שלילית כגון Escherichia coli, העברת הד.נ.א מתרחשת באופן תורם שבשליטה לפיה מערכת מולקולארית מורכבת מתחברת תאים תורמים ומקבל. הצמיד הוא גם הדרך הישירה ביותר שבו תאי חיידקיים אינטראקציה עם תאים מארחים להזריק גנים, חלבונים או כימיקלים למערכות מארחות. 3 לעתים קרובות, העברת סוכנים כאלה יש השפעות מדהימות במארח, החלו בפתוגנזה ו סרטן לארח אבולוציה והתאמה. הוכח כי recombinatio conjugativen מגדיל את השיעור של פי 3 הסתגלות בחיידקים עם קצב מוטציות גבוה בתנאים של לחץ סביבתי. 4 יתר על כן, נטייה היא רחוק המסלול הנפוץ ביותר שדרכו גנים עמידים לאנטיביוטיקה ב זני חיידקים מפוזרים. 5,6

מיקרואורגניזמים התפתחו מערכות הפרשה מיוחדות כדי תומכים בטרנספר של מקרומולקולות על פני קרום תא; יש כיום 9 סוגים של מערכות הפרשת (TSSs) בחיידקים גרם שליליים כי תוארו: T1SS, T2SS, T3SS, T4SS, T5SS, T6SS, T7SS, כמו גם ה- SEC (הפרשת) ו טאט (שני-ארגינין טרנסלוקציה) מסלולים. סוג 7,8 כל אחד מערכת הפרשת מחולק נוסף לתוך תת שונים, הכרח בשל מגוון של חלבונים וייחודו של מסלולים הנוגעים בדבר, על זני חיידקים שונים. לדוגמה, במערכת הפרשת סוג IV (T4SS), מערכות Ti ו CAG להקל התחבורה מפעיל ואילו F-פלסמיד, R27nd pKM101 T4SSs להקל על העברת פלסמיד conjugative. 7,9,10 הבנה מפורטת של המנגנונים שבאמצעותם אורגניזמים להרכיב מערכות ההפרשה שלהם מחלבוני הרכיב שלהם ולשתף תכנים סלולריים עם נמען או בסביבתם הקרובה מהווה גורם חשוב בהתפתחות של אסטרטגיות ממוקדות כדי להילחם מיקרואורגניזמים פתוגניים תהליכים של זיהום הסלולר.

בעקבות קוניוגציה זיהוי הראשונית ב E. coli על ידי לדרברג & טאטום, 11 מספר גדול של פלסמידים ניידים conjugative זוהה ואופיין. 12 פלסמידים ניידים כזה להראות מגוון רב הוא גודל (מ -1 עד מעל 200 kilobases (KB)), אולם כל פלסמידים הניידים מכילים relaxase, המכיר את המקור של העברה (אורית) ובכך מאפשר העברת הפלסמיד. פלסמידים Conjugative גנים לקודד נוספים להרכבה של T4SS פונקציונלי כמו גם סוגIV חלבון צימוד. 12 לדוגמה פלסמיד F 100 kb של E. coli מקודד כל הגנים conjugative בתוך אזור 33.3 kB העברה (tra). 13 הגנים באזור tra של לקודד פלסמיד F כל החלבונים המאפשרים היווצרות pilus, הזדווגות זוג היווצרות (MPF), העברת דנ"א פונקציות הדרה במהלך העברת פלסמיד conjugative. 10,14,15 גוף ידע משמעותי זמין עבור T4SSs conjugative, אולם כמפורט מחקרים מבניים של חלבונים מתחמי conjugative נעשים זמינים רק ולאחרונה. 16 - 28

כדי להרכיב תמונה מקיפה של תהליך conjugative, צימוד של מחקרים מבניים מפורטים מוטציוני ניתוחים של חלבוני הובלת conjugative נדרש. זו יכולה להיות מושגת באמצעות מבחני הזדווגות conjugative. עבור פלסמיד F, כל חלבון המקודד בתוך האזור tra ממלא תפקיד שיתוף F בתיווךnjugation; ולכן, בנוקאאוט / מחיקה של גן ההעברה יהיה לבטל את קיבולת conjugative של התא (איור 1). בעוד פלסמידים ניידים קטנים יותר יעילים הליכי מחיקה סטנדרטיים עבור פלסמידים conjugative גדולים כגון F, נוקאאוט גנטי מושגות בקלות רבה יותר באמצעות רקומבינציה הומולוגי שבו גן המטרה הוחלף שינוע אחד גן עמידות לאנטיביוטיקה ברור. בפרוטוקול הנוכחי, אנו מעסיקים הומולוגיים להחליף גן העברת עניינים עם acetyltransferase chloramphenicol (CAT) פלסמיד F 55 kb נגזרת pOX38-Tc; 29,30 הפלסמיד בנוקאאוט כתוצאה, pOX38-Tc Δgene :: ס"מ, הופך לפשוט התנגדות לנוכחות של chloramphenicol (ס"מ) בתקשורת צמיחה. תאים תורמים מחסת pOX38-Tc Δgene :: סנטימטר אינם מסוגלים להשפיע העברת DNA conjugative / הזדווגות כפי שנצפה דרך השימוש של assay הזדווגות; את היעילות ההזדווגות של תא תורם pOX38-Tc Δgene :: ס"מ RECIP נורמליient יקטן או, לעתים קרובות יותר, יבוטל. העברת Conjugative של פלסמיד pOX38-Tc Δgene :: הסנטימטר ניתן לשחזר באמצעות פלסמיד התאוששות קטן מחסת גן ההעברה הממוקדת. פלסמיד התאוששות זו יכולה להיות אחת המספקת ביטוי המכונן, כגון pK184 פלסמיד (pK184-גן), 31 או אחד המספק ביטוי מושרה כל עוד פלסמיד כראוי מטרות הגן אל המיקום הנכון בתוך התא (הציטופלסמה או periplasm). כתוצאה מכך, מבחני ההזדווגות בין התורם החדש הזה (מחסה pOX38-Tc Δgene :: ס"מ + פלסמידים pK184-גן) תא לבין נמען, את יעילות ההזדווגות צפויה להחזיר כמעט לזה של assay הזדווגות תורם למקבל נורמלי. מערכת זו מאפשרת לחקור את הפונקציה של הגן בנוקאאוט דרך דור של סדרה של מבנים-גן pK184 (מחיקות או מוטציות נקודתיות) ובדיקה בכל היכולת לבנות כדי לשחזר את יכולת ההזדווגות של טיפוח pOX38-Tc Δgene :: ס"מ תא תורםים.

