JoVE Logo

サインイン

このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。

この記事について

  • 要約
  • 要約
  • 概要
  • プロトコル
  • 結果
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

再現性の高い、高速、かつ効率的に薬理学的シャペロンと呼ばれる「オーファン」薬の新規クラスのテスト前臨床をする需要があります。新規の薬理学的シャペロン薬と同様に、対象となる患者の画面に、高度に標準化、シンプルで汎用性の高い細胞培養技術を用いた試験を行った。

要約

複雑な臨床試験デザイン、コストが高い、低い患者数でリソソーム貯蔵障害 (Lsd) のようなまれなイネの病気を治療するために個人化された薬の使用に挑戦します。何百もの突然変異体の対立遺伝子は、Lsd のほとんどに関与しています。病気は重症度に応じて異なる臨床型を 2、3 に普通分類されます。さらに、遺伝子型の解析は臨床転帰を予測し、患者のケアに通知を助けることができます。そこで、クローン ファブリとポンペ病の突然変異を過剰発現する HEK293H 細胞に基づく単純な細胞培養の試金。似たようなアッセイは、ファブリー病の従順な変異の薬理学的シャペロン療法 (PCT) を識別するために臨床試験として最近導入されています。本稿では、PCT の対象患者を識別するファブリとポンペ病の allelic 変形の迅速な形質の評価を可能にする新規 pharmacochaperones の開発に役立つ可能性があります修正された細胞培養の試金について説明します。

概要

1 ダース ライソゾーム疾患 (Lsd) に関連する主な遺伝子の突然変異の結果として各種グリコシダーゼ機能不全があります。ファブリ (OMIM #301500)、ポンペ (OMIM #232300) 病、1,2,3が報告されている以上 500 と 200 のミスセンス変異で、それぞれ総突然変異数の約 60% に対応します。多数の新しい遺伝子の変形はまだ識別されている、多くの未知の意義。広範な生化学的研究で明らかにGLA遺伝子の完全な損失関数に-に特定の遺伝子がつながらない (OMIM * 300644) ファブリー病が熱力学的に支持された折りたたみ状態4 に到達する失敗に対応する酵素が発生.これは、結果、ER 保存、関数的な酵素の低下を引き起こす。同様の結論は、ポンペ病5を含む他の Lsd で描かれています。さらに、分子酵素変異株については、診断の6LSD の進行が突然変異の性質に基づいて個々 のプロセスであることを示唆している時に突然変異の臨床的な解釈を促進できます。したがって、従来通常 2、3 の異なる臨床型分類は臨床カウンセリングと治療方針の決定を合理化するために再評価されるべき。

酵素補充療法 (ERT) は両方の病気です。ERT はただし、脳や骨格筋などの影響を受ける組織/臓器の効力を制限されています。また、専門家レビュー チームは、その治療効果を損ないます免疫原性の応答を引き出すことができます。薬理学的シャペロン (Pc) は、いわゆる応答性遺伝子変異を有する患者のための魅力的な治療法代わりです。Pc は正しいタンパク質フォールディングと順番防ぐ小胞体 (ER) の保持と小胞体関連分解酵素の安定化のための分子足場として機能します。また、Pc は経口的に投与することができます、可能性のある血液脳関門を通過することができます。したがって、PCT は、特定の遺伝子を持つ患者を治療するためのより現実的なオプションかもしれません。Lsd で PC アプリケーションの広範なレビュー、Parenti7によって優秀なレビューを参照してください。

何百もの突然変異体の対立遺伝子を引き起こす病気の発見は、前臨床薬物検査に挑戦し、従順な患者個別化医療のアプローチのための単純な高速で、高度に標準化された評価が必要になります。LSD 遺伝子突然変異の有害な影響を評価するために、PCT の従順な患者を予測する候補者突然変異をテストするのには、高速かつ信頼性の高い酵素活性測定できる HEK293H 細胞で過剰発現の高い標準化されたシステムだった開発しました。同様の過剰発現システムは、ファブリとポンペ病 COS 78,9,1011、HeLa 細胞12HEK293 のいずれかを使用して以前記載されている13 ,14,15,16糖加水分解遺伝子の細胞。

