Name: anticancer efficacy of photodynamic therapy with lung cancer-targeted nanoparticles
Uploaded: 2016-12-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Anticancer Efficacy of Photodynamic Therapy with Lung Cancer-Targeted Nanoparticles at JoVE.com

מחקר זה נתמך על ידי שום מענק. 14-2014-017 מהקרן למחקר SNUBH. המחברים חייבים תודה ג&#39;יי פטריק Barron, פרופ &#39;אמריטוס, האוניברסיטה הרפואית טוקיו ופרופסור נספח החולים Bundang האוניברסיטה הלאומית בסיאול לעריכה בהתנדבות שלו של כתב היד הזה.

הערה: כל הפרוטוקולים מחקר בבעלי חיים אושרו על ידי טיפול בבעלי חיים מוסדיים ועדת שימוש של האוניברסיטה הלאומית בסיאול Bundang החולים (BA1308-134 / 072-01). 1. סינתזה של חומצה היאלורונית-Ceramide (הארנבת) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Solubilize 12.21 מילימול של חומצה היאלורונית (HA) oligomer ו 9.77 מילימול של אַרְבַּע- הידרוקסיד n -butylammonium (TBA) ב 60 מ&quot;ל מים מזוקקים פעמיים (DDW). מערבבים למשך 30 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי לסנתז והמקשר DS-Y30, לפזר 8.59 מילימול של ceramide DS-Y30 ו 9.45 מילימול של triethylamine ב 25 מ&quot;ל של tetrahydrofuran (THF). מערבבים עם 8.59 מילימול של כלוריד 4-chloromethylbenzoyl ב THF. מערבבים במשך 6 שעות ב 60 מעלות צלזיוס. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממיסים את 8.10 מסונתז מילימול של HA-TBA ו 0.41 מילימול של מקשר DS-Y30 בתערובת של THF ו אצטוניטריל (4: 1, V / V). מערבבים במשך 5 שעות ב 40 מעלות צלזיוס. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סור זיהומים על ידי סינון עם סוכן מסנן, ולחסל את הממס האורגני על ידי אידוי ואקום. לטהר את המוצר באמצעות קרום דיאליזה (משקל מולקולרי חתוך: 3.5 KDA) ו Lyophilize. </li></ol> 2. הכנת החלקיקים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממיסים 1 מ&quot;ג של HB ו 1 מ&quot;ג של פקליטקסל ב 0.5 מ&quot;ל של sulfoxide דימתיל (DMSO) ומערבלים עם 0.5 מ&quot;ל של DDW ידי מערבולת ללישת למשך 5 דקות. לאחר מכן, solubilize hace באותה תערובת ידי ערבוב מערבולת במשך 5 דקות נוספות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> על מנת לפסול את, החום ממס על 70 מעלות צלזיוס למשך 4 שעות תחת זרם עדין של גז חנקן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend הסרט מורכב הארנבת, HB, ו- paclitaxel עם 1 מ&quot;ל של DDW. מסנן עם מזרק מסנן (0.45 מיקרומטר גודל נקבובי) כדי להסיר תרופות unencapsulated. </li></ol> 3. במבחנה phototoxicity <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ספיגה של חלקיקים בשורות תאי סרטן הריאות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כן המכילים בינוני RPMI-1640 10% (V / V) בסרום שור עוברי 1% (w / v) פניצילין, סטרפטומיצין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> A549 זרע תאי צלחות תרבית תאי 24 גם בצפיפות של 1 × 10 5 תאים / טובה (triplicates עבור כלקְבוּצָה). דגירה של 24 שעות ב 37 ° C באווירת אוויר 2 ו -95% 5% humidified CO. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר מצורף התא, להסיר את בינוני לשטוף את התאים על ידי הוספת 1 מ&quot;ל של תמיסת מלח שנאגרו פוספט (PBS). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממיסים את חלקיקים ב PBS לריכוז סופי של HB 2 מיקרומטר / מ&quot;ל. לאחר מכן, דגירה התאים עם 1 מ&quot;ל של PBS, NPS ריק, HB-NPS, או HB-P-צירופים בכל טוב עבור 4 שעות בחושך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את כל הפתרון לשטוף את התאים על ידי הוספת 1 מ&quot;ל של קר PBS. חזור על שלב הכביסה פעם נוספת. הוסף בינוני תרבות טרי. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> assay כדאיות התא <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח את צלחת תרבית תאים תחת סיבי PDT (עם 1 סנטימטר של מרחק סיבי PDT אל הבאר). יש להרכיב משקפיים בטיחות לייזר ולהאיר את התאים עם לייזר PDT (630 ננומטר, 400 mW / cm 2) בחושך במשך פרקי זמן שונים: 0, 5, 10, 20, 30, ו -40 שניות (0, 2, 4 , 8, 12, ו -16 J / cm 2). לאחר מכן, דגירה התאים למשך 24 שעות בחושך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl">לשאוב בינוני לשטוף את התאים על ידי הוספת 1 מ&quot;ל של קר PBS. חזור על שלב הכביסה פעם נוספת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 10 μl של פתרון מדידה cytotoxicity היטב כל אחד. דגירה בחושך במשך שעה 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מדוד את הספיגה ב 450 ננומטר באמצעות קורא microplate. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ניתוח מיקרוסקופי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח את צלחת תרבית תאים תחת סיבי PDT (עם 1 סנטימטר של מרחק סיבי PDT אל הבאר). יש להרכיב משקפיים בטיחות לייזר ולהאיר את התאים עם לייזר PDT (630 ננומטר, 400 mW / cm 2) בחושך במשך 0, 20, או 40 שניות (0, 8, או 16 J / cm 2). לאחר מכן, דגירה התאים למשך 24 שעות בחושך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב בינוני לשטוף את התאים על ידי הוספת 1 מ&quot;ל של קר PBS. חזור על שלב הכביסה פעם נוספת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 50 μl של Annexin V-FITC ו -50 μl של 4 &#39;, 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI, 1.5 מיקרוגרם / מ&quot;ל). נער בעדינות את הצלחת דגירה אותו במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר בחושך. הערה: השתמש Annexin V-FITC מתוך הערכת מיקרוסקופ פלואורסצנטי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שוטפים את התאים על ידי הוספת 1 מ&quot;ל של קר PBS. חזור על שלב הכביסה פעם נוספת. שמור את התאים ב PBS הטרי. זהה את תאים אפופטוטיים באמצעות מיקרוסקופ אור בהגדלה 100X. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מיון תא הקרינה מופעל (FACS) ניתוח <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח את צלחת תרבית תאים תחת סיבי PDT (עם 1 סנטימטר של מרחק סיבי PDT אל הבאר). יש להרכיב משקפיים בטיחות לייזר ולהאיר את התאים עם לייזר PDT (630 ננומטר, 400 mW / cm 2) עבור 0, 20, או 40 שניות (0, 8, או 16 J / cm 2). לאחר מכן, דגירה התאים למשך 24 שעות בחושך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב בינוני לשטוף את התאים על ידי הוספת 1 מ&quot;ל של קר PBS. חזור על שלב הכביסה פעם נוספת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend התאים 1 מ&quot;ל של 1 × חיץ מחייב (לדלל 1 חלק למאגר מחייב 10x; 0.1 מ &#39;Hepes / NaOH (pH 7.4), 1.4 M NaCl, ו -25 מ&quot;מ CaCl 2 עד 9 חלקים מים מזוקקים) ולהעביר 100 μl של הפתרון מדגם ל -5 מ&quot;לצינור תרבות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 5 μl של Annexin V-FITC ו -5 μl של יודיד propidium (PI). בעדינות מערבולת הצינור דגירה במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר (RT) בחושך. להוסיף 400 μl של 1 × חיץ מחייב. הערה: השתמש Annexin V-FITC ו PI מתוך הערכה מיקרוסקופ פלואורסצנטי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זהה את תאים אפופטוטיים באמצעות FACS 14. קווי לייזר עירור של FITC-V PI ו Annexin הם 488 ננומטר ו 635 ננומטר, בהתאמה. מדוד את פליטת הקרינה של PI ו Annexin V-FITC ב 610 ± 20 ננומטר ו 660 ± 20 ננומטר, בהתאמה. אוסף את התאים הנרכשים על cytometer הזרימה ל -10,000 אירועים. </li></ol></li></ol> 4. יעילות נגד סרטן בשנת vivo בעכברים נושאי גידולים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> במודל עכבר ריאות נגרמת סרטן <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן 1 × 10 6 תאים A549 ב 0.1 מ&quot;ל בינוני RPMI-1640; לשמור אותו בקרח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את העכברים עם זריקה ip של xylazine ותערובת של tiletamine ו zolazepam (1: 2, 1 מ&quot;ל /ק&quot;ג). אשר הרדמה תקינה על ידי צובט קפל קטן בעדינות של עור עכבר. השתמש במשחת וטרינר על העיניים כדי למנוע יובש לאחר הרדמה. הערה: אם אין תנועה הוא ציין, החיה הוא הרדים מספיק כדי להתחיל את הניסויים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להזריק את התאים מתחת לעור בירכיים שנשארו עכברי גבר עירום BALB / C (6 - בן 7 שבועות, 20 - 22 גרם). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור התבוננות העכברים עד שהם מתחילים לנוע בכלוב. הערה: אל תשאיר חיה ללא השגחה עד שהוא שב להכרתו מספיק כדי לשמור שכיבה sternal. אל תחזרו בעל חיים אשר עבר ניתוח לחברה של בעלי חיים אחרים עד שהוא התאושש לחלוטין. שמור על העכברים בתנאים הפתוגן ללא ספציפיים (SPF). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מדוד את גודל הגידול עם מחוגה מדי יום. חשב את נפח הגידול (3 מ&quot;מ) כמו (אורך × רוחב 2) / 2. כאשר גודל הגידול ומגיע לכ 200 מ&quot;מ 3 בנפח, להתחיל בניסוי. </li&gt; </ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחקר יעיל נגד הסרטן <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אקראי לחלק העכברים ל -4 קבוצות (n = 10 לכל קבוצה). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את העכברים עם זריקה ip של xylazine ותערובת של tiletamine ו zolazepam (1: 2, 1 מ&quot;ל / ק&quot;ג). אשר הרדמה תקינה על ידי צובט קפל קטן בעדינות של עור עכבר. השתמש במשחת וטרינר על העיניים כדי למנוע יובש לאחר הרדמה. הערה: אם אין תנועה הוא ציין, החיה הוא הרדים מספיק כדי להתחיל את הניסויים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממיסים את חלקיקים ב PBS לריכוז סופי של HB 2 מ&quot;ג / מ&quot;ל. להזריק PBS, חינם HB, HB-NPS, או HB-P-צירופים דרך וריד הזנב (2 מ&quot;ג / ק&quot;ג כמו HB) פעמיים בימים 0 ו -7. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור התבוננות העכברים עד שהם מתחילים לנוע בכלוב. הערה: אל תשאיר חיה ללא השגחה עד שהוא שב להכרתו מספיק כדי לשמור שכיבה sternal. אל תחזרו בעל חיים אשר עבר ניתוח לחברה של בעלי חיים אחרים עד מלאהתאושש. שמור הכלובים כהים ובתנאי SPF ספציפיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 24 שעות לאחר כל זריקה, להרדים את העכברים עם זריקה ip של xylazine ותערובת של tiletamine ו zolazepam (1: 2, 1 מ&quot;ל / ק&quot;ג). אשר הרדמה תקינה על ידי צובט קפל קטן בעדינות של עור עכבר. השתמש במשחת וטרינר על העיניים כדי למנוע יובש לאחר הרדמה. הערה: אם אין תנועה הוא ציין, החיה הוא הרדים מספיק כדי להתחיל את הניסויים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח את אתר גידול תחת סיבי PDT (עם 1 סנטימטר של מרחק סיבי PDT אל הגידול). יש להרכיב משקפי בטיחות ליזר, לכבות את המתג, ולהאיר את הגידול עם ליזר PDT (630 ננומטר, 400 mW / cm 2) תמורת 500 שניות (200 J / cm 2) פעמים בימים 1 ו -8. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור התבוננות העכברים עד שהם מתחילים לנוע בכלוב. אל תשאירו חיה ללא השגחה עד שהוא שב להכרתו מספיק כדי לשמור שכיבה sternal. אל תחזור חיה יש undergonניתוח ה לחברה של בעלי חיים אחרים עד התאושש לחלוטין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור הכלובים בתנאי SPF. לשמור על הכלובים בחושך במשך 24 שעות לאחר הטיפול בלייזר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מבחינה ויזואלית לפקח על נפח הגידול והשינויים באתר הגידול מדי יום. מדוד את גודל גידול עם מחוגה, ולחשב את הנפח כמו (אורך × רוחב 2) / 2 (3 מ&quot;מ). צלמו תמונות של אתרי הגידול מדי יום כדי לבדוק אם קיימים שינויים משטח הגידול לאחר PDT. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביום 16, להקריב חמישה עכברים בכל קבוצה על ידי הרדמת מסוף באמצעות isoflurane. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עם מלקחיים ומספריים, לחתוך את העור החיצוני ולחשוף הגידולים 15. בזהירות למסוק אותם. תקן אותם 10% פורמלין, להטביע אותם פרפין, להכתים אותם עם hematoxylin ו eosin (H &amp; E) עבור ניתוח היסטולוגית 16. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר 45 ימים של ניטור, להקריב את העכברים הנותרים על ידי הרדמת מסוף באמצעות isoflurane. </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Shang, L., Zhou, N., Gu, Y., Liu, F., Zeng, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+study+on+killing+effect+of+esophageal+cancer+cell+line+between+hypocrellin+B-photodynamic+therapy+and+hematoporphyrin+derivative-photodynamic+therapy.">Comparative study on killing effect of esophageal cancer cell line between hypocrellin B-photodynamic therapy and hematoporphyrin derivative-photodynamic therapy.</a> Chin J Cancer Prev Treat. 12, 1139-1142 (2005).</li><li>Huisman, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Paclitaxel+triggers+cell+death+primarily+via+caspase-independent+routes+in+the+non-small+cell+lung+cancer+cell+line+NCI-H460.">Paclitaxel triggers cell death primarily via caspase-independent routes in the non-small cell lung cancer cell line NCI-H460.</a> Clin Cancer Res. 8 (2), 596-606 (2002).</li><li>Dolmans, D. E., Fukumura, D., Jain, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photodynamic+therapy+for+cancer.">Photodynamic therapy for cancer.</a> Nat Rev Cancer. 3 (5), 380-387 (2003).</li><li>Pass, H. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photodynamic+therapy+in+oncology:+mechanisms+and+clinical+use.">Photodynamic therapy in oncology: mechanisms and clinical use.</a> J Natl Cancer Inst. 85 (6), 443-456 (1993).</li><li>Sutedja, T. G., Postmus, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photodynamic+therapy+in+lung+cancer.+A+review+.">Photodynamic therapy in lung cancer. A review .</a> J. Photochem. Photobiol. 36 (2), 199-204 (1996).</li><li>Peng, C. L., Shieh, M. J., Tsai, M. H., Chang, C. C., Lai, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-assembled+star-shaped+chlorin-core+poly(epsilon-caprolactone)-poly(ethylene+glycol)+diblock+copolymer+micelles+for+dual+chemo-photodynamic+therapies.">Self-assembled star-shaped chlorin-core poly(epsilon-caprolactone)-poly(ethylene glycol) diblock copolymer micelles for dual chemo-photodynamic therapies.</a> Biomaterials. 29 (26), 3599-3608 (2008).</li><li>Chen, B., Pogue, B. W., Hasan, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liposomal+delivery+of+photosensitising+agents.">Liposomal delivery of photosensitising agents.</a> Expert Opin Drug Deliv. 2 (3), 477-487 (2005).</li><li>Lee, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+study+of+photosensitizer+loaded+and+conjugated+glycol+chitosan+nanoparticles+for+cancer+therapy.">Comparative study of photosensitizer loaded and conjugated glycol chitosan nanoparticles for cancer therapy.</a> J Control Release. 152 (1), 21-29 (2011).</li><li>Chang, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anticancer+efficacy+of+photodynamic+therapy+with+hematoporphyrin-modified,+doxorubicin-loaded+nanoparticles+in+liver+cancer.">Anticancer efficacy of photodynamic therapy with hematoporphyrin-modified, doxorubicin-loaded nanoparticles in liver cancer.</a> J. Photochem. Photobiol. 140, 49-56 (2014).</li><li>Chang, J. E., Cho, H. J., Yi, E., Kim, D. D., Jheon, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypocrellin+B+and+paclitaxel-encapsulated+hyaluronic+acid-ceramide+nanoparticles+for+targeted+photodynamic+therapy+in+lung+cancer.">Hypocrellin B and paclitaxel-encapsulated hyaluronic acid-ceramide nanoparticles for targeted photodynamic therapy in lung cancer.</a> J. Photochem. Photobiol. 158, 113-121 (2016).</li><li>Wang, A. Z., Langer, R., Farokhzad, O. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nanoparticle+delivery+of+cancer+drugs.">Nanoparticle delivery of cancer drugs.</a> Annu. Rev. Med. 63, 185-198 (2012).</li><li>Matsumura, Y., Maeda, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+concept+for+macromolecular+therapeutics+in+cancer+chemotherapy:+mechanism+of+tumoritropic+accumulation+of+proteins+and+the+antitumor+agent+smancs.">A new concept for macromolecular therapeutics in cancer chemotherapy: mechanism of tumoritropic accumulation of proteins and the antitumor agent smancs.</a> Cancer Res. 46 (12 Pt 1), 6387-6392 (1986).</li><li>Penno, M. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Expression+of+CD44+in+human+lung+tumors.">Expression of CD44 in human lung tumors.</a> Cancer Res. 54 (5), 1381-1387 (1994).</li><li>Wilkins, R., Kutzner, B., Truong, M., Sanchez-Dardon, J., McLean, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+radiation-induced+apoptosis+in+human+lymphocytes:+Flow+cytometry+using+Annexin+V+and+propidium+iodide+versus+the+neutral+comet+assay.">Analysis of radiation-induced apoptosis in human lymphocytes: Flow cytometry using Annexin V and propidium iodide versus the neutral comet assay.</a> Cytometry. 48 (1), 14-19 (2002).</li><li>Bannas, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Validation+of+nanobody+and+antibody+based+in+vivo+tumor+xenograft+NIRF-imaging+experiments+in+mice+using+ex+vivo+flow+cytometry+and+microscopy.">Validation of nanobody and antibody based in vivo tumor xenograft NIRF-imaging experiments in mice using ex vivo flow cytometry and microscopy.</a> J Vis Exp. (98), e52462 (2015).</li><li>Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hematoxylin+and+eosin+staining+of+tissue+and+cell+sections.">Hematoxylin and eosin staining of tissue and cell sections.</a> Cold Spring Harbor Protocols. (5), (2008).</li><li>Lam, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photodynamic+therapy+of+lung+cancer.">Photodynamic therapy of lung cancer.</a> Semin Oncol. 21 (6 Suppl 15), 15-19 (1994).</li><li>Simone, C. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photodynamic+therapy+for+the+treatment+of+non-small+cell+lung+cancer.">Photodynamic therapy for the treatment of non-small cell lung cancer.</a> J Thorac Dis. 4 (1), 63-75 (2012).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

