Accedi

È necessario avere un abbonamento a JoVE per visualizzare questo. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati Rappresentativi
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Qui proponiamo tre diversi metodi per danneggiare le fibre sensoriali che innervano la cornea. Questi metodi facilitano lo studio della rigenerazione degli assoni nei topi. Questi tre metodi, adattabili ad altri modelli animali, sono ideali per lo studio della fisiologia e della rigenerazione dell'innervazione corneale.

Abstract

La cornea è un tessuto trasparente che copre l'occhio ed è fondamentale per una visione chiara. È il tessuto più innervato del corpo. Questa innervazione fornisce sensibilità e funzione trofica all'occhio e contribuisce a preservare l'integrità corneale. L'interruzione patologica di questa innervazione è definita cheratite neurotrofica. Questo può essere innescato da lesioni all'occhio, interventi chirurgici o malattie. In questo studio, proponiamo tre diversi protocolli per infliggere danni all'innervazione in modi che ricapitolano i tre tipi di casi generalmente riscontrati in clinica.

Il primo metodo consiste nell'effettuare un'abrasione dell'epitelio con una fresa oftalmica. Ciò comporta la rimozione dello strato epiteliale, delle terminazioni nervose libere e del plesso sottobasale in modo simile all'intervento di cheratectomia fotorefrattiva eseguito in clinica. Il secondo metodo mira solo all'innervazione sezionandola alla periferia con un punzone da biopsia, mantenendo l'integrità dell'epitelio. Questo metodo è simile alle prime fasi della cheratoplastica lamellare e porta a una degenerazione dell'innervazione seguita dalla ricrescita degli assoni nella cornea centrale. L'ultimo metodo danneggia l'innervazione di un modello murino transgenico utilizzando un microscopio multifotone, che localizza in modo specifico il sito di cauterizzazione delle fibre nervose fluorescenti. Questo metodo infligge gli stessi danni della fotocheratite, una sovraesposizione alla luce UV.

Questo studio descrive diverse opzioni per studiare la fisiopatologia dell'innervazione corneale, in particolare la degenerazione e la rigenerazione degli assoni. Promuovere la rigenerazione è fondamentale per evitare complicazioni come difetti dell'epitelio o persino la perforazione della cornea. I modelli proposti possono aiutare a testare nuove molecole farmacologiche o terapie geniche che migliorano la rigenerazione nervosa e limitano la progressione della malattia.

Introduzione

La cornea, che è la superficie trasparente dell'occhio, è composta da tre strati distinti: l'epitelio, lo stroma e l'endotelio. Questo organo ha la più alta densità di innervazione nel corpo ed è composto principalmente da fibre sensoriali (tipi Aδ e C) che originano dal ramo oftalmico del ganglio trigemino. Le fibre sensoriali penetrano nella periferia della cornea nello stroma medio sotto forma di grandi fasci che si ramificano per coprire la superficie. Quindi si biforcano per perforare la membrana di Bowmann e formare il plesso sottobasale, che è facilmente riconoscibile per la formazione di un vortice al centro della cornea. Queste fibre terminano come terminazio....

Protocollo

Tutti gli esperimenti sono stati approvati dal National Animal Experiment Board.

1. Preparativi

  1. Preparare una soluzione anestetica di ketamina-xilazina per l'anestesia. Iniettare ketamina a 80 mg/kg e xilazina a 10 mg/kg diluendo 200 μL di ketamina (100 mg/mL) e 125 μL di xilazina (20 mg/mL) in 2.175 mL di NaCl sterile allo 0,9%.
  2. Preparare una soluzione 0,02 mg/mL di buprenorfina come soluzione analgesica aggiungendo 100 μL di buprenorfina 0,3 mg/mL a 1.400 mL di NaCl sterile allo 0,9%.
  3. Preparare la soluzione colorante fluorescente.
    1. Utilizzare una bilancia fine per pesare 10 mg ....

Risultati Rappresentativi

Questo studio propone diversi protocolli per infliggere danni all'innervazione corneale nei topi. Mentre protocolli simili sono stati utilizzati per studiare la fisiopatologia della guarigione dell'epitelio, abbiamo scelto di adattare e sviluppare nuovi metodi per studiare la rigenerazione dell'innervazione corneale. Per osservare l'innervazione, abbiamo usato due tecniche. In primo luogo, abbiamo impiegato una tecnica di immunofluorescenza per colorare le fibre nervose utilizzando un anticorpo pan-neuronale (tubulina BI.......

Discussione

La cheratite neurotrofica è considerata una malattia rara, che colpisce 5 individui su 10.000. Tuttavia, le persone che soffrono di NK a causa di una lesione fisica come ustioni chimiche o sindromi come il diabete o la sclerosi multipla non sono incluse in tali statistiche3. Inoltre, questa condizione rimane significativamente sottodiagnosticata22 e la prevalenza della malattia è sottostimata. C'è un forte bisogno di nuovi trattamenti e terapie che promuovano la rigenera.......

Divulgazioni

Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.

Riconoscimenti

Gli autori ringraziano la dottoressa Karine Loulier per l'accesso alla linea di topi transgenici MAGIC-Markers. Gli autori ringraziano anche la struttura RAM-Neuro e la struttura di imaging MRI, un membro dell'infrastruttura nazionale France-BioImaging supportata dall'Agenzia Nazionale Francese per la Ricerca (ANR-10-INBS-04, "Investimenti per il futuro"). Questa ricerca è stata sostenuta dal programma ATIP-Avenir, dall'Inserm, dalla Région Occitanie, dall'Università di Montpellier, dall'Agenzia Nazionale Francese per la Ricerca (ANR-21-CE17-0061), dalla Fondation pour la Recherche Médicale (FRM Regenerative Medicine, REP202110014140) e dalla Fondazione Groupama.

....

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
0.2 µm seringe filterCLEARLINE51733
0.5 mm rust ring removerAlger Equipment CompanyBU-5S
2 mL plastic tubesEppendrof 30120094
Algerbrush burr, Complete instrumentAlger Equipment CompanyBR2-5
Anti-beta III Tubulin antibodyAbcamab18207
AntigenfixDiapathP0016
Artificial tearLarmes artificielles MartinetN/A
BuprecareAnimalcareN/A
Cotton swabAny providerN/A
Dissecting toolsFine Science ToolsN/A
FluoresceinMerck103887
Gelatin from cold water fish skinSigmaG7765
Goat serumMerckS26
Head HolderNarishigeSGM 4
Heated plateBIOSEB LAB instrumentsBIO-HE002
Hoechst 33342Thermo Fisher ScientificH3570
Imalgene 1000BOEHRINGER INGELHEIM ANIMAL HEALTH FranceN/AFrench marketing authorization numbre: FR/V/0167433 4/1992
LAS X softwareLeicaN/ALarge volume computational clearing (LVCC) process
Laser Chameleon Ultra IICoherentN/A
Laser power meterCoherentN/A
Leica Thunder Imager Tissue microscopeLeicaN/A
Multi-photon Zeiss LSM 7MP upright microscopeZeissN/A
Ocry-gelTVM labN/A
Parametric oscillatorCoherentN/A
Penlights with blue cobalt filtercapBernellALPEN
Petri dishThermo Scientific150318Axotomy protocol
PetridishThermo Scientific150288Cornea whole-mount processing
Rompun 2%ElancoN/AFrench marketing authorization numbre: FR/V/8146715 2/1980
Sterile biopsy punch 2.5 mmLCH medicalLCH-PUK-25
Triton X-100VWR0694
VectashieldEuroBioSciencesH-1000Mounting medium

Riferimenti

  1. Marfurt, C. F., Cox, J., Deek, S., Dvorscak, L. Anatomy of the human corneal innervation. Exp Eye Res. 90 (4), 478-492 (2010).
  2. Al-Aqaba, M. A., Dhillon, V. K., Mohammed, I., Said, D. G., Dua, H. S. Corneal nerves in health and disease. Prog....

Ristampe e Autorizzazioni

Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi Autorizzazione

Esplora altri articoli

Questo mese in JoVENumero 202corneainnervazionecheratite neurotroficaabrasionebava ocularedegenerazione assonalefotocheratite

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Riservatezza

Condizioni di utilizzo

Politiche

Ricerca

Didattica

CHI SIAMO

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Tutti i diritti riservati