非常に同じような方法は「疾患の薬理学的シャペロン治療へ反応を予測する方法」として特許を取得されても17セルの関連性を示す文化システム臨床実践に統合されることができます。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

プロトコル

1. 変異体 pcDNA3.1/GLA および pcDNA3.1/GAA 構造の作製

注: GLAおよびGAA塩基配列 (cd) のクローニングの戦略は、報告された以前15,18をされています。

  1. サイト指示された突然変異誘発を使用してサイト指示された突然変異誘発
    1. 使用参照シーケンス NM_000169.2 と NM_000152.4 GLAおよびGAAの遺伝子の突然変異誘発のためのテンプレートとしてそれぞれ。センスとアンチセンスのプライマーを個別に突然変異を導入する長さ中央それぞれのシーケンスの修正の 1 つを運ぶ商業プロバイダーによって合成高純度塩無料プライマー (25-37-mers) のセットがあります。無料プライマー設計ツールを使用してプライマー デザイン19をサポートします。
    2. 反応混合物を反応液の標準的条件と、製造元から提供された PCR 条件を使用します。
      1. ミックス 5 μ L 反応バッファー、10 x 10 の二重鎖テンプレート プラスミド (pcDNA3.1/GLA または pcDNA3.1/GAA) の ng 125 各プライマーの ng、提供 dNTP の混合物の 1 μ L、3 μ L の脱イオン水 (最終反応ボリュームの適切なボリュームで DMSO 試薬: 50 Μ L)。最後に、2.5 U の DNA ポリメラーゼを追加し、上下にピペッティングで混ぜます。ネガティブ コントロールとしてのプライマーのサンプルに沿って運ぶ。
    3. 次のプログラムを使用して PCR を開始: 1:95 ° C 1 分ステップ 50 2:95 ° C、s、ステップ 3時 60分 50 ° C s、ステップ 4:68 ° C で 8 分、18 回手順 2-4 を繰り返し、ステップ 5:68 ° C で 10 分間。
      1. PCR、 Dpnの 1 μ L を追加します私制限酵素 (10 U/μ L) とさらに 1 h の 37 ° C で反応、バイアルを孵化させなさい。
  2. 変換および目的のクローンのスクリーニング
    1. 製造元の推奨事項に従って ultracompetent 細胞の因数を変換します。使用 SOC 培地 (トリプトン 2% (w/v)、酵母エキス 0.5% (w/v)、塩化ナトリウム 10 mM KCl 2.5 mM、121 ° C で滅菌、MgCl2 10 および 20 の mM の最終濃度までブドウ糖の無菌ろ過ソリューションをそれぞれ追加) メーカーの代わりに媒体。手順の後 LB のサンプルの突然変異のプレート 250 μ L プレート含む 100 μ g/mL アンピシリンと 18 h の 37 ° C で孵化させなさい。
    2. 確実に形質転換体数 > 10 と反応の結果は少なくとも 3 倍多く植民地にプライマーなしコントロールの反応は、例えば、発光プレートを使用してコロニー カウントを容易にします。3 コロニーをピックアップし、流体培養基 LB 培地で一晩培養 3 mL を準備します。
    3. 次の日は標準的なキットでプラスミッドの準備を行い T7 を使用してシーケンス全体を分析 (5ʹ TAA TAC GAC TCA CTA タグ GG-3ʹ) 標準サンガー経由 (5ʹ タグ AAG GCA CAG TCG AGG-3ʹ) bghr あるプライマーの配列。
    4. 分子生物学の適切なツールを使用して、シーケンスを分析します。望ましい突然変異が検出された場合、さらにシーケンス NM_000169.2 (α-ガラクトシダーゼ A) と比較して異常なしまたは NM_000152.4 (酸性 α-グルコシダーゼ) を見て、トランスフェクション グレード プラスミッドの浄化のためのクローンを選択します。
    5. 分光光度計で吸光度を測定することによって DNA の純度を決定します。
      注: 許可の 260/280 吸光度比を持つプラスミドの純度をもたらす準備のみ > 1.8 細胞培養します。

