Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

אי ספיקת חדר ימין ורגורגיטציה טריקוספידית תפקודית קשורים למחלות לב בצד שמאל וליתר לחץ דם ריאתי, התורמות באופן משמעותי לתחלואה ולתמותה בחולים. הקמת מודל שחלות כרוני לחקר אי ספיקת חדר ימין ורגורגיטציה טריקוספידית תפקודית תסייע בהבנת המנגנונים שלהם, התקדמותם וטיפולים אפשריים.

Abstract

הפתופיזיולוגיה של רגורגיטציה טריקוספידית תפקודית חמורה (FTR) הקשורה לתפקוד לקוי של החדר הימני אינה מובנת, מה שמוביל לתוצאות קליניות לא אופטימליות. יצאנו להקים מודל שחלתי כרוני של FTR ואי ספיקת לב ימין כדי לחקור את המנגנונים של FTR. עשרים כבשים זכרים בוגרים (בני 6-12 חודשים, 62 ± 7 ק"ג) עברו ניתוח לכריתת בית החזה השמאלית ואקו לב בסיסי. רצועת עורק ריאתי (PAB) הונחה ונחתכה סביב עורק הריאה הראשי (PA) כדי לפחות להכפיל את לחץ עורק הריאה הסיסטולי (SPAP), מה שגרם לעומס יתר בלחץ החדר הימני (RV) ולסימנים של התרחבות RV. PAB הגדיל בחריפות את ה-SPAP מ-21 ±-2 מ"מ כספית ל-62 ±-2 מ"מ כספית. בעלי החיים היו במעקב במשך 8 שבועות, סימפטומים של אי ספיקת לב טופלו עם משתנים, אקוקרדיוגרפיה מעקב שימש כדי להעריך עבור איסוף נוזל pleural ו בטן. שלושה בעלי חיים מתו במהלך תקופת המעקב עקב שבץ, דימום ואי ספיקת לב חריפה. לאחר חודשיים בוצעו אסטרנוטומיה חציונית ואקוקרדיוגרפיה אפיקרדיאלית. מתוך 17 בעלי החיים ששרדו, 3 פיתחו רגורגיטציה טריקוספידית קלה, 3 פיתחו רגורגיטציה טריקוספידית בינונית, ו-11 פיתחו רגורגיטציה טריקוספידית חמורה. שמונה שבועות של חבישת עורק ריאתי הביאו למודל שחלות כרוני יציב של תפקוד לקוי של החדר הימני ו- FTR משמעותי. ניתן להשתמש בפלטפורמה גדולה זו של בעלי חיים כדי להמשיך לחקור את הבסיס המבני והמולקולרי של כשל RV ורגורגיטציה טריקוספידית תפקודית.

Introduction

אי ספיקת חדר ימין (RVF) מוכרת כגורם חשוב התורם לתחלואה ולתמותה של חולי לב. הגורמים השכיחים ביותר ל- RVF הם מחלת לב בצד שמאל ויתר לחץ דם ריאתי1. במהלך ההתקדמות של RVF, רגורגיטציה טריקוספידית תפקודית (FTR) עלולה להתעורר כתוצאה מתפקוד לקוי של החדר הימני (RV), התרחבות טבעתית ושיפוץ תת-מסתמי. FTR בינוני עד חמור הוא מנבא עצמאי לתמותה2,3, וההערכה היא כי 80%-90% ממקרי הרגורגיטציה הטריקוספידית הם פונקציונלייםבטבע 4. FTR עצמו עשוי לקדם עיצוב מחדש של חדרים שליליים על ידי השפעה על עומס לאחר או עומס מראש5. המסתם הטריקוספיד נחשב היסטורית לשסתוםהנשכח 6, והאמינו כי הטיפול במחלת לב בצד שמאל יפתור את פתולוגיית RV הקשורה ו- FTR7. נתונים אחרונים הראו שזו אסטרטגיה שגויה, וההנחיות הקליניות הנוכחיות תומכות בגישה הרבה יותר אגרסיבית ל-FTR4. עם זאת, הפתופיזיולוגיה של FTR חמור הקשור לתפקוד לקוי של החדר הימני עדיין אינה מובנת, מה שמוביל לתוצאות קליניות לא אופטימליות8. דגמי בעלי החיים הגדולים הזמינים כיום של RVF מבוססים על לחץ, נפח או עומס יתר מעורב. תיארנו בעבר מודל של בעלי חיים גדולים של RVF ו-TR, אבל רק בסביבה חריפה9.