השלב הקריטי ביותר במחקר זה הוא בחירת תנאי הליזר הנכון: גל, כוח, זמן הקרנה. אורך הגל הנכון של אור מתאים והחומר המבוקש הוא הכרחי עבור PDT. השתמשנו לייזר 630 ננומטר כי היה מתאים ב hypocrellin מתח היציאה היה גורם חשוב נוסף, אשר נקבע על 400 mW / cm 2 מבוסס על מחקרים טייס רבים. סמכויות ...

Photodynamic therapy (PDT) is composed of three major factors: photosensitizers, light, and oxygen. PDT is reported as a promising treatment for various cancers3. When the photosensitizers are administered into the cancer patient, they selectively accumulate in the tumor tissues. When the proper wavelength of light is applied, the highly reactive singlet oxygen and other free radicals lead to tumor cell damage4. 
Lung cancer was introduced as one of the first applications for PDT in the early 1980s5. PDT provides several advantages in treating lung cancer. Since PDT is a non-invasive and non-surgical treatment, it is an attractive alternative choice for the patients in whom surgical resection is inappropriate.
There have been many challenges to enhance the cancer-targeting efficacy of the photosensitizers. Increasing photosensitizer accumulation in cancer sites and decreasing accumulation in normal tissues are the identical goals for the cancer-targeting studies. A variety of targeted drug delivery systems, such as polymers, liposomes, and nanoparticles are adopted as photosensitizer carriers6-8. In our previous studies, nanoparticles effectively increased the cancer-targeting abilities of the photosensitizers9,10. Nanoparticles are ideal cancer-targeting carriers since they possess both passive and active targeting abilities. The leaky tumor vessels provide opportunity for nano-sized carriers to accumulate easily in tumors, which is well-known as the enhanced permeability and retention (EPR) effect11,12. The interaction between the nanoparticles and the specific receptors on cancer cells enables active cancer targeting. In this study, we prepared hyaluronic acid-based nanoparticles to interact with CD44, the major hyaluronic acid receptor that is overexpressed on lung cancer cells13. 
To maximize the anticancer efficacy, a combination of PDT and chemotherapy is adopted in the present study. This combination concept may permit an increased therapeutic effect. Furthermore, decreased doses of both the photosensitizer and the anticancer drug can diminish adverse effects. We selected hypocrellin B (HB) as a novel photosensitizer in the present study. HB is isolated from Chinese medicinal fungus Hypocrella bambuase. Shang et al. reported that HB-based PDT possesses a higher anticancer efficacy when compared to hematoporphyrin derivative-based PDT1. Paclitaxel was selected as the anticancer drug since it has proven to be a potential treatment for various cancers, including lung cancer2. 
Herein, we compared the anticancer efficacies of photosensitizer (hypocrellin B, HB) solution, photosensitizer-encapsulated hyaluronic acid-ceramide nanoparticles (HB-NPs), and both photosensitizer- and anticancer agent (paclitaxel)-encapsulated hyaluronic acid-ceramide nanoparticles (HB-P-NPs) after PDT. The in vitro phototoxicity in A549 (human lung adenocarcinoma) cells and the in vivo antitumor efficacy in A549 tumor-bearing mice were evaluated.

<table><tbody><tr><td>oligo hyaluronic acid</td><td>Bioland Co., Ltd.</td><td>_</td><td></td></tr><tr><td>DS-Y30 (ceramide 3B; mainly &lt;em&gt;N&lt;/em&gt;-oleoyl-phytosphingosine)</td><td>Doosan Biotech Co., Ltd.</td><td>_</td><td></td></tr><tr><td>adipic acid dihydrazide</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A0638</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;N&lt;/em&gt;-(3-dimethylaminopropyl)-&lt;em&gt;N&amp;prime;&lt;/em&gt;-ethylcarbodiimide</td><td>Sigma Aldrich</td><td>39391</td><td></td></tr><tr><td>4-(chloromethyl)benzoyl chloride</td><td>Sigma Aldrich</td><td>270784</td><td></td></tr><tr><td>Tween 80</td><td>Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.</td><td>T0546</td><td></td></tr><tr><td>syringe filter</td><td>Sartorius Stedim Biotech GmbH</td><td>17762</td><td>15 mm, RC, PP, 0.45 &amp;micro;m</td></tr><tr><td>triethylamine</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T0886</td><td></td></tr><tr><td>Mini-GeBAflex tubes</td><td>Gene Bio-Application Ltd.</td><td>D070-12-100</td><td></td></tr><tr><td>Paclitaxel</td><td>Taihua Corporations</td><td>_</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640</td><td>Gibco Life Technologies, Inc.</td><td>11875</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin&amp;ndash;streptomycin</td><td>Gibco Life Technologies, Inc.</td><td>15070</td><td></td></tr><tr><td>Fetal bovine serum</td><td>Gibco Life Technologies, Inc.</td><td>16140071</td><td></td></tr><tr><td>Celite (Filter agent)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>6858</td><td>See step 1.4</td></tr></tbody></table>

anticancer efficacy of photodynamic therapy with lung cancer-targeted nanoparticles

Photodynamic therapy (PDT) is a non-invasive and non-surgical method representing an attractive alternative choice for lung cancer treatment. Photosensitizers selectively accumulate in tumor tissue and lead to tumor cell death in the presence of oxygen and the proper wavelength of light.
To increase the therapeutic effect of PDT, we developed both photosensitizer- and anticancer agent-loaded lung cancer-targeted nanoparticles. Both enhanced permeability and retention (EPR) effect-based passive targeting and hyaluronic-acid-CD44 interaction-based active targeting were applied. CD44 is a well-known hyaluronic acid receptor that is often introduced as a biomarker of non-small cell lung cancer. 
In addition, a combination of PDT and chemotherapy is adopted in the present study. This combination concept may increase anticancer therapeutic effects and reduce adverse reactions. 
We chose hypocrellin B (HB) as a novel photosensitizer in this study. It has been reported that HB causes higher anticancer efficacy of PDT compared to hematoporphyrin derivatives1. Paclitaxel was selected as the anticancer drug since it has proven to be a potential treatment for lung cancer2. 
The antitumor efficacies of photosensitizer (HB) solution, photosensitizer encapsulated hyaluronic acid-ceramide nanoparticles (HB-NPs), and both photosensitizer- and anticancer agent (paclitaxel)-encapsulated hyaluronic acid-ceramide nanoparticles (HB-P-NPs) after PDT were compared both in vitro and in vivo. The in vitro phototoxicity in A549 (human lung adenocarcinoma) cells and the in vivo antitumor efficacy in A549 tumor-bearing mice were evaluated.
The HB-P-NP treatment group showed the most effective anticancer effect after PDT. In conclusion, the HB-P-NPs prepared in the present study represent a potential and novel photosensitizer delivery system in treating lung cancer with PDT.

הכנו הוא HB-NPS ו HB-P-צירופים עם הטכניקות שהוזכרו לעיל. בקטרים ​​הממוצעים של HB-NPS ו HB-P-צירופים היו 220.9 ± 3.2 ננומטר בכ- 211.9 ± 1.6 ננומטר, בהתאמה. הכדאיות התא של תאים A549 לאחר 4 שעות של דגירה עם PBS, NPS ריק, HB-NPS,...

Watch this Scientific Journal Video about Anticancer Efficacy of Photodynamic Therapy with Lung Cancer-Targeted Nanoparticles at JoVE.com

Anticancer Efficacy of Photodynamic Therapy with Lung Cancer-Targeted Nanoparticles

Photodynamic therapy (PDT) is an alternative choice for lung cancer treatment. To increase the therapeutic effect of PDT, lung cancer-targeted nanoparticles combined with chemotherapy were developed. Both in vitro and in vivo anticancer efficacies of PDT with prepared nanoparticles were evaluated.

יעילות אנטי סרטנית של טיפול פוטודינמי עם ריאות חלקיקים סרטן ממוקד

Photodynamic therapy (PDT) is a non-invasive and non-surgical method representing an attractive alternative choice for lung cancer treatment. ...

anticancer-efficacy-photodynamic-therapy-with-lung-cancer-targeted

Research

JoVE Journal

Cancer Research

9.0K Views.  Seoul National University Bundang Hospital. Photodynamic therapy (PDT) is an alternative choice for lung cancer treatment. To increase the therapeutic effect of PDT, lung cancer-targeted nanoparticles combined with chemotherapy were developed. Both in vitro and in vivo anticancer efficacies of PDT with prepared nanoparticles were evaluated.

Video: Anticancer Efficacy of Photodynamic Therapy with Lung Cancer-Targeted Nanoparticles

A Comprehensive Procedure to Evaluate the In Vivo Performance of Cancer Nanomedicines

Inspired by the success of previous cancer nanomedicines in the clinic, researchers have generated a large number of novel formulations in the past decade. However, only a small number of nanomedicines have been approved for clinical use, whereas the majority of nanomedicines under clinical development have produced disappointing results. One major obstacle to the successful clinical translation of new cancer nanomedicines is the lack of an accurate understanding of their in vivo performance. This article features a rigorous procedure to characterize the in vivo behavior of nanomedicines in tumor-bearing mice at systemic, tissue, single-cell, and subcellular levels via the integration of positron emission tomography-computed tomography (PET-CT), radioactivity quantification methods, flow cytometry, and fluorescence microscopy. Using this approach, researchers can accurately evaluate novel nanoscale formulations in relevant mouse models of cancer. These protocols may have the ability to identify the most promising cancer nanomedicines with high translational potential or to aid in the optimization of cancer nanomedicines for future translation.

A Comprehensive Procedure to Evaluate the In Vivo Performance of Cancer Nanomedicines

The poor understanding of the in vivo performance of nanomedicines stymies their clinical translation. Procedures to evaluate the in vivo behavior of cancer nanomedicines at systemic, tissue, single-cell, and subcellular levels in tumor-bearing immunocompetent mice are described here. This approach may help researchers to identify promising cancer nanomedicines for clinical translation.

נוהל מקיף כדי להעריך את<em&gt; In vivo</em&gt; ביצועים של סרטן ננו-רפואה

Inspired by the success of previous cancer nanomedicines in the clinic, researchers have generated a large number of novel formulations in the past ...

Photodynamic Therapy with Blended Conducting Polymer/Fullerene Nanoparticle Photosensitizers

In this article a method for the fabrication and reproducible in-vitro evaluation of conducting polymer nanoparticles blended with fullerene as the next generation photosensitizers for Photodynamic Therapy (PDT) is reported. The nanoparticles are formed by hydrophobic interaction of the semiconducting polymer MEH-PPV (poly[2-methoxy-5-(2-ethylhexyloxy)-1,4-phenylenevinylene]) with the fullerene PCBM (phenyl-C61-butyric acid methyl ester) in the presence of a non-compatible solvent. MEH-PPV has a high extinction coefficient that leads to high rates of triplet formation, and efficient charge and energy transfer to the fullerene PCBM. The latter processes enhance the efficiency of the PDT system through fullerene assisted triplet and radical formation, and ultrafast deactivation of MEH-PPV excited stated. The results reported here show that this nanoparticle PDT sensitizing system is highly effective and shows unexpected specificity to cancer cell lines.

This protocol describes a method for the fabrication of conducting polymer nanoparticles blended with fullerene. These nanoparticles were investigated for their potential use as a next generation photosensitizers for Photodynamic Therapy (PDT).

פוטודינמי תרפיה עם Blended ניצוח פולימר / פולרן Nanoparticle פוטוסנסיטייסרים

In this article a method for the fabrication and reproducible in-vitro evaluation of conducting polymer nanoparticles blended with fullerene as the next ...

Chemistry

Isolation of Primary Cancer-Associated Fibroblasts from a Syngeneic Murine Model of Breast Cancer for the Study of Targeted Nanoparticles

Cancer-associated fibroblasts (CAFs) are key actors in the context of the tumor microenvironment. Despite being reduced in number as compared to tumor cells, CAFs regulate tumor progression and provide protection from antitumor immunity. Emerging anticancer strategies aim to remodel the tumor microenvironment through the ablation of pro-tumorigenic CAFs or reprogramming of CAFs functions and their activation status. A promising approach is the development of nanosized delivery agents able to target CAFs, thus allowing the specific delivery of drugs and active molecules. In this context, a cellular model of CAFs may provide a useful tool for in vitro screening and preliminary investigation of such nanoformulations.
This study describes the isolation and culture of primary CAFs from the syngeneic 4T1 murine model of triple-negative breast cancer. Magnetic beads were used in a 2-step separation process to extract CAFs from dissociated tumors. Immunophenotyping control was performed using flow cytometry after each passage to verify the process yield. Isolated CAFs can be employed to study the targeting capability of different nanoformulations designed to tackle the tumor microenvironment. Fluorescently labeled H-ferritin nanocages were used as candidate nanoparticles to set up the method. Nanoparticles, either bare or conjugated with a targeting ligand, were analyzed for their binding to CAFs. The results suggest that ex vivo extraction of breast CAFs may be a useful system to test and validate nanoparticles for the specific targeting of tumorigenic CAFs.

This paper aims to provide a protocol for the isolation and culture of primary cancer-associated fibroblasts from a syngeneic murine model of triple-negative breast cancer and their application for the preclinical study of novel nanoparticles designed to target the tumor microenvironment.&#160;

בידוד של פיברובלסטים הקשורים לסרטן ראשוני ממודל מורין סינגני של סרטן השד לחקר חלקיקים ממוקדים

Cancer-associated fibroblasts (CAFs) are key actors in the context of the tumor microenvironment. Despite being reduced in number as compared to tumor ...

5-Aminolevulinic Acid-mediated Photodynamic Therapy on Primary Bone Tumor and Bone Metastases Cell Lines

Bone metastases are associated with poor prognosis and low quality of life for the affected patients. Photodynamic therapy (PDT) emerges as a noninvasive therapy that can target local metastatic bone lesions. This paper presents an in vitro method to study the PDT effect in adherent cell lines. To this end, we demonstrate a step-by-step approach to subject both primary (giant cell bone tumor) and human bone metastatic cancer cell lines (derived from a primary invasive ductal breast carcinoma and renal carcinoma) to 5-aminolevulinic acid (5-ALA)-mediated PDT. 
After 24 h post 5-ALA-PDT irradiation (blue light-wavelength 436 nm), the therapeutic effect was assessed in terms of cell migration potential, viability, apoptotic features, and cellular growth arrest (senescence). Post 5-ALA-PDT irradiation, musculoskeletal-derived cell lines respond differently to the same doses and exposure of PDT. Depending on the extent of cellular damage triggered by PDT exposure, two different cell fates-apoptosis and senescence were noted. Variable sensitivity to PDT therapy among different bone cancer cell lines provides useful information for selecting more appropriate PDT settings in clinical settings. This protocol is designed to exemplify the use of PDT in the context of musculoskeletal neoplastic cell lines. It may be adjusted to investigate the therapeutic effect of PDT on various cancer cell lines and various photosensitizers and light sources.

<meta charset="utf8"></head><body>5-טיפול פוטודינמי בתיווך חומצה אמינולוולינית על גידול עצם ראשוני וגרורות בעצמות קווי תאים

This protocol presents a step-by-step methodological approach of exposing bone metastatic cells lines and primary bone tumors to 5-aminolevulinic acid-mediated photodynamic therapy (PDT). The effects on cell migration potential/invasiveness, viability, apoptosis, and senescence potential are also analyzed following PDT exposure.

5-טיפול פוטודינמי בתיווך חומצה אמינולוולינית על גידול עצם ראשוני וגרורות בעצמות קווי תאים

Bone metastases are associated with poor prognosis and low quality of life for the affected patients. Photodynamic therapy (PDT) emerges as a noninvasive ...

Cytotoxic Efficacy of Photodynamic Therapy in Osteosarcoma Cells In Vitro

In recent years, there has been the difficulty in finding more effective therapies against cancer with less systemic side effects. Therefore Photodynamic Therapy is a novel approach for a more tumor selective treatment.
Photodynamic Therapy (PDT) that makes use of a nontoxic photosensitizer (PS), which, upon activation with light of a specific wavelength in the presence of oxygen, generates oxygen radicals that elicit a cytotoxic response1. Despite its approval almost twenty years ago by the FDA, PDT is nowadays only used to treat a limited number of cancer types (skin, bladder) and nononcological diseases (psoriasis, actinic keratosis)2.
The major advantage of the use of PDT is the ability to perform a local treatment, which prevents systemic side effects. Moreover, it allows the treatment of tumors at delicate sites (e.g. around nerves or blood vessels). Here, an intraoperative application of PDT is considered in osteosarcoma (OS), a tumor of the bone, to target primary tumor satellites left behind in tumor surrounding tissue after surgical tumor resection. The treatment aims at decreasing the number of recurrences and at reducing the risk for (postoperative) metastasis.
In the present study, we present in vitro PDT procedures to establish the optimal PDT settings for effective treatment of widely used OS cell lines that are used to reproduce the human disease in well established intratibial OS mouse models. The uptake of the PS mTHPC was examined with a spectrophotometer and phototoxicity was provoked with laser light excitation of mTHPC at 652 nm to induce cell death assessed with a WST-1 assay and by the counting of surviving cells. The established techniques enable us to define the optimal PDT settings for future studies in animal models. They are an easy and quick tool for the evaluation of the efficacy of PDT in vitro before an application in vivo.

Cytotoxic Efficacy of Photodynamic Therapy in Osteosarcoma Cells In Vitro

The protocol reported here allows the evaluation of the efficacy of photodynamic therapy (PDT) in cell lines and the optimization of the PDT settings before applying the therapy in animal models.

ציטוטוקסיות יעילות של טיפול פוטודינמי בתאי אוסטאוסרקומה<em&gt; במבחנה</em

In recent years, there has been the difficulty in finding more effective therapies against cancer with less systemic side effects. Therefore Photodynamic ...

Medicine

An In-House-Built and Light-Emitting-Diode-Based Photodynamic Therapy Device for Enhancing Verteporfin Cytotoxicity in a 2D Cell Culture Model

This paper describes a novel, simple, and low-cost device to perform in vitro photodynamic therapy (PDT) assays, named the PhotoACT. The device was built using a set of conventional programmable light-emitting diodes (LEDs), a liquid crystal display (LCD) module, and a light sensor connected to a commercial microcontroller board. The box-based structure of the prototype was made with medium-density fiberboards (MDFs). The internal compartment can simultaneously allocate four cell culture multiwell microplates.
As a proof of concept, we studied the cytotoxic effect of the photosensitizer (PS) verteporfin against the HeLa cell line in two-dimensional (2D) culture. HeLa cells were treated with increasing concentrations of verteporfin for 24 h. The drug-containing supernatant medium was discarded, the adherent cells were washed with phosphate-buffered saline (PBS), and drug-free medium was added. In this study, the effect of verteporfin on cells was examined either without light exposure or after exposure for 1 h to light using red-green-blue (RGB) values of 255, 255, and 255 (average fluence of 49.1 &#177; 0.6 J/cm2). After 24 h, the cell viability was assessed by the 3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) assay.
Experimental results showed that exposure of cells treated with verteporfin to the light from the device enhances the drug&#39;s cytotoxic effect via a mechanism mediated by reactive oxygen species (ROS). In addition, the use of the prototype described in this work was validated by comparing the results with a commercial PDT device. Thus, this LED-based photodynamic therapy prototype represents a good alternative for in vitro studies of PDT.

Here, we describe a novel, simple, and low-cost device to successfully perform in vitro photodynamic therapy (PDT) assays using two-dimensional HeLa cell culture and verteporfin as a photosensitizer.

מכשיר טיפול פוטודינמי מבוסס דיודה פולטת אור הבנוי בתוך הבית להגברת ציטוטוקסיות של חוליות במודל תרבית תאים דו-ממדית

This paper describes a novel, simple, and low-cost device to perform in vitro photodynamic therapy (PDT) assays, named the PhotoACT. The device was built ...

Biochemistry

Plasmonic Photothermal Cancer Therapy: Nanoparticle-embedded Tumor-tissue-mimicking Phantoms for Visualizing Photothermal Temperature Distribution

Plasmonic photothermal therapy (PPTT), an emerging cancer treatment, involves delivering nanoparticles (NPs) to a tumor, followed by near-infrared (NIR) irradiation to generate localized heat that destroys cancer cells. Before administering PPTT, the therapeutic parameters -- NP concentration, irradiation intensity, and duration -- need to be estimated. For this, numerical simulations are performed. However, to ensure robust computation, these simulations must be validated through photothermal experiments on tumor-tissue-mimicking phantoms replicating the optical properties of tumor tissue. For PPTT, therapeutic parameters are governed by the scattering and absorption of incident radiation by the tissue and NPs. Therefore, validation experiments can be conducted on phantoms mimicking the reduced scattering coefficient (&#181;s&#39;) and absorption coefficient (&#181;a) of the target tumor/tissue.
Specifically, this protocol provides instructions for preparing phantoms mimicking &#181;s&#39; and &#181;a of breast tumor injected with gold nanorods, surrounded by normal breast tissue. The protocol also details NIR irradiation, temperature monitoring, and validation of numerical results by comparing spatiotemporal temperatures with those measured using thermocouples. The protocols presented in this study facilitated the preparation of hydrogel-based cylindrical breast tumor-tissue phantoms with dimensions (&#981;40 x 12 mm) and a central tumor region (&#981;20 x 6 mm), comprising 1% agarose as the base matrix and intralipid as the scattering constituent and tumor region embedded with gold nanorods at 25 &#181;g/mL concentration. Representative results from a case study illustrate the application of fabricated phantoms for validating numerical simulations for PPTT. The study concludes that the demonstrated protocols are valuable for conducting photothermal experiments aimed at optimizing and planning therapeutic parameters prior to in vivo experiments and validating numerical simulations for PPTT.

This article presents the protocol for preparing tumor-tissue phantoms that replicate optical properties for plasmonic photothermal therapy. It details phantom preparation, photothermal evaluations, and validation of the developed numerical model based on photothermal temperature measurements for assessing therapeutic parameters, offering an ethical, cost-effective alternative to in vivo studies for preliminary testing.

טיפול בסרטן פוטותרמי פלזמוני: פנטומים המחקים רקמת גידול משובצים בננו-חלקיקים להמחשת התפלגות טמפרטורה פוטותרמית

Plasmonic photothermal therapy (PPTT), an emerging cancer treatment, involves delivering nanoparticles (NPs) to a tumor, followed by near-infrared (NIR) ...

Near Infrared Photoimmunotherapy for Mouse Models of Pleural Dissemination

The efficacy of photoimmunotherapy can be evaluated more accurately with an orthotopic mouse model than with a subcutaneous one. A pleural dissemination model can be used for the evaluation of treatment methods for intrathoracic diseases such as lung cancer or malignant pleural mesothelioma.
Near-infrared photoimmunotherapy (NIR-PIT) is a recently developed cancer treatment strategy that combines the specificity of tumor-targeting antibodies with toxicity caused by a photoabsorber (IR700Dye) after exposure to NIR light. The efficacy of NIR-PIT has been reported using various antibodies; however, only a few reports have shown the therapeutic effect of this strategy in an orthotopic model. In the present study, we demonstrate an example of efficacy evaluation of the pleural disseminated lung cancer model, which was treated using NIR-PIT.

Near-infrared photoimmunotherapy (NIR-PIT) is an emerging cancer therapeutic strategy that utilizes an antibody-photoabsorber (IR700Dye) conjugate and NIR light to destroy cancer cells. Here, we present a method to evaluate the antitumor effect of NIR-PIT in a mouse model of pleural disseminated lung cancer and malignant pleural mesothelioma using bioluminescence imaging.

ליד פוטוימונותרפיה אינפרא אדום עבור מודלים עכבר של הפצת Pleural

The efficacy of photoimmunotherapy can be evaluated more accurately with an orthotopic mouse model than with a subcutaneous one. A pleural dissemination ...

In Vitro Phototoxicity Assay: A PDT-based Method to Evaluate the Phototoxic Potential of a Photosensitizer in Lung Cancer Cells

Source: Chang, J. E., et al. <a href="https://www.jove.com/v/54865/anticancer-efficacy-photodynamic-therapy-with-lung-cancer-targeted">Anticancer Efficacy of Photodynamic Therapy with Lung Cancer-Targeted Nanoparticles.</a>&#160;J. Vis. Exp.&#160;(2016).
Photodynamic therapy (PDT) is a non-invasive and non-surgical method for lung cancer treatment. Photosensitizers selectively accumulate in tumor tissue and lead to tumor cell death in the presence of oxygen and the proper wavelength of light. In this protocol video, PDT-based method is used to evaluate the phototoxic potential of a potential photosensitizer in lung cancer cells.

יעילות אנטי סרטנית של טיפול פוטודינמי עם ריאות חלקיקים סרטן ממוקד

Summary

Explore More Videos

PLAYLIST