Una volta che gli occhi suini enucleati da una macelleria ispezionata dall'USDA arrivano al laboratorio, procedere con la rimozione del tessuto esterno. Tieni il muscolo attaccato all'occhio con una mano. Usando un bisturi, taglia delicatamente il tessuto che circonda la sclera con l'altra mano.
Usa forbici a iride curve per tagliare il nervo ottico. Quindi posiziona l'occhio sul ghiaccio con la cornea rivolta verso il basso. Per la dissezione, utilizzando una pinzetta, trasferire l'occhio nel pozzetto contenente una soluzione di iodio povidone al 10% e ruotarlo per assicurarsi che sia completamente rivestito.
Posizionare una garza sterile sul coperchio rovesciato poco profondo della capsula di Petri. Metti un colino cellulare in una capsula di Petri separata. Trasferire l'occhio dalla soluzione di iodio povidone nel pozzetto contenente DPBS e lavarlo per circa cinque secondi.
Quindi spostarlo progressivamente nei pozzetti contenenti DPBS successivi per diluire la soluzione di iodio. Successivamente, posizionare l'occhio sulla garza sterile. Usando un bisturi, fai una piccola incisione sotto l'ora serrata, o circa un terzo del globo dal bordo dell'iride.
Usa le forbici per iride per tagliare uniformemente lungo la circonferenza del globo parallela alla cornea. Usa le pinzette per afferrare il nervo ottico e sollevare delicatamente il globo dalla garza. Posizionare l'oculare nel colino cellulare preparato con l'interno dell'oculare rivolto verso l'alto.
Aggiungere delicatamente DPBS freddo alla conchiglia oculare, assicurandosi che il livello del fluido sia appena al di sotto del punto più basso dell'incisione.