המחקר הנוכחי מתמקד במודל שחלתי כרוני של רצועות עורק ריאתי (PAB) כדי להגדיל את עומס הלוואי של RV (עומס יתר בלחץ) ולגרום לתפקוד לקוי של RV ו- FTR. מודל העומס הוא אמין וניתן לשחזור בהשוואה למודלים של יתר לחץ דם ריאתי, שבהם השינויים בכלי הדם הזעירים פחות צפויים ויותר סבירים10. מטרת המחקר הייתה לפתח מודל כרוני של בעלי חיים גדולים של RVF ו-FTR שיחקה בצורה המדויקת ביותר עומס לחץ RV בחולים עם מחלת לב בצד שמאל ויתר לחץ דם ריאתי. הקמת מודל כזה תאפשר מחקרים מעמיקים על הפתופיזיולוגיה של עיצוב מחדש של החדרים והמסתמים הקשורים לתפקוד לקוי של RV ואי ספיקה טריקוספידית. מודל השחלה נבחר על סמך עבודתנו הקודמת על המסתם המיטרלי והספרות שפורסמה התומכת בדמיון האנטומי והפיזיולוגי בין לב האדם ללב השחלה11,12,13.

במחקר זה, 20 כבשים בוגרות (62 ± 7 ק"ג) עברו ניתוח לכריתת עורק בית החזה השמאלי ועורק הריאה הראשי (PAB) כדי להכפיל לפחות את לחץ עורק הריאה הסיסטולי (SPAP), ובכך גרמו לעומס יתר בלחץ RV. בעלי החיים היו במעקב במשך 8 שבועות, ואת הסימפטומים של אי ספיקת לב טופלו עם משתנים כאשר נראה קלינית. אקוקרדיוגרפיה מעקב בוצעה מעת לעת כדי להעריך את תפקוד RV ואת היכולת מסתמית. לאחר השלמת פרוטוקול הניסוי לפיתוח המודל (8 שבועות), הוחזרו בעלי החיים לחדר הניתוח לצורך עצם החזה והשתלת גבישי סונומיקרומטריה על המבנה האפיקרדיאלי והתוך-לבבי. הליך זה בוצע באמצעות מעקף cardiopulmonary עם פעימות הלב עם שליטה bicaval. לא היו בעיות בגמילה של בעלי החיים ממעקף לב-ריאה או בהשגת נתוני הסונומיקרומטריה בסביבה המודינמית יציבה ויציבה ללא צורך באינוטרופים לתמיכה בלב ימין. אנו צופים ביצוע annuloplasty טבעת טריקוספיד ופרוצדורות לב ימין אחרות בעתיד הקרוב באמצעות גישה של בית החזה הימני הן בניסויים סופניים והן בניסויים הישרדותיים. הניסיון הנוכחי מוביל אותנו להאמין כי ניתן יהיה לגמול את בעלי החיים ממעקף לב ריאה ללא קושי וכי הישרדות לטווח ארוך היא אפשרית. ככזה, אנו מאמינים כי המודל יאפשר ביצוע של הליכים לבביים רלוונטיים מבחינה קלינית. להלן תיאור השלבים (פריאופרטיביים ואופרטיביים) שבוצעו לביצוע פרוטוקול ניסוי השחלות.

Protocol

הפרוטוקול אושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים באוניברסיטת מישיגן (IACUC) (פרוטוקול 2020-035, אושר ב-27/7/2020). במחקר זה נעשה שימוש ב-20 כבשים זכרים בוגרים במשקל 62 ± 7 ק"ג.