Protocol

דור 1. של בונת DNA

  1. עיצוב oligomers עבור הומולוגיים רקומבינציה של גן המטרה
    1. עיצוב oligomer 55-72 נ"ב קדימה יחיד כדלקמן: (א) לבחור רצף נוקליאוטידים ארוך 19-32 נ"ב כי הוא הומולוגיים לרצף DNA של BP באזור 10-100 במעלה הזרם של האתר התחלה '5 של הגן acetyltransferase chloramphenicol פלסמיד pBAD33 המסחרי, 32 ו (ב) לבחור הומולוגי רצף נוקליאוטידים ארוך 36-54 נ"ב לאזור 10-150 נ"ב במורד זרם של האתר התחלה '5 של גן המטרה של עניין.
      1. הצטרפו 'סוף רצף נוקליאוטידים הרים ב (ב) על 5' 3 סוף נוקלאוטיד רצף הרים ב (א), ובכך לתת oligomer קדימה יחיד 55-72 ארוך.
    2. עיצוב oligomer ההפוכה יחידה 55-72 נ"ב כדלקמן: (א) לבחור רצף נוקליאוטידים ארוך 19-32 נ"ב כי הוא הומולוגי לרצף DNA של BP באזור 10-100 במורד זרםשל 3 'סוף גן chloramphenicol פלסמיד pBAD33 המסחרי, ו- (ב) לבחור הומולוגי רצף נוקליאוטידים ארוך 36-54 נ"ב לאזור בתוך 10-150 נ"ב במעלה זרם של 3' באתר סוף גן היעד של עניין .
      1. הצטרפו 'סוף רצף נוקליאוטידים הרים ב (ב) על 5' 3 סוף נוקלאוטיד רצף הרים ב (א) כדי להפוך אותו oligomer יחיד.
      2. העתק oligomer זה לתוך זמינה כל תוכנה ביואינפורמטיקה להמיר רצף לתוך השלמה ההפוכה שלה. זה ייתן oligomer הפוכה ארוכה אחת 55-72 נ"ב.
    3. באמצעות כל תוכנית אוליגו-מנתח זמין, לבדוק כי oligomers רקומבינציה יש תוכן GC בין 40-60%, טמפרטורת ההתכה סיכת ראש נמוך (T מ '), עצמי נמוך מ T הטרו-dimerization של. להזמין פריימרים עבור סינתזת משלוח מכל חברת הביוטכנולוגיה מועדפת.
  2. הגברה של קלטת CAT מ pBAD33 (ס"מ R ) פלסמיד באמצעות oligomers עוצב עבור שיוך הומולוגי
    1. לגדול לילה (O / N, 16-18 שעות) התרבות של תאים DH5α מחסה פלסמיד pBAD33 במרק Lysogeny סטרילי (LB) עם 20 מיקרוגרם / מ"ל ​​chloramphenicol (ס"מ) עם רועד ב 200 סל"ד ו -37 מעלות צלזיוס.
    2. צנטריפוגה 6-8 מ"ל של התרבות O / N בטמפרטורת החדר, 5000 XG במשך 3 דקות. למזוג supernatant ולחלץ את הפלסמיד pBAD33 מן הגלולה באמצעות ערכת מיני-הכנה פלסמיד (לוח חומרים) ופרוטוקול של היצרן.
    3. האם תקציר של DNA פלסמיד pBAD33 ידי הוספת הכיתוב הבא לתוך צינור סטרילי לפי הסדר: נפח מתאים של מים מזוקקים כפול (DDH 2 O) לנפח סופי של 50 μL, 1 מיקרוגרם נפח פלסמיד pBAD33, 5 μL 10x מאגר התגובה אנזים, ו -0.5 μL של אנזים הגבלה avai (RE). לערבב בעדינות על ידי pipetting ולתת התגובה להמשיך במשך שעה 1 ב 37 מעלות צלזיוס. מחממים להשבית את התגובה במשך 20 דקות (דקות) 80מעלות צלזיוס. דגימות חנות ב -20 מעלות צלזיוס למשך לא יותר מ -24 שעות כדי למזער השפלה דביקה-סוף.
    4. הכן agarose 1.2% הפרדת הג'ל על ידי ערבוב 1.2 גרם של agarose עם 100 מ"ל של טה 1x (40 מ"מ טריס, pH 8.5; 20 מ"מ חומצה אצטית; 1 mM EDTA) חיץ בבקבוק 250 מ"ל Erlenmeyer. מחממים מערבולת לפזר לגמרי במיקרוגל. עצור חימום מיד כאשר הנוזל מתחיל לרתוח לערבל את הבקבוק.
      1. מצננים את agarose נוזלי במשך 3 דקות בטמפרטורת החדר בעוד מתערבל, להוסיף 2 μL של 10 מ"ג / מ"ל ​​ברומיד ethidium מערבולת לערבב. יוצקים את agarose לתוך מגש ג'ל במסרק היטב ולאפשר לשמן להתמצק עבור 1 שעות בטמפרטורת החדר. ג'לי חנות ב 4 ° C עד 2 ימי חיץ 1x טה.
    5. מערבבים כל RE לעכל מ 1.2.3 עם 0.2 נפח של צבע טעינת ה- DNA (10 μL של צבע לכל 50 תגובה μL) על ידי pipetting. טען 5 μL של 500 מיקרוגרם / מ"ל ​​סולם ה- DNA לתוך הבאר הראשונה וכל תערובת RE Digest-צבע לתוך אחר גם על אג'ל garose. השתמש 2-3 בארות לטעון כל עוצמת התגובה על הג'ל.
      1. הרץ את הג'ל בקושי שקוע 1x טה חיץ ההפעלה 45-50 V (4.5-5 V / ס"מ) עבור 65 דקות בתוך המכשיר ג'ל אלקטרופורזה.
    6. שימוש ארון UV ותער סטרילי, במהירות לחתוך את הלהקה 2.8 kb המתאים רצף המרצע מן ג'ל כדי למזער את החשיפה UV של DNA. חלץ את ה- DNA מן הפרוסה ג'ל לגזור באמצעות ערכת חילוץ ג'ל (לוח חומרים) על פי פרוטוקול של היצרן.
      הערה: יש להיזהר שלא לחשוף את העור ישירות תחת UV ולטפל גילוח בזהירות.
    7. הגבר את קלטת CAT מופקת 1.2.6 על ידי תגובת שרשרת פולימראז (PCR) באמצעות פריימרים המיועדים ב 1.1 המכילים מסוכך הומולוגי לרצף הגנטי כדי לאפשר הומולוגי. PCR תגובות מוגדרות על קרח באמצעות הנחיות יצרן (לוח חומרים) לפי הסדר הבא:
      1. לתוךצינור סטרילי PCR, להוסיף נפח מתאים של DDH 2 O לנפח סופי של 50 μL, ואחריו 10 μL של חיץ PCR, 1 μL של 10 מ"מ dNTPs, 2.5 μL של פריימר קדימה 10 מיקרומטר, 2.5 μL של 10 מיקרומטר פריימר הפוך , 1-25 ng של DNA תבנית מתוך 1.2.6 ו -0.5 μL של 100 יחידות / פולימראז μL DNA.
