マウスにおけるモデリングのストローク：遠位中大脳動脈の永久的な凝固

要約

中大脳動脈閉塞（MCAO）の種々のマウスモデルが広く実験的脳研究において使用される。ここでは、人間の虚血性脳卒中の過半数によって課さ被害に対応する大き​​さの一貫した皮質梗塞を生成し、経頭蓋永久遠位MCAOのモデルを示しています。

要約

脳卒中は死因の3番目の最も一般的な原因であり、先進国における後天大人の身体障害の主要な原因である。非常に限られた治療上のオプションは、急性期脳卒中患者のごく一部のために用意されています。現在の研究は、集中的に新たな治療戦略を探索していると、より多くの患者が長期の時間窓における治療的介入の対象となる可能性があるため、ますます脳卒中後の亜急性および慢性期に焦点を当てている。これらの遅れのメカニズムは、脳卒中後の炎症、血管新生、神経可塑性や再生などの重要な病態生理学的経路を含む。これらのメカニズムを分析し、その後、新規の薬物標的を評価するために、臨床的関連性、低死亡率および再現性の実験的脳卒中モデルが求められている。さらに、マウスは、焦点脳卒中病変が誘発される可能なトランスジェニックモデルの広いスペクトルがある最小の哺乳動物である利用できる。そこで、ここでは経頭蓋のマウスモデル、lenticulostriatal動脈、いわゆる「凝固モデル」の電気凝固先端を経由して中大脳動脈の永久的な凝固を説明します。このモデルで生じた梗塞は主に大脳皮質に位置しています。脳の大きさとの関係で相対梗塞体積は、人間のストロークの大半に対応している。また、このモデルは再現性と低死亡率の上記の基準を満たしています。このビデオでは、「凝固モデル」における脳卒中誘導の外科的方法を示し、組織学的および機能的な解析ツールを報告する。

概要

脳卒中は死因の3番目の最も一般的な原因であり、先進国の^1、取得した成人の障害の1主な理由である。約15％が脳内出血²によって引き起こされている間、この急性神経疾患の約80％が脳血流の閉塞に起因する脳虚血により引き起こされる。現在進行中の研究にもかかわらず、組織プラスミノーゲン活性化因子の静脈内投与は、脳卒中発症後の^3,4、これまでと脳卒中患者の少数派だけが利用できるため、4.5時間の短い認可されたタイムウィンドウの虚血性脳卒中の唯一の承認薬理学的な治療法です。きちんとストローク中脳、血管系および全身病態生理学的メカニズムとの間の複雑な相互作用をモデル化できないin vitroモデルは、存在しないように、動物モデルは、前臨床脳卒中研究に不可欠である。

したがって、いくつかの虚血性脳卒中モデルは、変数が開発されている種のETY。最も一般的に使用される脳卒中モデルの一つは、縫合フィラメント一過内頸動脈に導入し、先端部が血流の停止をもたらす、中大脳動脈（MCA）の起点を閉塞するまで転送される「フィラメントモデル」であるおよび皮質下や長時間の閉塞例においても皮質領域^5,6のその後の脳梗塞。虚血性脳卒中の光血栓のモデルでは、照射された皮質血管の光化学閉塞は、小さな、ローカルに外接病変^7、その結果光増感剤の注射の後に達成される。 lenticulostriatal動脈の遠位MCAの永久閉塞は動脈の結紮、その一過性または永続的な圧縮によって凝固^8,9によって達成することができる。このモデルにおけるMCAの閉塞が静水に対して遠位であるため、このモデルでの結果の梗塞は、主に新皮質^10に影響^を与えます大脳基底核を供給ulostriatal動脈。

人間の脳卒中病変の大部分は、中大脳動脈の領域に位置しているので、一般的なストロークモデルのすべてがMCAの閉塞またはその分枝¹¹の1に似ている。 MCAは、脳への血液供給を提供する主要動脈の一つであり;それは、横方向溝に沿って内頸動脈、ルートから発生する場所、それが、その後基底核と前頭葉、頭頂葉、一次運動および感覚皮質を含む側頭葉の側面に分岐し、プロジェクト。左右のMCAはウィリス（ 図1）の輪を作る、前大脳動脈と後大脳動脈に接続する動脈を、通信後部に接続されている。

以前にカーマイケルら ¹¹により報告された、遠位中大脳Arでモデル化さ梗塞マウスでのバッテリ閉塞（MCAO）モデルは、それによって皮質MCA領域^11,12に配置されている人間の脳卒中病変の大部分を模倣し、半球の約10〜15％を包含する。 1981年に、田村らは 、ラット⁸永久、経頭蓋MCAO凝固モデルを説明した。しかし、田村によって記述されたモデルは、動脈の分岐部より遠位のを回避するために、MCA閉塞の近位に関与する。したがって、元の「タムラ·モデルは^、「6」フィラメントモデル」によって得られた病変に類似していないだけでなく、皮質線条体病変を誘導する。ここでは、マウスでの経頭蓋電気凝固による永久遠位MCAOモデルについて説明します。さらに、我々は、このモデルでは、ストロークの結果を分析するために、関連する組織学的および機能的な方法を報告している。すべてのメソッドが開発され、私たちの研究室で使用される標準的な操作手順に基づいています。

プロトコル

倫理声明

このビデオで報告された実験は、実験動物の使用に関する国のガイドラインに従って行ったとプロトコルは、ドイツ政府の委員会（RegierungフォンOberbayern、ミュンヘン、ドイツ）によって承認された。 10週齢の雄性C57BL/6Jマウスをこの研究で使用されている。動物は、12時間の明暗周期と地方政府の委員会によって承認された。鎮痛および鎮静プロトコルが記述されてペレット化食料と水を自由にアクセスできるように、制御された温度（22±2℃）で飼育されたが、異なる場合があります他の研究室で使用されるプロトコルから。

1。材料の作製と楽器

1. 暖かい操作領域を維持し、麻酔中のマウス体温（37℃）を維持するために、熱ブランケットを接続する。
2. 準備オートクレーブ処理ハサミ、ピンセットや綿、dexpanthエノール眼軟膏や縫合材料。水和さ動作領域を維持するために、（針なし）食塩水の注射器を準備します。麻酔ガス（70％のN ₂ O + 30％のO ₂ +イソフルラン）を準備します。
3. 腹腔内に鎮痛剤を注入：メタミゾール200 mg / kgを、カルプロフェン4 mg / kgのとブプレノルフィン0.1 mg / kgのを。
4. 自発的な身体の動きや鼻毛停止するまでそれを麻酔4％のイソフルラン流量で導入チャンバーにマウスを置きます。
5. 麻酔マスクに鼻と横方向の位置でマウスを移し、さらに約分間4％イソフルラン濃度を維持し、適切な麻酔を維持するためにapprox.1.5％でそれを削減し、。
6. 両眼にデクスパン眼軟膏を適用します。

2遠位MCAOモデル

1. 手術部位の資料を使のaseptical調製後少し操作ハサミを使用して、耳と目の間の1cmの皮膚切開を作るGの皮膚消毒剤。
2. 皮膚を分離し、側頭筋をローカライズ。
3. 高周波発生器で凝固機能、バイポーラモードを選択し、12 Wを選択して、ケーブルで電気凝固鉗子を接続します。
4. 生理食塩水の滴を追加し、完全に筋肉を取り外すことなく、筋肉のフラップを作り、それによって、その先端および背部分の頭蓋骨から側頭筋を分離するために鉗子を使用しています。
5. 、時間領域の吻側部分的には、透明な頭蓋骨の下に眼窩洞（ 図2A）に背をMCAを特定します。 MCAの分岐が（解剖学的正常な変動に起因して）表示されていない場合は、容器の最も頭側を識別します。
6. それは薄く、半透明テクスチャ（ 図2B）を持つまで右MCAの枝上のドリルで骨外頭蓋骨と薄い上のいくつかの生理食塩水を追加します。
7. 慎重に、非常に薄い、鉗子で動脈の上に骨を撤回。
8. バイポーラモードを選択してIW. 7のn高周波発生器分岐（ 図2C）の近位および遠位の電気凝固鉗子で動脈を凝固させる。分岐による解剖学的バリアントに表示されていない場合には、およその2箇所（上記参照）が正しく識別されたMCA枝を凝固。 1ミリメートルの距離。それは上から両側の鉗子で注意深く動脈に触れる、凝固用鉗子で動脈を把握する必要がないことは十分であり、より少ない機械的損傷を誘発する。
9. 30秒待ってから、ゆっくりと自発的な再疎通のために任意の血流を確認するために鈍い鉗子で動脈をタッチします。再疎通の場合、一度電気凝固を繰り返します。
10. バーホールをカバーし、その位置に頭筋を変える。
11. 傷口を縫合し、麻酔から回復してケージに戻し、32℃での看護ボックスに動物を配置します。一般に、anesthから回復するために、動物のための5〜10分かかりますESIA。
12. カルプロフェン4 mg / kgの第5の術後の日まで毎日、24時間後に術後鎮痛（IP）を注入し。

3。仮手術

公開される動脈を凝固ない以外は - 頭蓋骨とその除去の薄化を含む - 上述した動作と同一にすべての手順を実行します。

4シリンダのテスト¹³

1. 透明なアクリルガラスシリンダーに動物を置き（直径：10センチメートル、高さ：25センチメートル）5分間2ミラーおよびビデオテープの前で。最適なビデオ（ 図3A）を得るために2ミラーとシリンダーの前に集中的にカメラを調整します。
2. 独立した前肢の使用を評価するためのスコア（1）フルリアと全リア後床に一つだけの前肢と（2）着陸中1前肢とシリンダー壁との接触。スローモーションやフレームごとのFRを使用して1前肢のために少なくとも20の接点を数えるビデオLANクライアントのAME機能（VLC）フリーソフト（ http://www.videolan.org/vlc ）。
3. 手術前のベースライン解析のために：試験間1時間の休憩で、マウスあたり二回の試験を行う。前肢の使用は、左側の/右、独立した前肢の使用割合として表される。
4. MCA凝固後：上に示したように試験間で1時間の休憩で、マウス二回再度テストを実行します。

5。灌流

1. 動物を麻酔し（ 例えば、それぞれ、ケタミンおよびキシラジン16分の120 mg / kg体重、による）。
2. 仰臥位で動物を固定し、中央値カットで腹腔を開きます。リッピングと胸骨を削除します。右心房に小さな切開を行います。左心室に灌流カニューレを挿入し、徐々に生理食塩水20mlで灌流。
3. 動物の首を頭蓋冠を開き、ゆっくりと頭蓋底からの脳を切り離す。
4. 10分間-40℃の寒冷イソペンタン中で脳をフリーズします。その後-80℃でさらに分析までイソペンタン、店舗からの脳を削除

6。梗塞容積測定

1. 凍結切片：20μmの厚さの切片をクリオスタットで連続的にスライド上のすべての400μmで脳をカットし、-20℃でスライドを保存する
2. クレシルバイオレット（CV）染色。
   1. 染色溶液を調製：500 mlのH ₂ OにCVの酢酸0.5グラムを混ぜる結晶が溶解するまで撹拌し、熱（60℃）。ソリューションは、冷ますと暗い瓶の中に保管してください。すべての使用前に60℃、フィルタに再加熱。
   2. 室温で30分間スライドを乾燥する。次いで1分間50％エタノール中で15分間、その後95％エタノール中に置き、次いで70％エタノール中で1分間、そして。
   3. 蒸留水を更新し、1分のためにそれらを中に置き、2分間蒸留水にスライドを置きます。その後、染色溶液（60°C）からfスライドを配置するまたは10分、1分間蒸留水で二度、それらを洗ってください。
   4. 2分間、95％エタノールでスライドを配置します。その後、5分間100％エタノールにそれらを配置し、100％エタノールを更新し、2分のためにそれらを中に配置します。その後封入剤でスライドをカバーしています。
   5. 分析：
      スライドをスキャンし、浮腫を補正するために、スワンソン法¹⁴による間接梗塞容積を分析します。
      （虚血領域）=（対側の皮質の面積） - （同側の非虚血性皮質エリア）（ 図4A）。

結果

が短い麻酔時間と適度な脳の損傷のため、約10分をケージに転送後、すべての動物が自由にケージに移動させ、同腹仔との相互作用、目を覚ました。 MCAO手術中の死亡率は、主に、偶発的なくも膜下出血または不適切な麻酔の結果として、5％未満であった。脳卒中誘発後7日間の観察期間中の死亡率は、動物の約1〜2％とごくまれにしか発生しません。このレポートのために10匹の動物の一連の動作において、全ての動物は、それらのどれもが原因の除外基準に除外されることがなかった、動作および7日間の観察期間生存した。

MCA凝固後の行動欠損は前足使用非対称性を分析する円筒試験¹³により評価した。この試験では、独立した左右の前足の使用割合は、脳卒中誘発後示した時点で測定し、24を得たベースライン値と比較するMCAO（ 図3B）には、HR。動物は、試験のシリンダ24時間での組合せ壁探査四肢使用の非対称の有意な変化を示した（1.72±0.326であり、p <0.05）および3日（1.36±0.17であり、p <0.05）MCAO後。比が1週間の観察期間中に改善したが、モータの非対称性は、7日MCAO後でも有意であった（1.35±0.29であり、p <0.05）、ベースライン値と比較した。

我々は7日間ストローク誘導（ 図4B）の後にシリアル冠状脳切片を染色し、クレシルバイオレットを使用して、梗塞容積測定を行った。意味梗塞容積は、それによって1脳半球（ 図4C）の12％に相当、15.4ミリメートル³であった。この脳卒中モデルの変動性は、約10％の標準偏差が非常に低い。病変領域は、皮質下構造のわずかな愛情と体性感覚·運動皮質を包含する。さらに、梗塞の局在回路図分布図（ 図4D）のように面積が最小限の変動性の高い予測可能である。

図1。ウィリス輪の模式図。ウィリス動脈円は内頸動脈（ICA）からの分岐だけでなく、することにより、中大脳動脈（MCA）と前大脳動脈（ACA）によって形成されている脳動脈（PCA）と後交通動脈（PComA）を後方。 MCAは、大脳皮質には枝の横溝に実行されます。 BA =脳底動脈;; SUCA =優れた小脳体性感覚皮質の運動野と部品の大部分を供給して支配的なMCAの枝が永続的に実証されたモデル（アコマ=前交通動脈に吸蔵されているLAR動脈）。

図2。頭筋およびMCA閉塞の模式図を除去した後の経頭蓋ビュー。 （A）側頭筋を除去した後皮質動脈は（8〜12週齢のマウスで）部分的に半透明のマウスの頭蓋骨を通して見ることができます。支配のMCAの分岐は、時間的視野の吻側部分だけでなく、尾の部分に、MCAおよびPCAから分岐、さらに皮質動脈内で識別することができます。分岐部との主な変動の支配的なMCA枝の（B）の概略図を横側頭皮質にバーホールを開け、頭蓋骨を除去した後、（C）は黒い四角は、分岐の近位および遠位側にMCA凝固部位を表す。

図3。行動障害の分析。 （A）シリンダテストは、セットアップ：マウスは、垂直シリンダ内に配置され、ミラーは、ビデオカメラを用いて動きの全てを登録するために背後に配置されている（B）前肢用非対称性は、シリンダテストを用いて分析した。独立した前肢の使用の左/右の比率は、MCAO前、脳卒中誘導後示した時点で24時間を算出した。 Nは、指示された時及びベースライン（対照）の値との間に0.05 *はp <= 10。

図4。遠位MCAO後の梗塞分析および梗塞の転帰体積。クレシルバイオレット染色冠状ブラジャー（A）の代表画像セクションのMCAO後7日間。黄色の線は、対側（右）皮質が選択されたことを示すされており、赤線は同側の脳の非梗塞（染色）皮質を選択している。左半球の薄い領域は、梗塞組織領域を示している。（B）の梗塞容積の10の脳の分析（それぞれが1個々の脳を表すドット）24時間、3日間および遠位MCA凝固後の7日間。横の赤線は、平均、エラーバーは標準偏差を示す。（C）代表クレシルバイオレットは、MCA凝固後7日目の冠状脳切片ごとに400μmで染色した。（D）7日、MCAO後、梗塞脳組織の概略分布を表す。各スライドはブレグマ（。：;オックスフォード大学出版の許可を得てLiesz A ら 、脳、2011年からイメージを変更された）との関係で一定の部分で梗塞分布（示されているように色分けさ）の蓄積された情報を示している。 この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。

ディスカッション

いわゆる「凝固モデル」 - この議定書は、経頭蓋電気凝固による遠位、永久MCAOの実験的脳卒中モデルについて説明します。このモデルは、一方の実験的脳卒中研究¹²の中で最も頻繁に使用される動物モデルの一つとなっている。他の局所脳虚血モデルと比較して、この動画で示されたように凝固モデルは、訓練された科学者によって実行される、約10分の非常に短い動作時間という利点を有する。従って、短時間の麻酔時間が神経保護及び脳卒中転帰に対する麻酔薬の影響は¹⁵周知であるため、実験的脳卒中モデルの有利な特徴であり、このモデルで達成することができる。遠位MCA永久凝固は、ヒトの大部分において虚血性脳病変に対応する後さらに、以前にカーマイケルらによって記載されるように^、図11は、得られた梗塞体積および局在ことを裏付ける脳の大きさに比例してストローク。人間のストロークは、前の集団研究と臨床イメージング試験^16〜18に基づいて、半球の約5〜15％で病変を有するサイズは主に小さく、10％未満の中で発生する圧縮脳浮腫との広範なストローク病変とは対照的に、臨床ストローク^19。これにより、提示されたモデルによって達成半球の約12％のMCA領域における脳卒中病変は、翻訳関連の拍出量とみなすことができる。しかしながら、異なるマウス系統または使用される麻酔プロトコルは結果として生じる病変体積²⁰に影響^を与える可能性^があることを考慮に入れなければならない。

このモデルにおける卒中誘導後の観察期間中の死亡率は実質的に不在である。除外基準に達するための5％未満の全死亡率が原因anesthesiological合併症や犠牲の動作中に死亡から主に構成されている。低Vを保証するためには、運転中の1）すべてのくも膜下出血：このモデルとその優れた再現性ariabilityは、我々は以下の除外基準を提案する。 2）運転時間が15分を超える。唯一の過渡MCAOと電気凝固のための2回の試行後、MCAの3）再疎通。さらに、動物は、痛み、不快感又は疾病行動をコントロールするためにMCAO（塩基性の生理的挙動、毛皮の外観および体重）の後に毎日検査する必要がある。

いくつかの対策がレーザスペックル測定、磁気共鳴イメージング、行動試験または組織学的分析のような脳卒中の結果の分析のために実施してもよい。このプロトコルでは、行動分析、および梗塞体積分析のための例示的な方法を提供する。局所脳虚血後の行動分析のためのいくつかのテストを開発し、実験的な脳卒中の研究に用いられてきた。以前にこのストロークモデル^21,22の我々に我々のグループで使用される感覚運動機能障害に適しテストロータロッド試験^23、付箋ラベルテスト^24、コーナーテスト²⁵と、このビデオで実証されたシリンダのテスト^13、再。円筒試験は、一貫して、遠位永久MCAO後の急性期における運動の非対称性を示しているとも運動機能の回復連続で検出します。

明白な利点にもかかわらず、この脳卒中モデルのいくつかの制限を考慮しなければならない。まず、頭蓋骨の穿孔は手術創、側頭筋や脳自体の細菌感染が、自分自身が検出されたことはないが、それによって、脳の周囲の運用感染の潜在的なアクセスを生産、動脈を凝固するために必要であるまたは、このモデルを使用して他の人が文書化された。また、準備および凝固時の皮質への機械的な損傷を除外することはできませんが、慎重に掘削し、頭蓋骨の除去、手術部位の一定加湿し、最小限のNEによって制限することができます cessary電気凝固（除外基準を参照してください）​​。 図2に示すように、MCAの経過は、C57BL / 6マウスの大多数において見出されているが、モデルの変動性を最小限にするために、血管のコースの通常の変動に進行する方法をプロトコールに記載している。さらに、我々は複数の使用を示唆している（分岐の場合は3を、MCAの分岐点のない2）閉塞部位は、我々の経験では、このモデルの多様性のための重要な要因であるMCAの部分再疎通のリスクを最小限に抑えるため。

行動試験の点で、わずかな行動障害は、上述した行動試験および機能的再生に検出することができる脳卒中後1週間以内に観察することができる。したがって、より高い感度と熟練到達テスト²⁷のような定性試験パラメータと、より高度なテストシステムは、このモデルでは、長期的な機能予後を検出する方が適しているかもしれません。

ontent ">最後に起因するMCAの永久凝固にノーと再灌流は、自発的な血餅溶解または治療²⁸に脳卒中患者のかなりの割合で観察された特徴である、得ることが可能であるが、前に説明した血栓塞栓脳卒中モデル^26が提供するにより、最小限の死亡率と人間のストロークに対する匹敵相対梗塞体積とローカリゼーションへの皮質の脳虚血再灌流と無料の脳卒中モデルのためのオプション。まとめると、高い再現性、可能性、長期的な観察が「凝固モデル」を区別する基本および翻訳脳卒中研究のための貴重なモデルとして。

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Camera Canon Eos 500D	Canon		Optics: 18-55 mm; 30 fps; 640 x 480 video function
Mirror	Kristallform	2677089	30 x 30 cm
Transparent acrylic glass cylinder	H&S Kunststofftechnik		Diameter: 8 cm,  height: 25 cm
Heating blanket	FHC DC Temperature Controller
Fine Scissors	FST	15000-00
Mayo Scissors	FST	1410-15
Forceps	FST	11616-15
Cottons	NOBA Verbondmitel Danz	974116
Saline solution	Braun	131321
Bepanthen pommade	Bayer
Isoflurane	Abbot	B506
Anesthesia system for isoflurane	Drager
Stereomikroskop	Zeiss	Stemi DV4
Electrosurgical device	ERBETOM ICC 80/50 HF-Chirurgiegerät
Drill	Proxxon	D-34343
Ketamine	Inresa Arzneimittel GmbH
Xylacine	Albrecht
5ml Syringe	Braun
Phosphate Buffered Saline PH: 7.4	Apotheke Innestadt Uni Munchen	P32799
Isopentane	Fluka	59070
Cryostat	Thermo Scientific CryoStarNX70
Superfrost Plus Slides	Thermo Scientific	J1800AMNZ
Cresyl violet	Sigma Life Science	C5042-10G
Acetic acid	Sigma Life Science	695092
Ethanol 70%	CLN Chemikalien Laborbedorf	521005
Ethanol 96%	CLN Chemikalien Laborbedorf	522078
Ethanol 99%	CLN Chemikalien Laborbedorf	ETO-5000-99-1
Roti-Histokit mounting medium	Roth	6638.1
C57Bl/6J mice	Charles River	000664