1. שלבים טרום ניתוחיים

  1. צום את בעל החיים 12 שעות לפני הניתוח (לילה).
  2. הניחו את החיה על כיסא כבשים (איור 1), והתכוננו לקנולציה של ורידים צוואריים ימניים באמצעות נדן מבוא ארוך של 11 Fr (אורך נדן = 10 ס"מ).
  3. יש להתגלח עם קוצצים לאורך מקום הנחת העירוי - האספקט הקדמי הימני של הצוואר סביב 10-15 ס"מ רוחבי מקו האמצע לווריד הצוואר הימני.
  4. סובב את ראשו של בעל החיים שמאלה כך שההיבטים הקדמיים והצדיים הימניים של הצוואר נחשפים. לוקליזציה של מסלול הווריד הצווארי. כדי להקל על כך, לדחוס את החלק התחתון של הצוואר כדי להרחיק את הווריד.
  5. יש לנקות עם כלורהקסידין וקרצוף על בסיס אלכוהול, ולהרדים מקומית עם לידוקאין 1%.
  6. לקנן את הווריד הצווארי באמצע עד השליש העליון של הצוואר, כמתואר.
    1. חותכים את העור מעל הווריד עם להב מספר 11 בניצב לווריד.
    2. Cannulate עם אנגיוקטטר 14 גרם; כאשר הוא במקום (הדם יוצא מהמחט או שהדם מזוהה), הסר את המחט, עזוב את הצנתר, העבר את חוט ההנחיה, הסר את הצנתר, הנח את נדן 11 Fr וחבר אותו.
    3. להבטיח את הפטנט ואת המיקום הנכון של הצינורית על ידי משיכת דם אדום כהה וביצוע סומק מלוחים כדי לאשר את הזרימה ואת היעדר נפיחות באתר החדרה.
  7. התחל את השראת פרופופול ב 1.0-1.5 מ"ג / ק"ג תוך ורידי (IV).
  8. אינטובט עם צינור אנדוטרכאלי מספר 9 (ET) באמצעות לרינגוסקופ עם להב מספר 5. לשם כך, אדם אחד צריך לאבטח את הלסתות והלשון, בעוד האדם השני מזהה את קנה הנשימה, מחדיר את צינור ET, ומנפח את שרוול האיטום. ודא מיקום תקין על ידי קולות הנשימה הדו-צדדיים והעיבוי על צינור החוצן.
  9. מתן תוך ורידי משכך כאבים buprenorphine ב 0.01 מ"ג / ק"ג ולהשתמש 240 מ"ג של gentamicin ו 1 גרם של cefazolin עבור טיפול מונע אנטיביוטי.
  10. העבירו את בעל החיים מכיסא הכבשים אל שולחן ניתוחים, והניחו אותו על צדו הימני.

