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L'imaging dal vivo ex vivo è una potente tecnica per studiare i processi dinamici dei movimenti e delle interazioni cellulari nei tessuti viventi. Qui, presentiamo un protocollo che implementa la microscopia a due fotoni per tracciare in tempo reale le cellule epiteliali dentali in incisivi di topo adulti interi in coltura.
L'incisivo di topo in continua crescita sta emergendo come un sistema modello altamente trattabile per studiare la regolazione delle cellule staminali epiteliali e mesenchimali adulte e la rigenerazione dei denti. Queste popolazioni progenitrici si dividono, si muovono e si differenziano attivamente per mantenere l'omeostasi tissutale e rigenerare le cellule perse in modo reattivo. Tuttavia, le analisi tradizionali che utilizzano sezioni fisse di tessuto non sono in grado di catturare i processi dinamici dei movimenti e delle interazioni cellulari, limitando la nostra capacità di studiarne le regolazioni. Questo articolo descrive un protocollo per mantenere gli incisivi interi di topo in un sistema di coltura di espianto e cellule epiteliali dentali live-track utilizzando la microscopia timelapse multifotone. Questa tecnica si aggiunge alla nostra cassetta degli attrezzi esistente per la ricerca odontoiatrica e consente ai ricercatori di acquisire informazioni spazio-temporali sui comportamenti e le organizzazioni delle cellule in un tessuto vivente. Prevediamo che questa metodologia aiuterà i ricercatori a esplorare ulteriormente i meccanismi che controllano i processi cellulari dinamici che avvengono sia durante il rinnovamento che la rigenerazione dentale.
Negli ultimi due decenni, l'incisivo di topo è emerso come una piattaforma inestimabile per studiare i principi della regolazione delle cellule staminali adulte e della rigenerazione dei denti 1,2. L'incisivo del topo cresce continuamente e si rinnova per tutta la vita dell'animale. Lo fa mantenendo sia le cellule staminali epiteliali che quelle mesenchimali, che possono auto-rinnovarsi e differenziarsi in diversi tipi di cellule del dente 1,2. Mentre le cellule staminali epiteliali dentali danno origine ad ameloblasti, che secernono la matrice dello s....
Tutti i topi sono stati mantenuti in strutture per animali prive di agenti patogeni presso l'Università della California di Los Angeles (UCLA) o l'Università Ebraica di Gerusalemme (HUJI). Tutti gli esperimenti che hanno coinvolto i topi sono stati eseguiti secondo le normative e i protocolli approvati dal rispettivo Comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali (IACUC) (ARC-2019-013; UCLA) o (MD-23-17184-3; HUJI). Un flusso di lavoro generale delle fasi sperimentali è mostrato nella Figura 2A. Vedere la Tabella dei materiali per i dettagli relativi a tutti gli strumenti, i reagenti e i materiali utilizzati in ....
La regione apicale dell'incisivo del topo adulto è racchiusa all'interno della mandibola (Figura 1) e quindi non è direttamente accessibile per visualizzare e seguire in tempo reale le cellule progenitrici che risiedono all'interno della regione di crescita. Pertanto, abbiamo sviluppato un metodo per estrarre l'intero incisivo dall'osso mascellare e mantenerlo in un sistema di coltura di espianto per la microscopia timelapse a due fotoni (Figura 2). Qui descri.......
L'imaging di tessuti vivi è una tecnica importante che ci permette di studiare i processi dinamici e i comportamenti delle cellule quando vengono mantenute nel loro ambiente di nicchia41. Idealmente, l'imaging dal vivo viene eseguito in vivo con un'elevata risoluzione spazio-temporale. Tuttavia, l'imaging in vivo per gli organi dei mammiferi può essere difficile a causa dell'inaccessibilità dei tessuti, dell'opacità ottica e della difficoltà di immobilizzare l'animale o l'or.......
Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.
Ringraziamo l'UCLA Advanced Light Microscopy/Spectroscopy Laboratory e il Leica Microsystems Center of Excellence presso il California NanoSystems Institute (RRID:SCR_022789) per aver fornito la microscopia a due fotoni. L'AS è stato supportato dall'ISF 604-21 della Israel Science Foundation. JH è stato supportato da R03DE030205 e R01DE030471 del NIH/NIDCR. AS e JH sono stati anche sostenuti da 2021007 di sovvenzioni della United States-Israel Binational Science Foundation (BSF).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
24 well, flat bottom tissue culture plate | Olympus plastics | 25-107 | |
25x HC IRAPO motCORR water dipping objective | Leica | 11507704 | |
Ascorbic acid (Vitamin C) | Acros Organics | 352685000 | |
D-(+)-Glucose bioxtra | Sigma Aldrich | G7528 | |
Delta T system | Bioptechs | 0420-4 | Including temperature control, culture dishes, and perfusion setup |
Dissection microscope- LEICA S9E | Leica | LED300 SLI | |
DMEM/F12 | Thermo Scientific | 11039047 | Basal media without phenol red |
Feather surgical blade (#15) | Feather | 72044-15 | |
Fine forceps | F.S.T | 11252-23 | |
Glutamax | Thermo Scientific | 35050-061 | Glutamine substitute |
Leica SP8-DIVE equipped with a 25X HC IRAPO motCORR water dipping objective | Leica | n/a | |
low-melting agarose | NuSieve | 50080 | |
non-essential amino acids (100x) | Thermo Scientific | 11140-050 | |
penicillin–streptomycin | Thermo Scientific | 15140122 | 10,000 U/mL |
Petri dish | Gen Clone | 32-107G | 90 mm |
Rat serum | Valley Biomedical | AS3061SC | Processed for live imaging |
Razor blade #9 | VWR | 55411-050 | |
Scalpel handle | F.S.T | 10003-12 | |
Scissors | F.S.T | 37133 | |
serrated forceps | F.S.T | 11000-13 | |
spring scissors | F.S.T | 91500-09 |
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