      2. הגדרת כביקורת שלילית הנושאת אותם מרכיבים כמו 1.2.7.1 אבל למעט תבנית ה- DNA. השתמש נפח מתאים של DDH 2 O במקום תבנית ה- DNA. הגדרה כביקורת חיובית באמצעות ה- DNA תבנית פריימרים כי הוכחו לעבוד תגובת PCR, כגון אלו המסופקים על כביקורת חיובית על ידי היצרן.
      3. מערבבים את כל תוכן התגובה בעדינות על ידי pipetting.
      4. להגביר באמצעות PCR באמצעות ההגדרות הבאות: denaturation ראשונית למשך 30 שניות על 98 מעלות צלזיוס, 30 מחזורים של denaturation במשך 10 שניות על 98 מעלות צלזיוס, חישול פריימר עבור 20 שניות, הארכה למשך 20 s לכל kilobase של amplicon ב 72 ° C ו סְנַפִּיררחבה אל במשך 10 דקות ב 72 מעלות. חנות דגימות ב -20 ºC.
    8. אשר את גודל ההגברה הנכון באמצעות ג'ל אלקטרופורזה agarose (ראה 1.2.4-1.2.5) באמצעות רק 5 μL של כל תגובה. לטהר את amplicon PCR באמצעות ערכת טיהור PCR ו פרוטוקול של היצרן. חנות מטוהרים DNA ב -20 ºC.
  3. הפלסמיד Recovery-גן pK184
    1. עיצוב פריימר קדימה החל 5 שלה "הסוף והולך לכיוון 3 'בסוף לפי הסדר הבא: (א) לאסוף 4 נוקלאוטידים אקראיים (שילוב של אדנין, תימין, גואנין ציטוזין) עבור יעילות מחשוף, מצורפים (ב) אנזים הגבלה EcoRI רצף באתר חתך (RE) (GAATTC), ואחריו (ג) רצף נוקליאוטידים 21-25 נ"ב ארוך כי הוא הומולוגיים עד הסוף '5 של הגן של עניין, כולל קודון ההתחלה. אם גן היעד מכיל אתר EcoRI, לבחור אחר RE המתאים מתוך אתר השיבוט המרובה pK184.
    2. עיצוב פריימר הפוך לפי הסדר הבא: (א) לאסוף 4 נוקלאוטידים אקראיים יעיל מחשוף, ואחריו (ב) רצף לחתוך אתר HindIII (AAGCTT) ואחריו (ג) המשלימים ההפוכים הארוכים 21-25 נ"ב של 3 "בסופו של הגן של עניין כולל קודון עצירה. אם גן היעד מכיל אתר HindIII, לבחור RE אחר אתר השיבוט המרובה pK184.
    3. במקרה של הגנים המקודדים חלבונים periplasmic, כולל רצף מנהיג נוסף בין האתר RE ואת קודון ההתחלה על פריימר קדימה.
    4. באמצעות כל-מנתח אוליגו זמין, לבדוק כי יש פריימרים תוכן GC בין 40-60%, מ T סיכת ראש נמוך, עצמית נמוכה מ T הטרו-dimerization של. להזמין פריימרים עבור סינתזה.
    5. לגדול תרבות O / N של תאים DY330R pOX38-Tc ב LB סטרילי המכיל טטרציקלין 10 מיקרוגרם / מ"ל ​​(TC) עם רועד ב 32 ºC ו -200 סל"ד. צנטריפוגה 6-8 מ"ל של התרבות O / N בטמפרטורת החדר, 5000 XG במשך 3 דקות. למזוגsupernatant ו לחלץ את ה- DNA פלסמיד מן הגלולה באמצעות ערכת מיני-הכנה פלסמיד (לוח חומרים) ופרוטוקול של היצרן.
    6. להגביר את הגן מלא עניינים עם פריימרים מ 1.3.1-1.3.5 באמצעות pOX38-Tc כתבנית (ראה 1.2.7.1-1.2.7.3).
    7. אשר את גודל ההגברה הנכון באמצעות ג'ל אלקטרופורזה agarose (ראה 1.2.4-1.2.5) באמצעות רק 5 μL של כל תגובה. לטהר את הדנ"א המוגבר באמצעות ערכת טיהור PCR ו הפרוטוקול של היצרן. חנות מטוהרים DNA ב -20 ° C.
    8. האם תקציר אתגר כפול של ה- DNA פלסמיד pK184 הזמין המסחרי ואת הגן המוגבר (מ 1.3.7.), על ידי הוספת הבאים לתוך צינור סטרילי לפי הסדר: נפח מתאים של DDH 2 O לנפח סופי של 50 μL , נפח 1 מיקרוגרם של פלסמיד pK184, 5 חיץ התגובה μL 10x אנזים, ו 1 μL של כל EcoRI ו HindIII.
      1. לערבב בעדינות על ידי pipetting ולתת התגובה להמשיך במשך שעה 1ב 37 ºC. מחממים להשבית את התגובה במשך 20 דקות ב 80 ºC. דגימות חנות ב -20 מעלות צלזיוס למשך לא יותר מ -24 שעות כדי למזער השפלה דביקה-סוף.
        הערה: הסוג של nuclease ההגבלה משמש כאן תלוי באתר nuclease ההגבלה כי תוכנן לתוך פריימרים בצעדים 1.3.1 ו 1.3.2.
      2. כביקורת חיובית, להגדיר מעכל יחיד של פלסמיד pK184 ידי הכנת אותה התגובה כמו 1.3.8 למעט להוסיף רק אחד המיל לצינור תגובה. האם זה בנפרד עם שני מיל.
    9. הפעל את מעכל על ג'ל agarose 1.2% תוך שימוש בפרוטוקולים 1.2.4-1.2.5 חלץ את הדנ"א הכפול לעכל שברי שניהם pK184 ואת הגן של ריבית לפי לשלב 1.2.6.
    10. ולקשור את הכנס הגן לתוך וקטור pK184 ידי הוספת רכיבים לתוך צינור סטרילי לפי הסדר הבא: 2 μL של 10x הצפת האנזים T4 DNA, על סך של 100 DNA ng מורכב 1: וקטור 3: הכנס (pK184: הגן) יחס, DDH 2 O עדנפח כולל של 20 μL ו 1 אנזים μL T4 DNA. כביקורת שלילית, להקים תגובה דומה באמצעות 100 ננוגרם של וקטור ללא גן הכנס.
      1. בעדינות מערבבים את כל תוכן התגובה באמצעות micropipette דגירה במשך 30 דקות ב 25 מעלות צלזיוס. מחמם להשבית את תגובת הקשירה במשך 10 דקות ב 65 מעלות צלזיוס ולאחר מכן למקם על קרח.
    11. בעוד על הקרח, מוסיפים 15 μL של גנים pK184 תגובת קשירת משלב 1.3.10 100 μL של תאי DH5α מוסמך כימי בתוך שפופרת מיליליטר 1.5 סטרילית. לערבב בעדינות על ידי pipetting ו דגירה על קרח למשך 10 דקות. לעשות את אותו הדבר עבור מדגם הביקורת השלילית. לקבלת כביקורת חיובית, להשתמש 20-100 ng של פלסמיד כגון pBAD33 ולהפכו 50 μL של DHα תאים.
    12. ישירות להעביר את דגימות קרח לתוך אמבט מים C ° 42 ו דגירה במשך 90 שניות. זה מספק את התאים הלם חום ומאפשר להם ספיגת ה- DNA פלסמיד.
    13. המקום התאים בחזרה על קרח למשך עוד5 דקות ולאחר מכן להוסיף 900 ​​μL של LB. סטרילי לדגור על 37 מעלות צלזיוס במשך שעה 1 תוך רועד ב 125 סל"ד.
    14. Aliquot נפח 100 μL של מדגם מתוך כל תגובה קשירת ב 1.3.13 לצלחת אגר המכיל kanamycin 50 מיקרוגרם / מ"ל ​​(ק"מ) ולהפיץ את התאים באמצעות מפזר סטרילי. צלחת הבקרה החיובית צריכה טיפול אנטיביוטי מתאים. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. דגירה את הצלחת במהופך לילה 37 ° C.
    15. בעזרת פיפטה או לולאה סטרילי, לקצור מושבה ברורה יחידה של תאים לחסן 20 מיליליטר LB סטרילי עם 50 מיקרוגרם / מיליליטר קילומטר. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. לגדל את התאים O / N ב 37 ° C עם רועד ב 200 סל"ד.
    16. הפוך 3-5 מניות גליצרול של תאים DH5α השתנה על-ידי ערבוב 500 μL של התרבות O / N עם 500 μL של גליצרול 100% סטרילי (נ 50% הסופי / v) ושפופרות קריו סטרילי. חנות ב -80 מעלות צלזיוס.
    17. כמו כן צנטריפוגות 6-8 מ"ל של O / תרבות N בטמפרטורת החדר, 5,000 XG במשך 3 דקות. למזוג supernatant ולחלץ את הפלסמיד ההתאוששות-גן pK184 מן הגלולה באמצעות ערכת מיני-הכנה פלסמיד (לוח חומרים) ופרוטוקול של היצרן.
  4. pK184 - מוטאנטים גן
    הערה: פריימרים המיועדים מחיקות, הוספות ו / או מוטציות נקודתיות ניתן להפיק בקלות באמצעות הכלים הזמינים באינטרנט היצרנים.
    1. כל עיצוב פריימר קדימה באמצעות בחירת רצף נוקליאוטידים ארוך 18-32 נ"ב כי הוא הומולוגי עד סוף '5 של הגן של עניין, כולל קודון ההתחלה. פריימרים עיצוב כך שכל פריימר קדימה anneals 30-180 נ"ב במורד זרם של אחד הקודם, וכתוצאה מכך מוטנטים מחיקה חסר שברי פפטיד N- מסוף באורכים מתאימים.
    2. עיצוב פריימר הפוך באמצעות בחירת רצף נוקליאוטידים ארוך 18-32 נ"ב כי הוא הומולוגי עד סוף '3 של הגן של עניין כולל קודון העצירה. העתק פריימר זה לתוךהתכנית ביואינפורמטיקה NY הזמינה ולהמיר את הרצף לתוך השלמה ההפוכה שלה. זהו פריימר ההפוכה.
      1. במקרה של הגנים המקודדים חלבונים periplasmic, לעצב את פריימר הפוכה כי הוא המשלים השני של 'סוף רצף מנהיג חביות 5' 3 סוף הגן, והוא נחוץ לצורך לוקליזציה הנכון של המוצר החלבון periplasm.
    3. באמצעות כל תוכנית אוליגו-מנתח זמין, לבדוק כי פריימרים המחיקה יש תוכן GC בין 40-60%, טמפרטורת ההתכה סיכת ראש נמוך (T מ '), עצמי נמוך מ T הטרו-dimerization של. להזמין פריימרים עבור סינתזה המשלוח מ חברת הביוטכנולוגיה כל זמין.
    4. באמצעות מבנה הגן-pK184 שהושגו פרוטוקול 1.3 כתבנית ואת ההנחיות 1.2.7-1.2.8, PCR להגביר את בונה המחיקה עם פריימרים המיועדים בצעדים 1.4.1-1.4.3 ליצור amplicons pK184-גן ΔX . דנ"א מוגבר חנותt -20 ° C.
    5. ולקשור את המבנה המוגבר באמצעות ערכת mutagenesis כל זמין (לוח חומרים).
    6. Transform כל אחד ligates ΔX pK184-הגן בנפרד לתאי DH5α מוסמך כימי באמצעות פרוטוקול הלם חום סטנדרטי (ראה 1.3.11-1.3.13).
    7. Aliquot נפח 100 μL של מדגם מתוך כל תגובת קשירה ב 1.4.12 לצלחת אגרה המכילה 50 מיקרוגרם / מיליליטר קילומטר ולהפיץ את התאים באמצעות מפזר סטרילי. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. דגירה את הצלחת במהופך לילה 37 ° C.
    8. בעזרת פיפטה או לולאה סטרילי, לקצור מושבה ברורה יחידה של תאים לחסן 20 מיליליטר תקשורת סטרילי LB עם 50 מיקרוגרם / מיליליטר קילומטר. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. לגדל את התאים O / N ב 37 ° C עם רועד ב 200 סל"ד.
    9. הפוך 3-5 מניות גליצרול של תאים DH5α השתנה על-ידי ערבוב 500 μL של התרבות O / N עם 500 μL של גליצרול 100% סטרילי (f50% Inal v / v) ב קריו-צינורות סטרילית. חנות ב -80 מעלות צלזיוס.
    10. צנטריפוגה 6-8 מ"ל של התרבות O / N בטמפרטורת החדר, 5000 XG במשך 3 דקות. למזוג supernatant ולחלץ את הפלסמיד ΔX גן pK184 לבנות מן הגלולה באמצעות ערכת מיני-הכנה פלסמיד (לוח חומרים) ופרוטוקול של היצרן. דנ"א חנות ב -20 מעלות צלזיוס.

הדור 2. pOX38-Tc Δgene :: ס"מ זנים

  1. DY330R pOX38-Tc Δgene :: knockouts ס"מ
    1. הכן תרבות O / N של תאים DY330R pOX38-Tc ב 10 מ"ל סטרילי LB המכיל 10 מיקרוגרם / מ"ל ​​Tc. לגדול בתרבות O / N ב 32 מעלות צלזיוס, 200 סל"ד.
    2. בצע 1:70 דילול של התרבות O / N לתוך 20 מ"ל של LB. סטרילי טרי לגדל את התאים ב 32 מעלות צלזיוס עד אמצע יומן שלב (OD 600nm 0.4-0.6) צמיחה.
    3. העברת 10 מ"ל של התרבות בבקבוק סטרילי לדגור על 42 מעלות צלזיוס במשך 15 דקות ב 150 סל"ד בתוך ba מים רועדה. זה יניע את הביטוי של חלבונים ספציפיים רקומבינציה DY330R.
    4. צ'יל התרבות באמבט מי קרח למשך 10 דקות. כן תאי electrocompetent כדלקמן.
      1. העברת התאים הצוננים לתוך צינורות חרוטים מראש צוננים צנטריפוגות ב 4000 XG במשך 7 דקות ב 4 ºC. כל הצינורות טפטפות כדי לשמש השלבים הבאים צריכים להיות ממוקמים על 4 מעלות צלזיוס או על קרח כדי לקרר.
      2. הסר את supernatant בעדינות resuspended התאים 1 מ"ל של DDH קר כקרח 2 O. הוסף עוד 30 מ"ל של DDH קרים כקרח 2 O.
      3. צנטריפוגה התאים (4,000 XG, 7 דקות, 4 ° C), לבטל את supernatant בעדינות resuspended התאים 1 מ"ל של DDH קר כקרח 2 O.
      4. העברת התאים resuspended לתוך 1.5 מראש צונן צינורות מ"ל microfuge צנטריפוגות ב 15,000 XG דקות 1 ב 4 ºC.
      5. בעדינות resuspended גלולה ב 200 μL של DDH קר כקרח 2 O ו aliquot ב -50 כרכים μL. Electrocompeteניתן לאחסן תאי NT ב -80 ° C
    5. להוסיף 300 ננוגרם של קלטת CAT המוגברת של 1.2 לתוך 50 μL של תאי electrocompetent DY330R pOX38-Tc תוך ערבוב על קרח, בעדינות על ידי pipetting למעלה ולמטה. חזור על שלב זה באמצעות פלסמיד ללא שינוי pBAD33 כביקורת חיובית.
    6. העברת התאים קובט electroporation מראש מקורר (-20 ° C) 1 מ"מ. Electroporate התאים ב 1.8 קילו וולט עם זמן קבוע של 5.5 מילי-שניות, באמצעות electroporator. מיד לאחר החלת הדופק, לדלל את התאים עם 1 מ"ל של SOC התקשורת ולהעביר לצינור microfuge טריים. דגירת התאים ב 32 מעלות צלזיוס למשך 2 שעות.
    7. Aliquot 100 μL של כל דגימה על צלחות אגר המכיל 10 מיקרוגרם / מ"ל ​​Tc ו -20 מיקרוגרם / מ"ל ​​ס"מ להפיץ באמצעות מפזר סטרילי. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. דגירה את הצלחת במהופך לילה C 32 ° לבחור עבור recombinants המוצלח. קלטת CAT מוחדרת התא חייב לעבור מחדש הומולוגייםבשילוב עם הגן של עניין וליצור ס"מ DY330R pOX38-Tc Δgene :: (הרי"ף R, Tc R, Cm R) שיבוט.
      הערה: חשוב לגדל תאי DY330R על 32 מעלות צלזיוס, למעט אינדוקצית 15 דקות ב 42 ° C של שלב 2.1.3 לפני יוצרות תאי electrocompetent, כמו צמיחה ממושכת בטמפרטורות גבוהות סיכוני מוות של תאים עקב הייצור מוצרים רעילים של מן אופרון p L אחראי על פונקציות רקומבינציה DY330R. 33,34
    8. הכן O / N של DY330R pOX38-Tc Δgene :: תאים ס"מ על קצירת מושבה מובחנת תאים אחת עם טפטפת או לולאה סטרילי, וכך גם יחסנו מדיה 20 מ"ל סטרילי LB עם 10 מיקרוגרם / מ"ל ​​Tc, ו -20 מיקרוגרם / מ"ל ס"מ. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. לגדל את התאים O / N ב 32 ° C עם רועד ב 200 סל"ד.
    9. הפוך 3-5 מניות גליצרול מן O / N ידי ערבוב 500 μL של התרבות O / N עם 500 μL של GL סטרילי 100%ycerol (נ 50% הסופי / v) צינורות-קריו סטרילי. חנות ב -80 מעלות צלזיוס.
    10. צנטריפוגה 6-8 מ"ל של התרבות O / N בטמפרטורת החדר, 5000 XG במשך 3 דקות. למזוג supernatant ולחלץ ס"מ pOX38-Tc Δgene :: לבנות מן הגלולה באמצעות ערכת מיני-הכנה פלסמיד (לוח חומרים) ופרוטוקול של היצרן; לאחסן DNA מטוהרים ב -20 ° C.
    11. בצע assay ההזדווגות conjugative באמצעות XK1200 תאים כמקבל לאשר שיבוש נטיה ידי נוקאאוט גנטי לפי פרוטוקול 3.1.
  2. DY330R pOX38-Tc Δgene :: ס"מ + pK184-גן
    1. משנים תאים DY330R pOX38-Tc Δgene :: ס"מ electrocompetent עם 300 ננוגרם של לבנות pK184-גן דרך electroporation לפי שלבים 2.1.4-2.1.7. כל התקשורת סלקטיבית חייב לכלול 20 מיקרוגרם / מ"ל ​​ס"מ ו 50 מיקרוגרם / מ"ל ​​ק"מ. לדגור על C ° 32. הפלסמיד התאוששות תאי electroporated כעת ישחזר את הפונקציה של הגן בנוקאאוט DY330R pOX38-Tc Δgene :: תאים ס"מ.
    2. כן O / N של DY330R pOX38-Tc Δgene :: תאי רקומביננטי הסנטימטר + pK184-גן על ידי קצירת מושבה ברורה יחידה של התאים עם טפטף או לולאה סטרילי, וכך גם ייחסת מדיה 20 המ"ל סטרילי LB עם 20 מיקרוגרם / מיליליטר סנטימטר ו -50 מיקרוגרם / מ"ל ​​ק"מ. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. לגדל את התאים O / N ב 32 ° C עם רועד ב 200 סל"ד.
    3. הפוך 3-5 מניות גליצרול מן O / N ידי ערבוב 500 μL של התרבות O / N עם 500 μL של גליצרול 100% סטרילי (נ 50% הסופי / v) ושפופרות קריו סטרילי. חנות ב -80 מעלות צלזיוס.
    4. כמו כן לבצע פרוטוקול 3.1 כדי ליצור XK1200 pOX38-Tc Δgene :: ס"מ תאים רקומביננטי.
  3. XK1200 pOX38-Tc Δgene :: ס"מ + pK184-גנים מוטאנטים
    1. כן תאי XK1200 pOX38-Tc Δgene :: סנטימטר electrocompetent (משלב 2.2.4).
    2. בנפרד electroporate 300 ננוגרם של פלסמידים מוטציה pK184-גן או pK184-גן לתוך 50 μL של electrocompetent XK1200 pOX38-Tc Δgene :: תאים ס"מ לפי שלבים 2.1.4-2.1.7. כל התקשורת סלקטיבית צריכה להכיל חומצת nalidixic 10 מיקרוגרם / מיליליטר (סופית), 20 מיקרוגרם / מיליליטר סנטימטר, ו -50 מיקרוגרם / מיליליטר קילומטר ולהיות וטופחה על 37 מעלות צלזיוס.
    3. כן O / N של XK1200 pOX38-Tc Δgene :: תאי רקומביננטי הסנטימטר + pK184-גן על ידי קצירת מושבה ברורה יחידה של התאים עם טפטף או לולאה סטרילי, וכך גם ייחסת מדיה 20 המ"ל סטרילי LB עם מאיץ לאומי, 20 מיקרוגרם / מיליליטר ס"מ ו -50 מיקרוגרם / מ"ל ​​ק"מ. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. לגדל את התאים O / N ב 37 ° C עם רועד ב 200 סל"ד.
    4. הפוך 3-5 מניות גליצרול מן O / N ידי ערבוב 500 μL של התרבות O / N עם 500 μL של גליצרול 100% סטרילי (נ 50% הסופי / v) ושפופרות קריו סטרילי. חנות ב -80 מעלות צלזיוס.

3. מבחני מזווג Conjugative

  1. Conjugative הזדווגות כדי ליצור XK1200 pOX38-Tc Δgene :: ס"מ תאים
    1. הכן 20 מ"ל סטרילי LB O / מבוי סתום Nture של DY330R pOX38-Tc Δgene :: תאים ס"מ + pK184-גן באמצעות פיפטה או לולאה סטרילי כדי לחסן 20 מ"ל סטרילי LB המכיל 20 מיקרוגרם / מ"ל ​​ס"מ ו 50 מיקרוגרם / מ"ל ​​ק"מ עם מלאי גליצרול או מושבה אחת על צלחת אגרה. לגדול ב 32 ° C עם רועד ב 200 סל"ד. הכן את אותו הדבר עבור XK1200 תאים 20 המ"ל סטרילי LB עם 10 מיקרוגרם / מיליליטר סופי, גדל ב 37 מעלות צלזיוס.
    2. הפוך 1:70 דילולים של כל תרבות בנפרד 2 מ"ל של LB סטרילי עם אותו תוכן אנטיביוטיקה; להוסיף גלוקוז לריכוז סופי של 100 מ"מ לכל תאי התורם. לגדל תאים לשלב יומן אמצע (OD 600 0.5-0.7) על 37 מעלות צלזיוס עם רועד ב 200 סל"ד.
    3. צנטריפוגה (4,000 XG במשך 5 דקות ב 4 ° C) עד גלולה התאים, להשליך supernatant, ולשטוף פעם עם LB סטרילי קר להסיר אנטיביוטיקה, ותאי resuspend ב 2 מ"ל LB. סטרילי קר
    4. Aliquot 100 μL של כל תרבות לתוך 800 μL של התקשורת LB סטרילי ולאפשר להם להזדווג על 32 מעלות צלזיוס במשך שעה 1 בלי לרעוד.
    5. וורטקס התאים למשך 30 שניות כדי לשבש את זוגות ההזדווגות ומניחים אותם על קרח למשך 10 דקות כדי למנוע הזדווגות נוספת.
    6. Aliquot 100 μL של תערובת התאים על צלחת אגרה המכילה 10 מיקרוגרם / מיליליטר סופי ו -20 מיקרוגרם / מיליליטר סנטימטר כדי לבחור עבור XK1200 pOX38-Tc Δgene :: תאי סנטימטר. מורחים את התאים באמצעות מפזר סטרילי. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. וטופח הצלחת O / N ב 37 ° C-במהופך.
    7. קציר מושבה אחת של הגן XK1200 pOX38-Tc Δ חדש :: ס"מ זן בנוקאאוט בעזרת פיפטה או לולאה סטרילי ולגדול LB סטרילי עם 20 מיקרוגרם / מ"ל ​​ס"מ, O / N ב 37 ° C עם רועד ב 200 סל"ד. הפוך 3-5 מניות גליצרול מן O / N ידי ערבוב 500 μL של התרבות O / N עם 500 μL של גליצרול 100% סטרילי (נ 50% הסופי / v) ושפופרות קריו סטרילי. חנות ב -80 מעלות צלזיוס.
      הערה: התאים כתוצאה מסוגלים עכשיו להתבצע מוסמכות לטרנספורמציה עם הבונה-גן pK184 (פרוטוקולי 1.3 ו -1.4) עבור תחתessing הגן מוטנטים שלו על היכולת לשחזר העברת conjugative בפרוטוקול 3.2.
  2. Conjugative Assay הזדווגות מ XK1200 תורמים לנמענים MC4100
    1. הכן O / תרבות N של XK1200 pOX38-Tc Δgene :: ס"מ + pK184-גן התאים 20 מ"ל של LB סטרילי עם 20 מיקרוגרם / מ"ל ​​ס"מ, 50 מיקרוגרם / מ"ל ​​ק"מ ותאי MC4100 ב 5 מ"ל LB עם 50 מיקרוגרם / מ"ל ​​סטרפטומיצין (SM) התאים באמצעות ממלאי גליצרול או מושבה אחת על צלחת אגר וסטרילי פיפטה או לולאה. לגדול תרבויות ב 37 ° C עם 200 סל"ד רועד.
    2. הפוך 1:70 דילולים מכל תרבות O / N בנפרד 2 מ"ל של LB סטרילי עם אותה אנטיביוטיקה. להוסיף גלוקוז לריכוז סופי של 100 מ"מ לכל תאי התורם. לגדל תאים לשלב יומן אמצע (OD 600 0.5-0.7) על 37 מעלות צלזיוס עם רועד ב 200 סל"ד.
    3. צנטריפוגה (4,000 XG במשך 5 דקות ב 4 ° C) עד גלולת תאים, להשליך supernatant, ולשטוף פעם עם LB סטרילי קר להסיר antibioטיקים, ותאי resuspend ב 2 LB. סטרילי קר מ"ל
    4. בשני עותקים, aliquot 100 μL של כל תרבות לתוך 800 μL של התקשורת LB סטרילי ולאפשר להם להזדווג על 37 מעלות צלזיוס במשך שעה 1 בלי לרעוד.
    5. וורטקס התאים למשך 30 שניות כדי לשבש את זוגות ההזדווגות ומניחים אותם על קרח למשך 10 דקות כדי למנוע הזדווגות נוספת.
    6. שימוש תרבויות יומן אמצע משלב 3.2.2 ו LB סטרילי טרי, להכין 6 דילולים סדרתי של תאים התורם והמקבל מ 10 -2 עד 10 -7.
    7. על כל אחד משני חצי צלחת אגרה המכילה 10 מיקרוגרם / מיליליטר סופי, 20 מיקרוגרם / מיליליטר סנטימטר ו 50 מיקרוגרם / מיליליטר קילומטר, במקום 10 aliquots μL של כל דילול XK1200 תאים תורמים, כפי שמוצג באיור 2. חזור על דילולים של תאים MC4100 הנמען על צלחות אגר המכיל 50 מיקרוגרם / מ"ל ​​Sm. דגירה צלחות O / N ב 37 מעלות צלזיוס.
    8. באמצעות תערובת vortexed משלב 3.2.5 LB סטרילי טרי, להכין 6 דילולים (10 -2 עד 10 -7 ) של transconjugants. בחר עבור transconjugant MC4100 pOX38-Tc Δgene :: תאים ס"מ על תצפית 10 aliquots μL של כל אחד דילול על כל מחצית של צלחות אגר המכיל 50 מיקרוגרם / מ"ל Sm ו -20 מיקרוגרם / מ"ל ס"מ, כמו באיור 2. חזור על פעולה עבור שני תערובות כפולות. שמור על שטח סטרילי ולעבוד ליד להבה. דגירה צלחות O / N ב 37 מעלות צלזיוס.
    9. לקבוע את יעילות ההזדווגות של כל מבנה כמתואר בפרוטוקול 3.3.
    10. חזור על פרוטוקול זה עבור כל פלסמידים ההתאוששות כדי להעריך את ההשפעה של מוטציה מסוימת על היעילות של נטייה.
  3. חישוב יעיל הזדווגות
    1. ספירת מושבות מאותה תצפית דילול לכל תאי תורם, נמען transconjugant על הצלחות שלהם.
    2. רוזן מושבות נמען לבדוק הטיות, שהיה נובעות שיש מספר גדול יותר של transconjugants מ נמענים כי הדילול נתון.
    3. Calculate את יעילות ההזדווגות כמספר מושבות transconjugant חלקות מספר מושבות תורמות. כפל על ידי 100 כדי לקבל את הערך יעיל ל -100 תאים תורמים.

תוצאות

תהליך קוניוגציה מונחה פלסמיד F הוא תהליך מתואם המערבת חלבוני הובלה בתוך אזור tra של ה- F-פלסמיד כי מרכיב T4SS כדי להקל סינתזת pilus והעברת DNA conjugative. החלבון traf (ההצטרפות GenBank # BAA97961; UniProt מזהה P14497) דרושה להיווצרות F-pilus conjugative. 10,14,35 - 37 החלבו...

Discussion

תהליך קוניוגציה מספק שבאמצעותו החיידק עלול להתפשט גנים מתן יתרון אבולוציוני לצמיחה בסביבות מאתגרות, כגון התפשטות סמנים עמידות לאנטיביוטיקה. מכיוון שרבי פלסמידים conjugative כל כך גדולים, 12 מחקרים תפקודיים על חלבוני המעורבים הרכבה של מנגנון ההעברה באמצעות מוטציות ...

Disclosures

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

Acknowledgements

מחקר זה מומן על ידי דיסקברי גרנט ממדעי הטבע וההנדסה המועצה של קנדה (NSERC).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
GeneJet Plasmid Mini-Prep KitFisher ScientificK0503
GeneJet Gel Extraction KitFisher ScientificK0692
GeneJet PCR Purification KitFisher ScientificK0702
Q5 Site-Directed Mutagenesis KitNew England BiolabsE0554S
Broad Range DNA LadderNew England BiolabsN0303A
Petri DishesFisher ScientificFB0875713
ElectroporatorEppendorf4309000027
Electroporation cuvettesFisher ScientificFB101Cuvettes have a 1 mm gap.
Enzymes
AvaINew England BiolabsR0152S
EcoRINew England BiolabsR0101S
HindIIINew England BiolabsR0104L
NdeINew England BiolabsR0111S
Phusion DNA PolymeraseNew England BiolabsM0530L
T4 DNA LigaseNew England BiolabsM0202S
DpnINew England BiolabsR0176S
AntibioticsFinal Concentrations
Chloramphenicol (Cm)Fisher ScientificBP904-10020 µg/mL
Kanamycin (Km)BioBasic Inc.DB028650 µg/mL
Nalidixic acid (Nal)Sigma-AldrichN8878-25G10 µg/mL
Rifampicin (Rif)Calbiochem55730320 µg/mL
Tetracycline (Tc)Fisher ScientificBP912-10010 µg/mL
Streptomycin (Sm)Fisher ScientificBP910-5050 µg/mL

References

  1. Dobrindt, U., Hochhut, B., Hentschel, U., Hacker, J. Genomic islands in pathogenic and environmental microorganisms. Nat Rev Microbiol. 2 (5), 414-424 (2004).
  2. Furuya, E. Y., Lowy, F. D. Antimicrobial-resistant bacteria in the community setting. Nat Rev Microbiol. 4 (1), 36-45 (2006).
  3. Griffiths, A., Miller, J., Suzuki, D., Lewontin, R., Gelbart, W. . An Introduction to Genetic Analysis, 7th Edition. , (2000).
  4. Cooper, T. F., Barton, N. H. Recombination Speeds Adaptation by Reducing Competition between Beneficial Mutations in Populations of Escherichia coli. PLoS Biol. 5 (9), 225 (2007).
  5. Lujan, S. A., Guogas, L. M., Ragonese, H., Matson, S. W., Redinbo, M. R. Disrupting antibiotic resistance propagation by inhibiting the conjugative DNA relaxase. Proc Natl Acad Sci. 104 (30), 12282-12287 (2007).
  6. Carattoli, A. Plasmids and the spread of resistance. Int J Med Microbiol. 303 (6-7), 298-304 (2013).
  7. Shala, A., Ferraro, M., Audette, G. F., Bawa, R., Audette, G. F., Rubenstein, I. Bacterial Secretion Systems: Nanomachines for Infection and Genetic Diversity. Handbook of Clinical Nanomedicine: Nanoparticles, Imaging, Therapy and Clinical Applications. , 657-686 (2016).
  8. Tseng, T. T., Tyler, B. M., Setubal, J. C. Protein secretion systems in bacterial-host associations, and their description in the Gene Ontology. BMC Microbiol. 9 (1), 2 (2009).
  9. Alvarez-Martinez, C. E., Christie, P. J. Biological diversity of prokaryotic type IV secretion systems. Microbiol Mol Biol Rev. 73 (4), 775-808 (2009).
  10. Lawley, T. D., Klimke, W. A., Gubbins, M. J., Frost, L. S. F factor conjugation is a true type IV secretion system. FEMS Microbiol Lett. 224 (1), 1-15 (2003).
  11. Lederberg, J., Tatum, E. L. Gene Recombination in Escherichia Coli. Nature. 158 (4016), 558-558 (1946).
  12. Smillie, C., Garcillan-Barcia, M. P., Francia, M. V., Rocha, E. P. C., de la Cruz, F. Mobility of Plasmids. Microbiol Mol Biol Rev. 74 (3), 434-452 (2010).
  13. Willetts, N., Skurray, R. The Conjugation System of F-Like Plasmids. Annu Rev Genet. 14 (1), 41-76 (1980).
  14. Frost, L. S., Ippen-Ihler, K., Skurray, R. A. Analysis of the sequence and gene products of the transfer region of the F sex factor. Microbiol Rev. 58 (2), 162-210 (1994).
  15. Audette, G. F., Manchak, J., Beatty, P., Klimke, W. A., Frost, L. S. Entry exclusion in F-like plasmids requires intact TraG in the donor that recognizes its cognate TraS in the recipient. Microbiology. 153, 442-451 (2007).
  16. Christie, P. J., Atmakuri, K., Krishnamoorthy, V., Jakubowski, S., Cascales, E. Biogenesis, Architecture, and Function of Bacterial Type Iv Secretion Systems. Annu Rev Microbiol. 59 (1), 451-485 (2005).
  17. Christie, P. J. Type IV secretion: the Agrobacterium VirB/D4 and related conjugation systems. Biochim Biophys Acta - Mol Cell Res. 1694 (1-3), 219-234 (2004).
  18. Bhatty, M., Laverde Gomez, J. a., Christie, P. J. The expanding bacterial type IV secretion lexicon. Res Microbiol. 164 (6), 620-639 (2013).
  19. Christie, P. J., Cascales, E. Structural and dynamic properties of bacterial Type IV secretion systems (Review). Mol Membr Biol. 22 (1-2), 51-61 (2005).
  20. Christie, P. J. Type IV secretion: Intercellular transfer of macromolecules by systems ancestrally related to conjugation machines. Mol Microbiol. 40 (2), 294-305 (2001).
  21. Christie, P. J., Whitaker, N., González-Rivera, C. Mechanism and structure of the bacterial type IV secretion systems. Biochim Biophys Acta. 1843 (8), 1578-1591 (2014).
  22. Cascales, E. The type VI secretion toolkit. EMBO Rep. 9, 735 (2008).
  23. Silverman, J. M., Brunet, Y. R., Cascales, E., Mougous, J. D. Structure and Regulation of the Type VI Secretion System. Annu Rev Microbiol. 66 (1), 453-472 (2012).
  24. Chandran, V., et al. Structure of the outer membrane complex of a type IV secretion system. Nature. 462 (7276), 1011-1015 (2009).
  25. Rivera-Calzada, A., et al. Structure of a bacterial type IV secretion core complex at subnanometre resolution. EMBO J. 32 (8), 1195-1204 (2013).
  26. Waksman, G., Fronzes, R. Molecular architecture of bacterial type IV secretion systems. Trends Biochem Sci. 35, 691 (2010).
  27. Fronzes, R., Christie, P. J., Waksman, G. The structural biology of type IV secretion systems. Nat Rev Microbiol. 7 (10), 703-714 (2009).
  28. Kaplan, M., et al. Probing a cell-embedded megadalton protein complex by DNP-supported solid-state NMR. Nat Methods. 12 (7), 5-9 (2015).
  29. Guyer, M. S., Reed, R. R., Steitz, J. A., Low, K. B. Identification of a sex-factor-affinity site in E. coli as gamma delta. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 45, 135-140 (1981).
  30. Anthony, K. G., Sherburne, C., Sherburne, R., Frost, L. S. The role of the pilus in recipient cell recognition during bacterial conjugation mediated by F-like plasmids. Mol Microbiol. 13 (6), 939-953 (1994).
  31. Jobling, M. G., Holmes, R. K. Construction of vectors with the pl5a replicon, kanamycin resistance, inducible lacZα and pUC18 or pUC19 multiple cloning sites. Nucleic Acids Res. 18 (17), 5315 (1990).
  32. Guzman, L. M., Belin, D., Carson, M. J., Beckwith, J. Tight regulation, modulation, and high-level expression by vectors containing the arabinose P(BAD) promoter. J Bacteriol. 177 (14), 4121-4130 (1995).
  33. Yu, D., et al. An efficient recombination system for chromosome engineering in Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci U S A. 97 (11), 5978-5983 (2009).
  34. Lawley, T. D., Gilmour, M. W., Gunton, J. E., Standeven, L. J., Taylor, D. E. Functional and Mutational Analysis of Conjugative Transfer Region 1 (Tra1) from the IncHI1 Plasmid R27. J Bacteriol. 184 (8), 2173-2180 (2002).
  35. Elton, T. C., Holland, S. J., Frost, L. S., Hazes, B. F-Like Type IV Secretion Systems Encode Proteins with Thioredoxin Folds That Are Putative DsbC Homologues. J Bacteriol. 187 (24), 8267-8277 (2005).
  36. Hazes, B., Frost, L. Towards a systems biology approach to study type II/IV secretion systems. Biochim Biophys Acta. 1778, 1839-1850 (2008).
  37. Lento, C., Ferraro, M., Wilson, D., Audette, G. F., Tsolis, R. HDX-MS and deletion analysis of the type 4 secretion system protein TraF from the Escherichia coli F plasmid. FEBS Lett. 590 (3), 376-386 (2016).
  38. Audette, G. F., Van Schaik, E. J., Hazes, B., Irvin, R. T. DNA-binding protein nanotubes: Learning from nature's nanotech examples. Nano Lett. 4, 1897-1902 (2004).
  39. Harris, R. L., Silverman, P. A. Tra proteins characteristic of F-like type IV secretion systems constitute an interaction group by yeast two-hybrid analysis. J Bacteriol. 186 (16), 5480-5485 (2004).
  40. Moore, D., et al. Characterization of the F-Plasmid Conjugative Transfer Gene traU. J Bacteriol. 172 (8), 4263-4270 (1990).
  41. Anthony, K. G., Sherburne, C., Sherburne, R., Frost, L. S. The role of the pilus in recipient cell recognition during bacterial conjugation mediated by F-like plasmids. Mol Microbiol. 13 (6), 939-953 (1994).
  42. Klimke, W. A., Frost, L. S. Genetic analysis of the role of the transfer gene, traN, of the F and R100-1 plasmids in mating pair stabilization during conjugation. J Bacteriol. 180 (16), 4036-4043 (1998).
  43. Jiang, W., Marraffini, L. A. CRISPR-Cas: New Tools for Genetic Manipulations from Bacterial Immunity Systems. Annu Rev Microbiol. 69 (1), 209-228 (2015).
  44. Dahlberg, C., Bergstrom, M., Andreasen, M., Christensen, B. B., Molin, S., Hermansson, M. Interspecies bacterial conjugation by plasmids from marine environments visualized by gfp expression. Mol Biol Evol. 15 (4), 385-390 (1998).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

119assayColi EscherichiaF4

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved