AC-6フィーダシステムを使用してリンパ球系共通前駆細胞からマウス形質細胞様樹状細胞のインビトロ生成に

要約

In this study we present an in vitro culture system that can efficiently generate pDCs by co-culturing common lymphoid progenitors with AC-6 feeder cells in the presence of Flt3 ligand.

要約

形質細胞様樹状細胞（pDC）感染に応答して、または炎症応答の間に活性化された細胞を産生Iインターフェロン強力型（IFN-I）です。残念ながら、pDCの機能の研究は、リンパ器官で、その低周波によって妨げられ、in vitroでのDC生成のための既存の方法は、主にpDCを超えるのCDCの生産を好みます。ここでは、効率的にin vitroでのリンパ球系共通前駆細胞（のCLP）からのpDCを生成するためのユニークなアプローチを提示します。具体的には、プロトコルは、骨髄からのCLPを浄化し、Flt3リガンドの存在下でγ線を照射し、AC-6フィーダー細胞との共培養により、pDCにを生成する方法の詳細を説明しました。この培養系のユニークな特徴は、のCLPは、AC-6細胞の下に移動して、石畳の領域形成細胞になることのpDCを拡大するための重要なステップです。形態学的に異なるDCは、すなわちたpDCとのCDCは、7の組成物で約2週間後に生成されました最適な条件の下で0から90パーセントのpDCに。通常、この方法によって生成されたpDCの数はおおよそのCLPの数の100倍がシードされます。したがって、これは、確実に、これらの細胞の発達と機能にさらなる研究を容易にするために必要なのpDCを大量に生成すると、新規システムです。

概要

樹状細胞（DC）は^、1免疫応答の制御に重要な役割を果たしているプロフェッショナル抗原提示細胞です。 DCは不均一であるが、それらは、大きく2つの集団に分類することができ、従来のDC（のCDC）および形質のDC（pDCに^）2,3。リンパ器官に加えて、のCDCとのpDCは、肺、腸および皮膚²を含む組織中に見出されます。 CDCとのpDCの形態はのCDCは、デンドライト状の突起と以上のプラズマ細胞様であることのpDCの形状を呈すると、異なります。また、一般的なマウスDCマーカーCD11cのは、より高度のpDC上でのCDCより上で発現されます。 pDCに^2が行うよりも、MHCクラスIIの高いレベルと共刺激分子を発現どちらのCD24 ⁺のCDC、 ^-のCDCとのCD11b ^-また、のCDCは、さらにのCD11b ⁺ CD24に分けることができます。成熟のpDCは、一方で、選択シグレックHおよびBST2 ^4を発現することが示されています。 Functionally、のCDCは、pDCにはよりも優れた抗原提示細胞です。しかし、pDCには、私は、ウイルス感染または炎症性刺激⁵時に型インターフェロンの膨大な量を生成することができます。

両方のCDCとのpDCは短命であるため、常に骨髄^（BM）6,7内の前駆細胞から補給する必要があります。致死的に照射したマウスに共通の骨髄前駆細胞（のCMP）とリンパ球系共通前駆細胞（のCLP）の養子移入はのCDCとのpDCは、両方の系統^8-10から生成することができることを実証しています。しかし、RAG1 / 2を発現し、IgH遺伝子座^11,12に再配置DJセグメントを所有するpDCのサブセットがあります。これらの細胞はまた、B220マーカーの発現は、核酸感知受容体（TLR7 / TLR9）、および転写因子（SPIBと^{Bcl11a）13を含む} Bリンパ球との分子の類似性を共有すると、すべてがリンパ系列の署名であると考えられています。したがって、CLPsがあるため、系統の類似のpDCのインビトロ生成のための良い選択かもしれません。

ヒトおよびマウスの両方でのCDCとのpDCの頻度が非常に低いが^6、DCは、特にたCDCは、（例えば、GM-CSF ^11,14またはFlt3リガンドなどのサイトカインの存在下で、BMまたは前駆細胞からインビトロで生成することができるFL ）フィーダーフリーシステム^{11,15,16を使用} 。しかし、残念ながら、それは、FL ^{11,15,16 を用いてインビトロで}のpDCの多くを生成することは不可能です。以前に我々は、pDCには、効率的にAC-6フィーダシステム^{17を使用して}のCLP からインビトロで生成することができることを実証しました。培養系においてAC-6間質細胞株を使用することの利点は、それが細胞 - 細胞接触とのCLPからのpDCの多数の生成をサポートするサイトカインの分泌を提供することです。このシステムの生産は非常に堅牢ですが、下記の手順を慎重にレプリケーションが私を必要とされますn個の順序のpDCの効率的な生成を確実にします。

プロトコル

C57BL / 6野生型マウスは、国立実験動物センター（NLAC）、台湾から購入しました。すべてのマウスは、特定病原体を含まない条件下で飼育し、維持しました。プロトコルおよび動物使用手順を見直し、医学の国立台湾大学（許可番号：20120075）の施設内動物管理使用委員会によって承認されました。実験を行っている間に加えて、研究者は、動物のすべての痛みの可能性を減らすため、苦痛、または苦痛を行いました。手袋を着用して説明されているすべての手順は室温で行いました。

AC-6フィーダー細胞の調製

注：（I.ワイズマン、スタンフォード大学によって提供された）AC-6.21（AC-6要するに）間質細胞ライン^18は、RPMI中で維持されるべきである15％の熱不活性化ウシ胎児血清（FBS）を補充しました。フィーダー細胞として機能するには、AC-6細胞は、γ線を照射している3000ラド（30Gy）1日との共培養の前に、その増殖を防ぐために。注目メンテナンス中に過密放置すれば、AC-6の細胞は、その分化支持能を失う傾向がある、またはその通過数は20を超えている場合。

1. 1ミリリットルダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水（DPBS）と吸引によってDPBSを削除すると1回洗浄AC-6細胞。 37 ^O℃で3~5分間、0.8 mlのトリプシン溶液（0.05％トリプシンおよびDPBSで0.5mMのEDTA）とAC-6細胞を、5％CO _2を処理した後、培養液の10容量にして、それを希釈することによって反応を停止させます単一細胞懸濁液を作ります。
2. 5.9x10のAC-6細胞/ウェルを12ウェルプレートに^4細胞をシードし^{、37°C ​​の} 、5％CO _2、O ​​/ Nでインキュベートします。
   注意：AC-6細胞の密度はのCDC生成を有利に働く低密度として非常に重要です。 ⁴細胞/ウェル5.9x10の密度で播種は、AC-6のCLPからのpDCの導出に最適である次の日、によって密集度に到達することができます。
3. γ-照射を使用して3000ラド（30グレイ）のAC-6細胞を照射します。
   注意：AC-6を照射するために使用される用量は、増殖から細胞を防ぎ、しかものCLPからのDCの分化に必要なサイトカインおよび細胞 - 細胞接触を提供するのに十分に長い生存を保つために最適化されます。
4. 培地を吸引し、1mlの完全RPMI（10％熱不活性化FBS、50μg/ mlのゲンタマイシン、βメルカプトエタノール、50μMを含むRPMI）と交換してください。

マウスから2アイソBM細胞

1. CO _2窒息と頸椎脱臼によりマウスを生け贄に捧げます。解剖トレイにマウスを置き、70％エタノールで滅菌します。半ば腹部に切開を行い、下肢をカバーする皮膚を含むマウスの先端部から皮膚を除去。
2. 半無菌フード内でマウスを解剖。大腿骨と脛骨を解除するには、膝関節以下上記の大腿骨と脛骨をクリップ。はさみを使用して、骨から筋肉を外し、完全RPMI 5ミリリットルを含む6センチペトリ皿に骨を置きます。
3. 無菌培養フードに移動します。完全RPMIで27G針に接続された3ミリリットル注射器を埋めます。はさみを使用して、骨の両端を切断し、静かにそれぞれの端から一度完全RPMIを注入することによって、骨の外に骨髄をフラッシュするために27Gの針を挿入します。
4. 細胞を上下に3-5回、針なし注射器を用いて培養皿で穏やかにピペッティングにより単一細胞懸濁液を準備します。
5. 500×gで5分間、細胞を遠心分離し、上清をデカント。
6. 1ミリリットルACKバッファー（150mMのNH _{4 Clを} 、10 mMのKHCO _3、0.1mMのEDTA）で1分間インキュベートし、完全RPMIの10容量で希釈して反応を停止で溶解赤血球。細胞が重力によって死んだ細胞塊および組織破片をダウンペレット化するために、5分間放置します。
   注意：これは原因で生細胞の沈降に細胞の損失になりますように5分以上を立たないでください。
7. ゆっくりと破片を残して新しいチューブに細胞含有上清をデカント元のチューブ内の背後にあります。
8. その後、上清を除去し、廃棄し、細胞をペレットに500×gで5分間遠心します。
9. 100μlのFACS緩衝液（1×PBS + 2％FBS + 1mMのEDTA）中（通常は4-6×10 ⁷のBM細胞は、1つのマウスから得られる）総BM細胞を再懸濁します。

3のCLPのFACS分析およびソート

1. Fc受容体をブロックするために、1〜2分間抗CD16 / 32（ハイブリドーマ上清クローン2.4G2、50μL/反応または1-2μgの/反応）、FACS緩衝液中の細胞への（ステップ2.9）を追加します。
   注：抗CD16 / 32はまた、顆粒球、単球およびBリンパ球などのFc受容体を発現する細胞に対する抗体の非特異的結合を防止するために添加されたFcブロックと呼ば​​れます。
2. 同時に周囲光を回避し、氷上で15分間（4×10 ⁷細胞）以下の蛍光色素標識抗体で細胞を染色します。抗体：抗CD3を含むPE結合系統マーカー（0.2μgの各）（17A2）、抗CD8（53-6.7）、抗B220（RA3-6B2）、抗CD19（eBio1D3）、抗CD11b（M1 / 70）、抗GR-1（RB6-8C5）、抗Thy1.1（HIS51）、抗NK1.1（PK136）、抗TER119（TER-119）、および抗MHC-II（NIMR-4）、0.2μgの抗c-Kitの-PerCPを-のCy5.5 （2B8）、1μgの抗SCA-1-FITC（D7）、0.4μgの抗M-CSFR-APC（AFS98）、および0.2μgの抗IL-7Rα-PE-Cy7の（A7R34）。
3. 3ミリリットルFACS緩衝液で細胞を洗浄し、500×gで5分間遠心します。
4. 40μMのセルストレーナーを通して300μlのFACS緩衝液およびフィルタ細胞で細胞を​​再懸濁します。
5. 残りの細胞を回収し、同じセルストレーナーを使用してチューブをソートする無菌FACSにフィルタリングするために、追加の100μlのFACS緩衝液でチューブを洗浄します。
6. 信号検出のための適切なフィルタおよび電圧を使用して染色した後すぐにフローサイトメトリー分析を行います。 PE-およびPE-Cy7の-labelded抗体および633nmのラスを検出するために561 nmレーザー、FITC-、PerCPを-のCy5.5標識抗体を検出するために488nmのレーザーを使用してERは、APC標識抗体を検出します。
7. セルソーターを用いて^{、IL-7Rα+（}ステップ3.2で染色されたように） ^-のc-kit ^は int SCA-1 ^INT ​​M-CSFR ^-以下のマーカーLINに従ってソートアウトのCLP。クッションとして完全RPMI 8 mlを含む15mlチューブで選別された細胞を収集します。
8. 実行終了時にセルソーターによって示されるように選別された細胞の絶対数を記録します。一般的に、5×10 ⁴のCLPは1マウスのBMから取得することができます。

4.共培養のCLPとAC-6

1. 、500×gで10分間、ステップ3.7からの選別された細胞を遠心分離し、上清を除去し、5×10 ⁴細胞/ mlの周りに細胞密度を得るために十分な完全RPMIで細胞ペレットを再懸濁します。シード500細胞/ウェルのステップ1.4で調製したフィーダー細胞を含む12ウェルプレートに。
2. 100 ngの追加/ mlのFL ^19（HU-のFlt3L-IgはM.マンツ、Universiによって提供される発現系を使用して、社内で発生しましたTY病院チューリッヒ、スイス）と^37°Cの 、顕微鏡下でのDC開発の定期的な視覚的な監視と_5％CO 2でインキュベートします。
   注：市販の組換えヒトまたはマウスFL FLは、DCの発達をサポートするHU-のFlt3L-Igのための代替物として使用することができます。
3. 12日目に上清中の細胞を収集し、得​​られた上清を組み合わせた0.5ミリリットル完全RPMI培地で1回、ウェルを洗浄します。 0.5ミリリットルに新鮮な培地を追加し、セルスクレーパーで接着細胞をスクラップ。
4. 500×gで5分間の部品や遠心機の両方からの細胞含有培地を組み合わせます。
5. 50μlのFACS緩衝液中で上清をデカントし再懸濁した細胞。 50μlの抗CD16 / 32ハイブリドーマ上清を加え、Fc受容体をブロックするために1~2分間インキュベートします。
6. 列挙し、次抗体（0.05μgの各）抗CD11cの-APC（N418）、抗CD11b-FITCおよび抗B220-PEで、すべての細胞を染色。
7. 洗って説明するように、細胞を遠心分離ステップ3.3でD。
8. 、100μlのFACS緩衝液中で細胞を再懸濁したCD11c ⁺の上のゲートとのCDC（のCD11c ⁺のCD11b ⁺ B220 ^{- ）}のために分析したpDC（CD11cの⁺のCD11b ^- B220 ^+）の^17。

結果

4-6x10 ⁷ BM細胞の総数は、典型的には、大腿骨一6~8週齢の野生型C57BL / 6マウスの脛骨から単離されます。 CLPを整理するには、総BM細胞は、系統マーカー（CD3、CD8、B220、CD19、CD11bの、GR-1、Thy1.1、NK1.1、TER119、およびMHC-II）に対するPE結合抗体で染色され、抗-c-Kitの-PerCPを/ Cy5.5を、抗SCA-1-FITC、抗M-CSFR-APCおよび抗IL-7Rα-PE / Cy7の、分析し、セルソーターでソート。 CLPのための選別戦略は

ディスカッション

ここでは、のCLPの少数から、特にDCの堅牢な世代のためのin vitro培養系を説明し、pDCに。この培養系の独自性は、フィーダーとしてのAC-6細胞、ストローマ細胞株の使用によるものです。このアプローチは、IL-7、SCF、M-CSFおよびFL ²⁰などのサイトカインが、また、DCの発達をサポートするのに必要な細胞-細胞接触²¹だけでなく、提供することが示されています。 AC-6細胞は?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Anti-mouse Ly6g/Ly6c (PE), clone RB6-8C5	Biolegend	108408	linage marker
Anti-mouse NK1.1 (PE), clone PK136	Biolegend	108708	linage marker
Anti-mouse  CD11b (PE), cloneM1/70	Biolegend	101208	linage marker
Anti-mouse CD19 (PE), clone eBio1D3	Biolegend	115508	linage marker
Anti-mouse B220 (PE), clone RA3-6B2	Biolegend	103208	linage marker/FACS
Anti-mouse CD3 (PE), clone 17A2	Biolegend	100308	linage marker
Anti-mouse CD8a (PE), clone 53-6.7	Biolegend	100707	linage marker
Anti-mouse MHC-II (PE), clone NIMR-4	Biolegend	107608	linage marker
Anti-mouse Ter119 (PE), clone TER-119	Biolegend	116208	linage marker
Anti-mouse Thy1.1 (PE), clone HIS51	eBioscience	12-0900-83	linage marker
Anti-mouse M-CSFR (APC), clone AFS98	Biolegend	135510	FACS
Anti-mouse c-Kit (PerCP/Cy5.5), clone 2B8	Biolegend	105824	FACS
Anti-mouse Sca-1 (FITC), clone D7	Biolegend	108106	FACS
Anti-mouse IL-7Ra (PE/Cy7), clone A7R34	Biolegend	135014	FACS
Anti-mouse CD11c (PerCP/Cy5.5), clone N418	Biolegend	117328	FACS
Anti-mouse CD11b (FITC), clone M1/70	Biolegend	101206	FACS
FACSAria III	BD Biosciences		Cell sorter
FACS sorting tube	BD Biosciences	352054
FlowJo	FlowJo LLC		Flow analysis sofrware