2. שלבי הניתוח

  1. יש לאוורר ב-15 מ"ל/ק"ג (12-18 נשימות לדקה), עם זרימת חמצן ב-4 ליטר/דקה ואיזופלורן ב-2.5%-4.0%. ודא הרדמה מתאימה כדי לוודא שהנבדק נמצא ברמה הכירורגית (שלב 3) על ידי בדיקת טונוס הלסת וסיבוב העין.
  2. לשמן את שתי העיניים על ידי מריחת oinment ophthalmic ולהכניס צינור קיבה כדי להבטיח גז ופינוי מזון. חבר את האלקטרוקרדיוגרמה (EKG), מד הדופק (SpO 2), הקפנוגרף (ETCO2) וצגי טמפרטורת הגוף. חברו את מוליכי האיבר של הא.ק.ג (I, II, III) לעור באמצעות קליפסי תנין, חיישן SpO 2 ללחי של בעל החיים, וצינור ETCO2 לצינור האנדוטרכאלי, והעבירו את בדיקת הטמפרטורה דרך הנחיר לתוך הלוע.
  3. הכינו את השדה האופרטיבי. יש לגלח את בית החזה הקדמי השמאלי, לנקות עם כלורהקסידין וקרצוף על בסיס אלכוהול, ולכסות בווילונות סטריליים.
  4. בצע עור באורך 10 ס"מ וחתך תת עורי ברמה של החלל הבין-קוסטלי הרביעי.
  5. אשר את החלל הבין-קוסטלי הנכון על ידי זיהוי פתח בית החזה וספירת החללים הבין-קוסטליים כלפי מטה. לאחר מכן, להמשיך את החתך במרכז לאורך החלל intercostal הרביעי.
  6. לחלק את השרירים intercostal, לפתוח את חלל החזה, ולהפיץ את הצלעות עם מיני חזה Finochietto בסגנון retractor. בעת ביצוע בית החזה, יש להקפיד שלא לפגוע בעורק החלב הפנימי השמאלי (LIMA) בגבול עצם החזה של החתך והריאה בגבול העליון.
  7. בצע אקוקרדיוגרפיה אפיקרדיאלית בסיסית כדי להעריך את התפקוד הדו-חדרי ואת היכולת המסתמית. המופע של תצוגות לא סטנדרטיות עשוי להיות בשל מיני thoracotomy התמקדו מסתם tricuspid (TV), תפקוד החדר הימני והשמאלי, זרימת עורק ריאתי.
  8. זהו את ה-LIMA בגבול עצם החזה של החתך, הסירו את הרקמות הסמוכות סביבו והתכוננו להקים קו עורקי לניטור לחץ.
  9. מניחים שני תפרי משי 4-0 סביב העורק, עם אחד פרוקסימלי ואחד דיסטלי לאתר הקנולציה (המשמש לאבטחת הצנתר העורקי).
  10. השתמש אטבי טיטניום עם יישום קליפס כדי להצמיד את LIMA דיסטל לאתר הקנולציה המתוכנן כדי למנוע דימום זרימה חוזרת במהלך קנולציה.
  11. בצע חתך מאונך שהוא מחצית מהיקף הצנתר בלימא עם להב מספר 11.
  12. הכנס אנגיוקטטר 18 G, וחבר אותו למודול קו העורק. כאשר מגיעים ללחץ של כ-120/80 מ"מ כספית, יש לאבטח את הצנתר במקומו באמצעות שני תפרי משי 4-0 שהונחו קודם לכן.
  13. בצע pericardiotomy החל ברמה של סינוסים עורק הריאה הולך 4-5 ס"מ לרוחב לאורך עורק הריאה הראשי (MPA), תוך הקפדה לא לפגוע בעצב הפרני השמאלי.
  14. החל ארבעה עד חמישה תפרים נסיגה על קרום הלב הפתוח כדי ליצור באר קרום הלב, כמו זה מקל על חשיפה ודיסקציה בין תא המטען הראתי אבי העורקים.
  15. יש לנתח את ה-MPA מאבי העורקים העולה (AA) כ-2-3 ס"מ ממקורו באמצעות מלקחיים קהים בזווית ישרה, החל מרמת התוספתן הפרוזדורי השמאלי ולכיוון AA. כדי להפריד באופן מלא את MPA מן AA, להשתמש electrocautery או מספריים כדי להסיר את רקמת החיבור בין שני המבנים.
  16. העבירו סרט טבור סביב ה-MPA בעזרת מהדק קהה בזווית ישרה. קבע קו לחץ MPA על ידי הנחת תפר ארנק מונופילמנט 5-0 1 ס"מ דיסטלי מסינוסים MPA.
  17. הכנס אנגיוקטטר 20 גרם, וחבר אותו לקו ניטור. ודא שקריאות MPA וקו עורקים נכונות מושגות לפני חיתוך סרט הטבור; הלחצים העורקיים והריאתיים עשויים להשתנות אך צריכים להיות דומים לערכי המטופל האנושי.
  18. החזק את שני הקצוות של סרט הטבור, וקליפ אותם יחד כדי להפחית את לומן של MPA.
  19. הדקו בהדרגה את הרצועה עם יישום רצוף של קליפס, כאשר כל קליפ ממוקם מתחת לקליפ הקודם עד שלחץ הדם המערכתי מתחיל לרדת בהתמדה (איור 2). בשלב זה, הסר את הקליפ האחרון שהונח כדי לייצב את לחץ הדם המערכתי.
  20. כאשר מושגות חבטות מקסימליות ותנאים המודינמיים יציבים, אבטחו את סרט הטבור לכניסת ה-MPA באמצעות תפר מונופילמנט 5-0 כדי למנוע נדידה דיסטלית.
  21. בצע אקוקרדיוגרפיה לאחר הפס כדי להעריך את התפקוד הדו-חדרי ואת היכולת המסתמית, כמו בשלב 2.7. הסר את קו הלחץ MPA ואת קו העורקים, וודא המוסטזיס טוב על ידי בדיקת כל דימום שמגיע מהאזור שבו הונחו הרצועה וקווי העורקים.
  22. הניחו צינור חזה בבית החזה השמאלי, כאשר מקום הכניסה הוא חלל בין-קוסטלי אחד מתחת לחתך הראשוני. סוגרים את הצלעות עם שני תפרים מסוג Vicryl מידה 2, וסוגרים את הפצע עם תפרים רציפים תלת שכבתיים: Vicryl 2-0 לשריר ולרקמות התת עוריות ופרולן 3-0 לעור.
  23. כאשר לא נראים סימני דימום, יש להסיר את צינור החזה לפני גמילת בעל החיים ממכונת ההנשמה.
  24. לגמול את בעל החיים ממכונת ההנשמה, להוציא החוצה, להעביר אותו לכלוב אחד, ולעקוב אחריו מקרוב לפחות 1 שעה. השאירו את קו העירוי המרכזי במקומו, ואבטחו אותו באמצעות תחבושת רופפת סביב הצוואר.
    הערה: שיכוך כאבים תוך ורידי לאחר הניתוח נשמר עם buprenorphine (0,05 מ"ג / ק"ג) ו Flunixin (1.2 מ"ג / ק"ג) במשך 3 ימים לאחר הניתוח.

תוצאות

לאחר השלמת פרוטוקול הניסוי לפיתוח המודל (כמעט 8 שבועות), הוחזרו בעלי החיים לחדר הניתוח לצורך עצם החזה והשתלת גבישי סונומיקרומטריה על המבנה האפיקרדיאלי והתוך-לבבי. הליך זה בוצע באמצעות מעקף לב-ריאה עם פעימות הלב ועם שליטה דו-קוויתית, כפי שתואר על ידי קבוצתנו בפירוט קודם לכן9. לא ...

Discussion

במודל זה, 8 שבועות של חבישת עורק ריאתי הביאו למודל שחלות כרוני יציב של תפקוד לקוי של החדר הימני, וברוב המקרים, FTR משמעותי. נקודות החוזק של מודל PAB הכרוני המוצג כוללות את התאמת העומס המדויק במהלך ההליך, אם כי השפעתו על תגובות הקרוואנים עשויה להיות שונה. המודל מתאים להערכת דרגות שונות של כשל RV א?...

Disclosures

למחברים אין ניגודי עניינים לחשוף.

Acknowledgements

המחקר מומן על ידי מענק פנימי ממכון הלב וכלי הדם Meijer ב-Spectrum Health.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Anesthesia Machine Drager Narkomed MRI-2Drager4116091-001
angiocatheterBDBD38226814GAx8.25cm
BD ChloraPrep Scrub Teal 26 ml applicator with a sterile solution
Blade #11Bard-Parker371111
Buprenorphine HIKMA
cefazolin 1.0gHikma0143-9924-90
Diprivan 200mg/20ml63323-0269-29FRESENIUS KABI
Electrosurgical generator Valleylab Force FXValleylabCF5L44233A
Gentamicin Sulfate 40 mg / mLFresenius406365
i-Stat Blood analyzer MN 300Abbott
Lidocaine HCl 1%Pfizer243243
Open ligating clip appliers Horizon MediumTeleflex237061
PERMAHAND Silk SuturePERMA HANDSA 63H
Pinnacle Introducer sheathTerrumoRSS102sheath length 10cm
Prolene 3-0ETHICON8684H
Titanium Clips MediumTeleflex2200
Umbilical tapeEthiconEFA 1165
VICRYL 2 coated undyed 1X54" TP-1ETHICONJ 880T
Vicryl 2-0ETHICONJ269H

References

  1. Haddad, F., Hunt, S. A., Rosenthal, D. N., Murphy, D. J. Right ventricular function in cardiovascular disease, part I: Anatomy, physiology, aging, and functional Assessment of the right ventricle. Circulation. 117 (11), 1436-1448 (2008).
  2. Taramasso, M., et al. The growing clinical importance of secondary tricuspid regurgitation. Journal of the American College of Cardiology. 59 (8), 703-710 (2012).
  3. Mangieri, A., et al. Mechanism and implications of the tricuspid regurgitation: From the pathophysiology to the current and future therapeutic options. Circulation: Cardiovascular Interventions. 10 (7), 005043 (2017).
  4. Otto, C. M., et al. 2020 ACC/AHA Guideline for the Management of Patients With Valvular Heart Disease: Executive summary: A report of the American College of Cardiology/American Heart Association Joint Committee on Clinical Practice Guidelines. Circulation. 143 (5), 35-71 (2021).
  5. Vonk-Noordegraaf, A., et al. Right heart adaptation to pulmonary arterial hypertension: physiology and pathobiology. Journal of the American College of Cardiology. 62, 22-33 (2013).
  6. Yoganathan, A., et al. Tricuspid valve diseases: Interventions on the forgotten heart valve. Journal of Cardiac Surgery. 36 (1), 219-228 (2021).
  7. Vachiéry, J. L., et al. Pulmonary hypertension due to left heart diseases. Journal of the American College of Cardiology. 62, 100-108 (2013).
  8. Chin, K. M., Coghlan, G. Characterizing the right ventricle: Advancing our knowledge. American Journal of Cardiology. 110, 3-8 (2012).
  9. Malinowski, M., et al. Large animal model of acute right ventricular failure with functional tricuspid regurgitation. International Journal of Cardiology. 264, 124-129 (2018).
  10. Borgdorff, M. A., Dickinson, M. G., Berger, R. M., Bartelds, B. Right ventricular failure due to chronic pressure load: What have we learned in animal models since the NIH working group statement. Heart Failure Review. 20 (4), 475-491 (2015).
  11. Andersen, A., et al. Animal models of right heart failure. Cardiovascular Diagnosis and Therapy. 10 (5), 1561-1579 (2020).
  12. Dixon, J. A., Spinale, F. G. Large animal models of heart failure: A critical link in the translation of basic science to clinical practice. Circulation: Heart Failure. 2 (3), 262-271 (2009).
  13. Miyagi, C., et al. Large animal models of heart failure with preserved ejection fraction. Heart Failure Review. 27 (2), 595-608 (2022).
  14. Sato, H., et al. Large animal model of chronic pulmonary hypertension. American Society for Artificial Internal Organs Journal. 54 (4), 396-400 (2008).
  15. Bogaard, H. J., et al. Chronic pulmonary artery pressure elevation is insufficient to explain right heart failure. Circulation. 120 (20), 1951-1960 (2009).
  16. Xie, X. J., et al. Tricuspid leaflet resection in an open beating heart for the creation of a canine tricuspid regurgitation model. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 22 (2), 149-154 (2016).
  17. Hoppe, H., et al. Percutaneous technique for creation of tricuspid regurgitation in an ovine model. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 18, 133-136 (2007).
  18. Malinowski, M., et al. Large animal model of functional tricuspid regurgitation in pacing induced end-stage heart failure. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 24 (6), 905-910 (2017).
  19. Ukita, R., et al. A large animal model for pulmonary hypertension and right ventricular failure: Left pulmonary artery ligation and progressive main pulmonary artery banding in sheep. Journal of Visualized Experiments. (173), e62694 (2021).
  20. Dufva, M. J., et al. Pulmonary arterial banding in mice may be a suitable model for studies on ventricular mechanics in pediatric pulmonary arterial hypertension. Journal of Cardiovascular Magnetic Resonance. 23 (1), 66 (2021).
  21. Verbelen, T., et al. Mechanical support of the pressure overloaded right ventricle: An acute feasibility study comparing low and high flow support. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 309 (4), 615-624 (2015).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

193

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved