JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

פרוטוקול זה מתאר את השימוש של הדגם פעילות כויץ כרונית של תרגיל להתבונן הנוצרות על-ידי גירוי שרירי השלד עיבודים ב hindlimb החולדה.

Abstract

שרירי השלד הוא רקמה מאוד, כמו תכונותיו הביוכימי, פיזיולוגיים הם שינו באופן משמעותי בתגובה פעילות גופנית כרונית. לחקור את המנגנונים הבסיסית לגבי עיבודים שרירים שונים, מספר תרגיל פרוטוקולים כגון הליכון, גלגל ריצה ואימון שחייה היו בשימוש במחקרים בבעלי חיים. עם זאת, התרגיל אלה מודלים דורשים תקופה ארוכה של זמן כדי להשיג שרירים עיבודים, אשר עשוי להיות מוסדרים גם על ידי גורמים ההורמונאלית או נוירולוגיות, ובכך יגביל את היישומים שלהם ללמוד עיבודים הנוצרות על-ידי התכווצות של שרירים ספציפיים. גירוי עקיף בתדר נמוך (10 Hz) כדי לעודד פעילות כויץ כרונית (המרכז לאמנות עכשווית) שימש כמודל חלופי עבור תרגיל אימונים, כמו זה יכול בהצלחה להוביל עיבודים מיטוכונדריאלי שרירים תוך 7 ימים, עצמאית של גורמים מערכתית. מאמר זה מפרט את טכניקות ניתוחיות הדרוש כדי להחיל את הטיפול של המרכז לאמנות עכשווית שרירי השלד של חולדות, יישום נרחב בעתיד מחקרים.

Introduction

שרירי השלד יכול להסתגל תרגיל אימון באמצעות שינויים ביואנרגיה ואת המבנה הפיזי1. אחד השינויים העיקריים הביא על ידי אימון סבולת הוא להן מיטוכונדריאלי, אשר יכול להיות מוערך על ידי עלייה בביטוי של רכיבים מיטוכונדריאלי (למשל, ציטוכרום c אוקסידאז [קוקס] subunits), כמו גם הביטוי של coactivator תעתיק, PGC-1α2. מספר גדל והולך של מחקרים הראו כי גורמים רבים אחרים, כולל מחזור מיטוכונדריאלי, mitophagy, חשובים גם עיבודים שריר. עם זאת, המנגנון על ידי איזה תרגיל אקוטי או כרוני לווסת את אלה תהליכים בשרירי השלד לא ברורים.

על המסלולים המסדירה שריר הנגרמת עיבודים, מודלים שונים של פעילות גופנית היו בשימוש נפוץ במחקרים מכרסמים, כולל הליכון, גלגל ריצה ושחייה תרגיל. אולם, פרוטוקולים אלה יש כמה מגבלות בכך ~ 4-12 שבועות יש צורך לבחון אלו שינויים פנוטיפי3,4,5. ניסיוני כאמצעי חלופי, תדירות נמוכה הנוצרות על-ידי גירוי כרוני כויץ פעילות (המרכז לאמנות עכשווית) השתמשו ביעילות רבה, כמו זה יכול להוביל עיבודים שרירים תוך תקופה קצרה יותר באופן משמעותי (קרי, עד 7 ימים) ונראה את השפעותיו להיות דומה, או אף יותר מאשר פרוטוקולים אחרים פעילות גופנית. יתר על כן, הנוכחות של הורמונלי6, טמפרטורה7ותופעות נוירולוגיות8 עשוי להקשות להבין תגובות ספציפיות שרירים פעילות גופנית כרונית. לדוגמה, הורמון בלוטת התריס9,10 ו פקטורי גדילה דמויי אינסולין (IGF)-111 זוהו לתווך עיבודים הכשרה-induced שרירים, אשר יכול גם לווסת את איתות המסלולים אחרות בהשלד שריר. ראוי לציין, המרכז לאמנות עכשווית-induced אפקטים מינימלית מוסדרים על ידי גורמים מערכתית, המאפשר מיקוד להניחו על התגובה הישירה של שריר השלד כויץ פעילות.

היחידה חיצוני עבור המרכז לאמנות עכשווית הוצג לראשונה על ידי טיילר, רייט12, פותחה עם שינויים12. בקיצור, היחידה מורכבת משלושה חלקים עיקריים: גלאי אינפרא-אדום זה ניתן להפעיל ולכבות כתוצאה מחשיפה אור אינפרא-אדום, גנרטור הדופק, מחוון הדופק (איור 1). עיצוב מפורט מעגל של היחידה ממריץ היה שתואר לעיל13. המאפיינים המפורטים של המרכז לאמנות עכשווית ניתן למצוא יותר עומק במספר של סקירת מאמרים14,15,16,17. בקצרה, פרוטוקול גירוי נועד להפעיל את שיתוק נפוצות בתדר נמוך (קרי, 10 הרץ), ואת השרירים innervated (השוקתי הקדמי [ת א], השריר פושט האצבעות הארוך [אדי]) נאלצים נכלל בחוזה מראש את משך הזמן (למשל, h 3-6). לאורך זמן, זה משמרות את השרירים הנ ל כדי הפנוטיפ אירובית יותר, הפגינו מעלייה ברמת צפיפות נימי18 והן תוכן מיטוכונדריאלי19,20,21. לכן, בשיטה זו הוא מודל מוכח לחקות חלק עיבודים אימון סיבולת גדולה תוך שרירי השלד של חולדות.

מאמר זה מציג הליך מפורט של הניתוח השרשה אלקטרודה לזירוז המרכז לאמנות עכשווית, כך החוקרים ניתן להחיל את המודל הזה בלימודיהם תרגיל. המרכז לאמנות עכשווית היא דוגמנית מעולה ללמוד מסלול הזמן של עיבודים השריר, ובכך לספק כלי יעיל עבור חקירת האירועים המולקולריים איתות השונים בשתי נקודות זמן מוקדם ומאוחר יותר בעקבות תחילת תרגיל אימונים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

כל ההליכים הקשורים לבעלי חיים היו נבדקו ואושרו על-ידי יורק האוניברסיטה חיה טיפול הוועדה. עם ההגעה במתקן בעל חיים באוניברסיטת יורק, ניתנו כל העכברושים מינימום של חמישה ימים כדי להתרגל לסביבה שלהם לפני הליך כירורגי, עם מזון המסופק ad libitum. למרות פרוטוקול זה הוחל בעבר ל-17,15,22אחרים מינים, הנייר הנוכחי מתבסס על עבודתה החלוצית של Pette ועמיתיו23 , מתמקד המודל עכברוש, במיוחד.

1. הכנת יחידת פעילות כויץ כרונית

  1. בעזרת וולטמטר, בדוק את הפוטנציאל של סוללות ליתיום מטבע.
    הערה: הפוטנציאל של כל סוללה צריך להיות 3.0 ± 0.10 V.
  2. להוסיף 2-3 סוללות לתוך החריץ של היחידה כך הפוטנציאל הכולל הוא 6-9 V.
    הערה: זה תלוי שיקול הדעת של החוקרים לשקול כמה פוטנציאל (6 או 9 V) כדי לשמור על במהלך ההליך כולו נסיוני. בהתאם תכנון המחקר, את עוצמת הגירוי הרצוי, ניתן להשתמש בסוללות או 2 או 3.
  3. ודא כי היחידה פועלת כהלכה באמצעות מחוון הדופק, על ידי חשיפת את יחידת דופק 1 הנפלטת מנורה אינפרא-אדום נייד.

2. ניתוח של פעילות כויץ כרונית

הערה: לעקר כל כלי ניתוח לפני הליך כירורגי. הן במהלך והן מיד לאחר הניתוח, טמפרטורת הגוף של החולדות מתוחזק על ידי כרית החימום. רצוי לבצע הליך כירורגי על תלוי כירורגי. המנתח צריך ללבוש כפפות כירורגי סטרילי, כמו גם חלוק מעבדה נקייה. במקרה הצורך, מומלץ ללבוש מסיכה מכונת ההנשמה חד פעמיות.

  1. עזים ומתנגד חולדות תחת 1-3% איזופלוריין באינהלציה עם חמצן, אשר מופעל על ידי מערכת מאדה גז. אשר חיה היא הרגעה על-ידי בדיקת hindlimb הבוהן צביטה, על ידי התבוננות עומק הנשימה וקצב. החל עינית חומר סיכה על העיניים כדי למנוע יובש. החל זריקה תת עורית של Meloxicam (0.5 מ"ג/מ"ל) ב- 2 מ"ג/ק"ג.
    הערה: מומלץ גם יישום ומשולבות של שיכוך כאבים (למשל, Meloxicam בתוספת לידוקאין) כדי למזער כל כאב במהלך הניתוח ולאחריו.
  2. בעדינות לגלח את hindlimb שמאל, וכן רצועה מסביב הטורסו מהחלק האחורי של הצוואר, בסביבות מאחור את forelimbs, על פני בית החזה הקדמי. נגב בעדינות את אזורי מגולח עם יוד, אתיל אלכוהול לחיטוי.
  3. עם החיה שוכבת על הבטן שלו, עושים חתך קטן (~0.5 ס מ) בצד האחורי של הצוואר במרכז האזור המגולח (האזור מוחשי בין השכמות) באמצעות אזמל (להב מספר 10).
  4. אתר של שיתוק נפוצות.
    1. רול חיה על הצד השמאלי שלו ולעשות ~ 2-3 ס מזמן חתך בעור של hindlimb השמאלי. מקד את האזור החתך סביב קבוצות שריר הירך זה landmarked בין את גומת חן של הברך משותפת מאחור קרוב המקור של הזנב.
      הערה: יש להיזהר לא לזהם את אזור החתך הראשון בעת שינוי המיקום של הגוף.
    2. באמצעות שקצהו בלאנט מעוקל מספריים כירורגיים, לנתח את האזור תת עורית נרחב ~3.5 - 4 ס מ, להפריד את העור בין השריר שמתחת כדי להפוך כיס בין השריר שמתחת לעור שנפתחו. פתח את העור מן הרקמה הבסיסית סביב כל ההיקף של החתך (~1.5 ס מ2).
    3. עושים חתך קטן (פחות מ 0.5 ס מ) על השריר הדו-ראשי עם מספריים כירורגיים, המבטיח כי קצות המספריים הם כורתים ישירות דרך השריר.
    4. בעדינות לפתוח את האזור לחתוך עד את קבוצות השרירים הפנימיים, של שיתוק נפוצות גלויים (העומק של רקמות שריר החיצוני (קרי, הדו-ראשי) הוא סביב ~0.5 ס מ). באמצעות מלקחיים, בעדינות מגע/קמצוץ העצב גלוי ולצפות תגובות של קבוצות שרירים היעד (למשל, TA שריר) לבין האצבעות (dorsiflexion גלוי) לאשר שיתוק נפוץ הוא מבודד.
      הערה: שלב זה צריך להיעשות בזהירות כדי למנוע חיתוך או פגיעה העצב.
    5. לתקן את החלון על-ידי משיכתו פתוח עם רטרקטורים מתכת כזה גודל החלון הוא ~1.5 ס מ2 עם שיתוק משקרת במרכז החלון. השתמש קטן ווים ממתכת מחובר הרצועות ו/או גומיות זה הן הידק המשטח (או ניתוח הלוח) (איור 2 א).
  5. לצרף את החוט בשני הצדדים של העצב.
    1. להכין ~ 50-60 ס מ טפלון (PTFE)-מצופה חוט מפלדת בסדר ומקפלים אותו לשניים.
      הערה: זה עשוי להיות שימושי לחשוף חוט מצופה PTFA תחת אור UV לפני הניתוח.
    2. לחבר את החלק מקופל של החוט לתוך הסדק של מוט נירוסטה 30 ס מ באורך. עוברים את המוט, יחד עם הכבל, subcutaneously מכיס פתח hindlimb לכיוון האזור חתך קטן מאחורי הצוואר, תבנית בצורת האות L במעלה הרגל ולאורך במרכז הגב.
    3. למצוא את שני קצות החוט hindlimb. חוטי את היות כל החוטים בידודי PTFE. באמצעות אזמל, בזהירות להסיר את קצות החוט ~1.5 ס מ. אם החוטים הופכות בלויים, לחתוך אותם, להתפשט מחדש. לעטוף את קצות חוט הפשיטו סביב מחט 21-G קהות (5 פעמים), ביצוע סליל. ברגע הגלילים נעשים כראוי, לשחרר את המחט מהם.
    4. שימוש בגודל 6-0 משי כירורגי, לאבטח כל הגלילים משני צדי נפוצות שיתוק (איור 2 א).
      1. קשר בסופו של דבר סליל, האצבעות, בצד שמאל של העצב. ודא הגליל ב 1.5-2.5 מ מ העצב.
      2. כדי לאבטח את הגליל, החל שניים או שלושה תפרים נוספים לאורך הגליל.
      3. חזור על שלבים אלה בצד ימין של העצב.
    5. החל 2-3 טיפות אנטיביוטיות פתרון (אמפיצילין בתוך תמיסת מלח; 132 מ"ג/מ"ל) ולאחר מכן בקפידה תפר את החלון (קרי, השריר הדו-ראשי רקמות) בעזרת חוט משי גודל 5-0.
  6. ברפיון הרוח רפיון יתר של תיל (לגבי הקוטר של האצבע) ולדחוף לתוך הכיס תת עורית מעל החתך sutured של השריר הדו-ראשי (כ מעל המותן).
  7. חלות 2-3 טיפות אנטיביוטיות פתרון שוב (אמפיצילין בתוך תמיסת מלח; 132 מ"ג/מ"ל). לסגור את העור שנפתחו על ידי הידוק.
  8. חבר את החוטים (יוצא באזור החתך של הצוואר) ממריץ המרכז לאמנות עכשווית.
    1. לחבר סיכה sockets עם החוטים.
      1. חותכים את לולאת חוט שיוצא החתך בחלק העליון של הצוואר כדי ליצור חוט 2 הקצוות (אלה להוביל הגלילים sutured על צדי שיתוק).
      2. באמצעות אזמל, מוריד את הקצוות של החוטים על-ידי ~0.5 ס מ. חתך את החוטים מרוטים, אם בכלל.
      3. לאט לאט לדחוף את חלקי הפשיטו החוטים לתוך החור של אדני pin, באמצעות עבודה עם מלחם, הלחמה את החוטים על אדני pin.
    2. לחלופין, בדוק את החיבור של כבלים.
      1. להתחבר הסיכות יחידה ממריץ benchtop גדולים באמצעות סרטונים אליגטור.
      2. לספק יחיד דופק של 9 V (0.1 ms, 10 Hz) כדי לאשר TA שריר חוזים עם השמאל רגל dorsiflexes.
    3. עוברים את הקצוות המחוברים תילים סיכה דרך משטח גזה סטרילית זה ~ 4 ס"מ על 4 ס"מ.
    4. להתחבר הפינים יחידת ממריץ המרכז לאמנות עכשווית.
      1. עוברים את החוטים דרך החור בבסיס של תיבת ממריץ.
        הערה: תיבת זו היא תא תוצרת בית עבור היחידה ממריץ המרכז לאמנות עכשווית והיא 3.5 ס"מ × 3.5 ס"מ × 2.5 ס מ13.
      2. הכנס את הסיכות אדני חיבור על יחידת המרכז לאמנות עכשווית. לשים בעדינות את יחידת המרכז לאמנות עכשווית אל החדר. השתמש נעץ דביק כדי לאבטח את יחידת המרכז לאמנות עכשווית בחלק התחתון של החדר.
    5. באמצעות טייפ אתלטי או הקלטת כירורגי נקבובי, לתקן את התא עם הסרט. הטורסו מגולח. סגור את החלק העליון של התא עם שלוש שכבות של מקליטה וסיום על ידי ליפוף קלטת בצדדים של תיבת ממריץ כדי לאבטח את תיבת (איור 2B).
  9. בדוק אם המרכז לאמנות עכשווית פועלת באמצעות חשיפת את יחידת דופק אחת של אור אינפרא-אדום (ספקטרום אורכי גל > 770 ננומטר) זה נפלט על ידי מנורה אינפרא-אדום נייד.
    הערה: אם המרכז לאמנות עכשווית פועלת כראוי, חוקרים יוכלו לראות ש-hindlimb השרירים (קרי, ת א) הם קבלנות בתגובה האור האינפרא-אדום.
  10. לצפות את החולדה ונטר את הטמפרטורה שלו עד זה מלא שהכרתו. בית זה בכלוב יחיד-הדייר כדי למנוע נזק מבעלי חיים אחרים, אין להשאיר כל מנהרות או אובייקטים פלסטיק בכלוב לאורך כל המחקר כדי לצמצם את הסיכון של נזק יחידת ממריץ או פציעה של החיה. לספק בקבוק מים כלול אמוקסיצילין (0.5 mg/mL).
  11. החל מנה 1 מ"ג/ק"ג של Meloxicam subcutaneously כל 24 שעות לאחר הניתוח, אשר נמשך לפחות 72 h.

3. פעילות כויץ כרונית

  1. לאחר הניתוח, אפשר לפחות 5-7 ימים להתאוששות מלאה של החתך ואזורים בתפר של שרירי השלד מסביב.
    הערה: במהלך ואחרי נוהל המרכז לאמנות עכשווית, ביסודיות לבדוק המצב של כל חיה על ידי התבוננות והתנהגותם (למשל, לאכול, לשתות, ו/או העברה). בנוסף, לקבוע בכל נפשי או תופעות לוואי על ידי בדיקת שינוי במשקל הגוף לפני ואחרי ההליך המרכז לאמנות עכשווית.
  2. ביום של גירוי המרכז לאמנות עכשווית, הפעלת המרכז לאמנות עכשווית על ידי חשיפת את יחידת ממריץ דופק אחת של אור אינפרא-אדום (טווח אורך גל > 770 ננומטר) על ידי מנורה אינפרא-אדום נייד.
  3. החל h 3 או 6 של גירוי המרכז לאמנות עכשווית 10 הרץ.
    הערה: מסגרת הזמן לגירוי זה תפקיד. התדירות של גירוי לא שונתה בניסויים אלה, שיפורים רק צנוע מאוד בהתאמת מיטוכונדריאלי נצפו על-ידי הרחבת הגירוי בין 3 ל 6 שעות ביממה, מניסיוננו. במידת האפשר, בדוק את גירוי ואת חיה כל 30-60 דקות.
  4. בעקבות תקופת המרכז לאמנות עכשווית הרצוי, כבה את יחידת המרכז לאמנות עכשווית בעזרת חשיפה אור אינפרא-אדום (אותו הנוהל כמו הפעלת היחידה).
  5. אם החלת ימים מרובים, חזור על השלב 3.2. ל 3.4.
  6. לקבוע את העיתוי של אוסף רקמה. לדוגמה, לאסוף את רקמות 24 שעות לאחר תחילת הקרב הסופי של המרכז לאמנות עכשווית (קרי, 18 h לאחר גירוי המרכז לאמנות עכשווית האחרון של 6-אייץ '), אשר מבוצע תחת הרדמה כפי שנעשה במהלך ההליך הכירורגי המרכז לאמנות עכשווית. מיד לאחר איסוף כל רקמות, המתת חסד בבעלי חיים על ידי excising בלב בעוד החיה הוא עדיין תחת הרדמה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

אנחנו הראו כי פעילות כויץ כרונית (המרכז לאמנות עכשווית) הוא כלי יעיל לזירוז עיבודים מיטוכונדריאלי חיובית תוך שרירי השלד. חולדות נתון 7 ימים של המרכז לאמנות עכשווית (6 שעות לכל יום) להציג להן מיטוכונדריאלי משופרת בשריר מגורה לעומת hindlimb unstimulated contralateral (בקרה). עלייה זו להן מיט?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

הדגם פעילות כויץ כרונית (המרכז לאמנות עכשווית) של פעילות גופנית, דרך השריר בתדר נמוך גירוי ויוו, הוא מודל מצויין ללמוד שריר עיבודים פנוטיפי לממש24,13,25 , 26. כפי שמוצג מחקרים קודמים20,27, ה?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

. אנחנו אסירת תודה ליאם Tyron על קריאתו מומחה של כתב היד. עבודה זו נתמכה על ידי מימון מדעי הטבע, הנדסה מחקר המועצה של קנדה (NSERC) ד א הוד. ד א הוד הוא גם האוחז כיסא מחקר קנדה בפיזיולוגיה של התא.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Sprague Dawley RatCharles RiverStrain 400
Chronic contractile activity unitHome-maden/a
CCA unit protective box (3.5 x 3.5 x 2.5 cm)Home-maden/aBox should be made of opaque material or covered in an opague tape
Coin lithium ion batteries (3V)PanasonicCR2016
MedwireLeico Industries316SS7/44T
Solder pin (socket)Digi-KeyED6218-ND
Zonas porous tapeJohnson & Johnson5104
Suture silk (Size 5)Ethicon640G
Suture silk (Size 6)Ethicon706G
Curved blunt scissor (11.5 cm Length)F.S.T.14075-11
Curved blunt scissor (15 cm Length)F.S.T.14111-15
Delicate haemostatic forceps (16 cm Length)Lawton06-0230
ScalpelFeather3
Curved forcepsF.S.T.11052-10
Stainless-steel rod (30 cm; 7mm diameter)Home-maden/aRod should have 5 mm slit in one end to hold the wire for tunneling under the skin
Clip applying forcepsKLS Martin20-916-12
Staples (clips)BbraunBN507R
Metal hooks/retractorHome-maden/a
Povidone-iodine (500 mL)Rougier#NPN00172944
Ampicillin sodiumNovopharm#DIN00872644
MetacamBoehringer#DIN02240463
Digital multimeter (voltmeter)Soar CorporationME-501
LED digital stroboscopeLutron Electronic EnterpriseDT-2269

References

  1. Holloszy, J. O., Coyle, E. F. Adaptations of skeletal muscle to endurance exercise and their metabolic consequences. J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 56 (4), 831-838 (1984).
  2. Hood, D. A. Invited Review: contractile activity-induced mitochondrial biogenesis in skeletal muscle. J Appl Physiol. 90 (3), 1137-1157 (2001).
  3. Fernandes, T., et al. Exercise training restores the endothelial progenitor cells number and function in hypertension: implications for angiogenesis. J Hypertens. 30 (11), 2133-2143 (2012).
  4. Chabi, B., Adhihetty, P. J., O'Leary, M. F., Menzies, K. J., Hood, D. A. Relationship between Sirt1 expression and mitochondrial proteins during conditions of chronic muscle use and disuse. J Appl Physiol. 107 (6), 1730-1735 (2009).
  5. Lessard, S. J., et al. Resistance to aerobic exercise training causes metabolic dysfunction and reveals novel exercise-regulated signaling networks. Diabetes. 62 (8), 2717-2727 (2013).
  6. Irrcher, I., Adhihetty, P. J., Sheehan, T., Joseph, A. M., Hood, D. A. PPARgamma coactivator-1alpha expression during thyroid hormone- and contractile activity-induced mitochondrial adaptations. Am J Physiol Cell Physiol. 284 (6), C1669-C1677 (2003).
  7. Tamura, Y., et al. Postexercise whole body heat stress additively enhances endurance training-induced mitochondrial adaptations in mouse skeletal muscle. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 307 (7), R931-R943 (2014).
  8. Mosole, S., et al. Long-term high-level exercise promotes muscle reinnervation with age. J Neuropathol Exp Neurol. 73 (4), 284-294 (2014).
  9. Irrcher, I., Walkinshaw, D. R., Sheehan, T. E., Hood, D. A. Thyroid hormone (T3) rapidly activates p38 and AMPK in skeletal muscle in vivo. J Appl Physiol. 104 (1), 178-185 (2008).
  10. Lesmana, R., et al. The change in thyroid hormone signaling by altered training intensity in male rat skeletal muscle. Endocr J. 63 (8), 727-738 (2016).
  11. Hokama, J. Y., Streeper, R. S., Henriksen, E. J. Voluntary exercise training enhances glucose transport in muscle stimulated by insulin-like growth factor I. J Appl Physiol. 82 (2), 508-512 (1997).
  12. Tyler, K. R., Wright, A. J. A. Light weight portable stimulators for stimulation of skeletal muscles at different frequencies and for cardiac pacing. J Physiol Lond. 307, 6-7 (1980).
  13. Takahashi, M., Rana, A., Hood, D. A. Portable electrical stimulator for use in small animals. J Appl Physiol. 74 (2), 942-945 (1993).
  14. Ljubicic, V., Adhihetty, P. J., Hood, D. A. Application of animal models: chronic electrical stimulation-induced contractile activity. Can J Appl Physiol. 30 (5), 625-643 (2005).
  15. Pette, D., Vrbova, G. What does chronic electrical stimulation teach us about muscle plasticity? Muscle Nerve. 22 (6), 666-677 (1999).
  16. Pette, D. Historical Perspectives: plasticity of mammalian skeletal muscle. J Appl Physiol. 90 (3), 1119-1124 (2001).
  17. Pette, D., Vrbova, G. The Contribution of Neuromuscular Stimulation in Elucidating Muscle Plasticity Revisited. Eur J Transl Myol. 27 (1), 6368(2017).
  18. Skorjanc, D., Jaschinski, F., Heine, G., Pette, D. Sequential increases in capillarization and mitochondrial enzymes in low-frequency-stimulated rabbit muscle. Am J Physiol. 274 (3 Pt 1), C810-C818 (1998).
  19. Kim, Y., Hood, D. A. Regulation of the autophagy system during chronic contractile activity-induced muscle adaptations. Physiol Rep. 5 (14), (2017).
  20. Memme, J. M., Oliveira, A. N., Hood, D. A. Chronology of UPR activation in skeletal muscle adaptations to chronic contractile activity. Am J Physiol Cell Physiol. 310 (11), C1024-C1036 (2016).
  21. Ljubicic, V., et al. Molecular basis for an attenuated mitochondrial adaptive plasticity in aged skeletal muscle. Aging (Albany NY). 1 (9), 818-830 (2009).
  22. Schwarz, G., Leisner, E., Pette, D. Two telestimulation systems for chronic indirect muscle stimulation in caged rabbits and mice. Pflugers Arch. 398 (2), 130-133 (1983).
  23. Simoneau, J. A., Pette, D. Species-specific effects of chronic nerve stimulation upon tibialis anterior muscle in mouse, rat, guinea pig, and rabbit. Pflugers Arch. 412 (1-2), 86-92 (1988).
  24. Ohlendieck, K., et al. Effects of chronic low-frequency stimulation on Ca2+-regulatory membrane proteins in rabbit fast muscle. Pflugers Arch. 438 (5), 700-708 (1999).
  25. Brown, M. D., Cotter, M. A., Hudlicka, O., Vrbova, G. The effects of different patterns of muscle activity on capillary density, mechanical properties and structure of slow and fast rabbit muscles. Pflugers Arch. 361 (3), 241-250 (1976).
  26. Skorjanc, D., Traub, I., Pette, D. Identical responses of fast muscle to sustained activity by low-frequency stimulation in young and aging rats. J Appl Physiol. 85 (2), 437-441 (1998).
  27. Kim, Y., Triolo, M., Hood, D. A. Impact of Aging and Exercise on Mitochondrial Quality Control in Skeletal Muscle. Oxid Med Cell Longev. 2017, 3165396(2017).
  28. Callewaert, L., Puers, B., Sansen, W., Jarvis, J. C., Salmons, S. Programmable implantable device for investigating the adaptive response of skeletal muscle to chronic electrical stimulation. Med Biol Eng Comput. 29 (5), 548-553 (1991).
  29. Kern, H., et al. Electrical stimulation counteracts muscle decline in seniors. Front Aging Neurosci. 6, 189(2014).
  30. Zampieri, S., et al. Physical exercise in aging human skeletal muscle increases mitochondrial calcium uniporter expression levels and affects mitochondria dynamics. Physiol Rep. 4 (24), (2016).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

131

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved