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In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati Rappresentativi
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Questo protocollo dimostra l'ablazione laser di singoli neuroni in larve di Drosophila intatte. Il metodo consente di studiare l'effetto della riduzione della competizione tra i neuroni nel sistema nervoso in via di sviluppo.

Abstract

Il protocollo descrive l'ablazione di un singolo neurone con un sistema laser a 2 fotoni nel sistema nervoso centrale (SNC) di larve intatte di Drosophila melanogaster. Utilizzando questo metodo non invasivo, il sistema nervoso in via di sviluppo può essere manipolato in modo specifico per le cellule. L'interruzione dello sviluppo dei singoli neuroni in una rete può essere utilizzata per studiare come il sistema nervoso può compensare la perdita di input sinaptico. I singoli neuroni sono stati specificamente ablati nel sistema di fibre giganti di Drosophila, con particolare attenzione a due neuroni: la fibra gigante presinaptica (GF) e il motoneurone tergotrocanterale postsinaptico (TTMn). Il GF fa la sinapsi con il TTMn omolaterale, che è cruciale per la risposta di fuga. L'ablazione di uno dei GF nel cervello del terzo stadio, subito dopo che il GF inizia la crescita assonale, rimuove permanentemente la cellula durante lo sviluppo del SNC. Il GF rimanente reagisce al vicino assente e forma un terminale sinaptico ectopico al TTMn controlaterale. Questo terminale atipico, bilateralmente simmetrico, innerva entrambi i TTMn, come dimostrato dall'accoppiamento del colorante, e aziona entrambi i motoneuroni, come dimostrato da saggi elettrofisiologici. In sintesi, l'ablazione di un singolo interneurone dimostra la competizione sinaptica tra una coppia bilaterale di neuroni che può compensare la perdita di un neurone e ripristinare le normali risposte al circuito di fuga.

Introduzione

L'ablazione laser è uno strumento preferito per sezionare i circuiti neurali in un'ampia varietà di organismi. Sviluppato in sistemi genetici modello come vermi e mosche, è stato applicato in tutto il regno animale per studiare la struttura, la funzione e lo sviluppo del sistema nervoso 1,2,3. Qui, l'ablazione di un singolo neurone è stata impiegata per studiare come i neuroni interagiscono durante l'assemblaggio del circuito in Drosophila. Il sistema di fuga della mosca è un circuito preferito per l'analisi perché contiene i neuroni più grandi e le sinapsi più grand....

Protocollo

Tutti gli animali utilizzati per il protocollo erano della specie Drosophila melanogaster. Non ci sono problemi etici che circondano l'uso di questa specie. Per svolgere questo lavoro non è stato necessario un nulla osta etico. I dettagli delle specie di Drosophila , dei reagenti e delle attrezzature utilizzate nello studio sono elencati nella Tabella dei materiali.

1. Allevamento di Drosophila e selezione dello stadio larvale corretto

  1. Scegliere una linea driver Gal4 che guidi l'espressione nelle cellule che devono essere ablate e ricombinarla o attraversarla con una lin....

Risultati Rappresentativi

Questo metodo può essere utilizzato per manipolare lo sviluppo di specifiche reti neuronali nel sistema nervoso di Drosophila. La domanda principale di ricerca qui era la formazione di connessioni sinaptiche. La rimozione del GF presinaptico o del TTMn postsinaptico ha permesso di studiare la sinaptogenesi reattiva in questa sinapsi centrale e i meccanismi molecolari cruciali per la funzione e lo sviluppo sinaptico. Come descritto nel protocollo, è stata eseguita l'ablazione cellulare laser di uno dei GF o di .......

Discussione

L'ablazione cellulare con un microscopio a 2 fotoni si è dimostrata un metodo di grande successo per manipolare lo sviluppo del circuito neuronale in Drosophila. Poiché questo metodo non è invasivo, provoca danni minimi all'animale. I dati supportano l'utilità di questa manipolazione cellulo-specifica di circuiti noti.

Fondamentale per il successo dell'ablazione è stata la selezione del driver Gal4 più appropriato. Poiché il GFS è ben studiato, sono state descritte molte linee.......

Divulgazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Riconoscimenti

Gli esperimenti sul microscopio a 2 fotoni sono stati eseguiti presso l'Advanced Cell Imaging Core del FAU Stiles-Nicholson Brain Institute. Ringraziamo la Jupiter Life Science Initiative per il sostegno finanziario.

....

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
Alexa Fluor 488 AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG (H+L)Jaxkson ImmunoResearch111-545-003
Anti-green fluorescent protein, rabbitFisher ScientificA111221:500 concentration
Apo LWD 25x/1.10W ObjectiveNikonMRD77220water immersion long working distance
Bovine Serum Albumin (BSA)SigmaB4287-25G
Chameleon Ti:Sapphire Vision II LaserCoherent
Cotton BallGenesee Scientific51-101
Dextra, Tetramethylrhodamine, 10,000 MW, Lysine Fixable (fluoro-Ruby)Fisher ScientificD1817
Drosophila salinerecipe from Gu and O'Dowd, 2006
Ethyl EtherFisher ScientificE134-1Danger, Flammable liquid
Fly food B (Bloomington recipe)LabExpress7001-NV
Methyl salicylateFisher ScientificO3695-500
Microcentrifuge tube 1.5 mLEppendorf22363204
Microscope cover-slip 18x18 #1.5Fisher Scientific12-541A
Neurobiotin TracerVector LaboratoriesSP-1120
Nikon A1R multi-photon microscopeNikonon an upright FN1 microsope stand
NIS Elements Advanced ResearchNikonAcquisition and data analysis software
Paraformaldehyde (PFA)Fisher ScientificT353-500
PBS (Phosphate Buffered Salin)Fisher BioReagentsBP2944-100Tablets
R91H05-Gal4Bloomington Drosophila Stock Center40594
shakB(lethal)-GAl4Bloomington Drosophila Stock Center51633
Superfrost microscope glass slideFisher Scientific12-550-143
Triton X-100Fisher Scientific422355000detergent solution
UAS-10xGFPBloomington Drosophila Stock Center32185

Riferimenti

  1. Chung, S. H., Mazur, E. Femtosecond laser ablation of neurons in C. elegans for behavioral studies. Appl Phys A Mater Sci Process. 96 (2), 335-341 (2009).
  2. Bower, D. V., et al. A....

Ristampe e Autorizzazioni

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