Per eseguire la diluizione seriale utilizzando una piastra a pozzetti, posizionare prima le sospensioni di Mycobacterium sulle file A ed E di una piastra a 96 pozzetti. Aggiungere 180 microlitri di acqua deionizzata nei pozzi rimanenti per il processo di diluizione seriale. Utilizzando una pipetta a 12 canali, risospendere le sospensioni nella fila A e trasferire 20 microlitri nella fila B.Ripetere il trasferimento della sospensione per le file B e C fino a raggiungere l'ultima diluizione nella riga D.Per la placcatura di microgocce, utilizzare una pipetta multicanale da 0,5 a 10 microlitri con puntali sottili per trasferire cinque microlitri da ciascuna fila della piastra a 96 pozzetti alla piastra quadrata media solida.
Lasciare che le goccioline tocchino leggermente l'agar, garantendo un corretto trasferimento e riducendo al minimo la ritenzione di liquidi all'interno della punta. Lasciare asciugare le goccioline e chiudere la piastra di agar. Incubarlo a 37 gradi Celsius monitorando la crescita batterica.
Facoltativamente, mettere le piastre di agar in un sacchetto di plastica sigillato per evitare che si secchino. Dopo 6-10 giorni di incubazione, verificare la presenza di singole colonie visibili ad occhio nudo. Posizionare la lastra sotto un microscopio invertito utilizzando l'obiettivo con l'ingrandimento più basso.
In alternativa, utilizzare una fotocamera per scattare una foto della gocciolina e contare manualmente le colonie sul computer utilizzando ImageJ per il conteggio automatico delle colonie. L'unità formante micro-colonia o il saggio micro-CFU è stato utilizzato per produrre elevate quantità di dati da una piccola quantità di piastre di agar. L'uso di liposomi per la somministrazione di saquinavir ha aumentato l'efficacia del trattamento contro i ceppi di microbatteri con diverse resistenze ai farmaci.