2. HEK293H 細胞の培養

  1. 高グルコース (4.5 g/L) Dulbecco´s Modified イーグル培 (DMEM) 10% 牛胎児血清 (FBS) と 1% ペニシリン/ストレプトマイシンの HEK293H 細胞を維持します。セルをおいて、5% CO2雰囲気下で 37 ° c の定温器を water-jacket。
  2. 80-90% の密度に細胞を養います。
  3. 培地を吸引し、生理食塩水 (PBS) Ca2 +と Mg2 +なしをバッファリングされるリン酸を使用してを洗ってください。
  4. 0.05% を追加することにより通路トリプシン-EDTA し 37 ° C、5% CO2で 5 分間インキュベートします。
  5. 恒久的な文化を維持するために新しい T75 フラスコに新鮮な媒体および種子内のセル 1:15 を分割します。以上 25 通路でセルを使用しないでください。

3. pcDNA3.1/GLA と pcDNA3.1/GAA プラスミド トランスフェクションと HEK293H 治療

  1. 24 時間、トランスフェクション前は、Ca2 +Mg2 +を持つ PBS で一度コート t75 フラスコ細胞培養用フラスコの HEK293H セルを洗浄します。収穫の 10% を 500 μ l 添加 DMEM 培を使用して 24 よく培養プレートの空洞中 0.05% トリプシン-EDTA 上記細胞と種子 1.5 x 105 FBS 抗生物質なし。
  2. 製造元のマニュアルによるとトランスフェクション プロトコルを実行します。通常、無血清 DMEM の 100 μ L に 1 μ g のプラスミド DNA とトランスフェクション試薬の 2.5 μ L の混合物を使用します。室温で 20 分間インキュベートし、その後伝の方法でセルに追加します。
  3. 37 °C/5% CO2で 4 時間の期間の後のトランスフェクション試薬を含む培地を取り除き、10% 新鮮な DMEM を 500 μ l 添加 FBS/1% ペニシリン/ストレプトマイシン。
    注: この手順では、1-Deoxygalactonojirimycin 塩酸塩 (DGJ) または塩酸 1 ‐ デオキシノジリマイシン (DNJ) 可能性がありますに追加培意図した場所 (20 μ M の最終濃度を得るために 10 mM の水性原液を使用 DGJ、DNJ).新鮮な DGJ または DNJ は、プラスミド トランスフェクション後 42 h を追加しました。

4. 細胞収穫と α-ガラクトシダーゼ A または酸性 α-グルコシダーゼ活性の測定

  1. セル収穫
    1. 収穫の日、インキュベーターからセルを削除し、培地を吸引します。Ca2 +と Mg2 +を PBS で 2 回細胞を慎重に洗います。
      注: DGJ と DNJ は、それぞれ α-ガラクトシダーゼの α-グルコシダーゼ阻害剤と残ったテストが無効になるために、この手順は重要です。
    2. セルの上に直接脱イオン水の 200 μ L を追加します。リンスのプレートから細胞と 1.5 mL の反応管にそれらを転送します。
  2. 凍結融解による均質化
    1. 適切な泡ラックと 5 の渦にサンプルを置く s、換散をより効率的に。交互に 10 の液体窒素でサンプルを置く s と解凍が完了 (5 分) になるまで室温水のお風呂に。
    2. 5 回この手順を繰り返すし、10,000 × g で 5 分間のサンプルをスピンします。
上澄みと新しい反応管にピペットを保持します。
  • ビシンコニン酸 (BCA) アッセイを用いた蛋白質の集中の決定
    1. 各サンプルについては 40 μ L の脱イオン H2O を含む新鮮なチューブを準備し、10 μ L のサンプルを追加します。ボルテックスによって簡単にソリューションをミックスし、96 well プレート (各 3 通サンプル) の空洞に 10 μ L を転送します。脱イオン H2O 標準曲線を取得する次のように 2 mg/mL ウシ血清アルブミン (BSA) 原液を希釈: 50 μ L H2O/50 μ L BSA;60 μ L H2O/40 μ L BSA;70 μ L H2O/30 μ L BSA;80 μ L H2O/20 μ L BSA;90 μ L H2O/10 μ L BSA;100 μ L H2o.
    2. BCA 試薬 200 μ L を追加することによって、反応を開始 (試薬 A と試薬 B は 50: 1 の比率で混合) し軌道シェーカー (300 の rpm) に若干の動揺の下で 37 ° C で暗闇の中で 1 時間インキュベートします。560 で吸光度を測定プレート リーダーで nm。
      注: サンプルは通常 1 μ L あたり 1.5 μ g タンパク質間含まれています。
  • 人工 - メチルウンベリフェリルグリコシド基板 (4 マグカップ) 酵素活性の測定
    1. (Α-ガラクトシダーゼ A) の 0.05 または (酸性 α-グルコシダーゼ) の 0.5 μ g/μ L タンパク質ソリューションを取得する新鮮な 1.5 mL 反応管にピペットで移しなさい各サンプルの計算量を希釈します。渦 5 s をもう一度と、96 にこの希釈ピペット 10 μ L のサンプルはウェル プレート (重複の各サンプル)。
    2. それぞれの基質溶液 20 μ L を追加することで反応を開始します。
      Α-ガラクトシダーゼ a: 2 mM 4-Methylumbelliferyl-α-D-ガラクトピラノシド (4 MU gal) 0.06 M リン酸クエン酸バッファー pH 4.7 に。
      酸性 α-グルコシダーゼの: 2 mM-メチルウンベリフェリルグリコシド α-d-グルコピラノシド (4-MU-glu) 0.025 M 酢酸ナトリウム, pH 4.0 で。
    3. 1 h 軌道シェーカー (300 の rpm) に若干の動揺の下で 37 ° C で暗闇の中での酵素反応を孵化させなさい。1.0 M、pH 10.5 調整グリシン-水酸化ナトリウム緩衝の 200 μ L 添加による反応を停止させます。
    4. 4-メチルウンベリフェロン (4 MU) 0.01 mg/mL の在庫からの標準曲線を次のとおり準備します。
      100 μ L H2O/いいえ 4 MU;80 μ L H2O/20 μ L 4 MU;60 μ L H2O/40 μ L 4 MU;40 μ L H2O/60 μ L 4 MU;20 μ L H2O/80 μ L 4 MU;H2O/100 μ L 4 MU、96 ウェルに各希釈ピペット 10 μ L (重複) のプレート、ボリュームと pH を調整するために各ウェルに 1.0 M 水酸化ナトリウム、グリシン緩衝の 200 μ L を追加。
    5. 蛍光リーダーの酵素活性測定は適切なフィルター セットを搭載した、蛍光リーダー デバイスの適切なソフトウェアを使用してデータを分析します。
      注: 両方 4 マグカップ基板 4 mu α-ガラクトシダーゼ A または酸性 α-グルコシダーゼに露光中に削減されます。リリース 4 MU は、測定できる 360 と 465 nm 励起と放射の波長, マイクロ プレート蛍光リーダーを使用して螢光色素です。
  • Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

    結果

    突然変異誘発の手順
    GLA遺伝子突然変異誘発性を評価するために突然変異は次のカテゴリの 1 つに分類されました。突然変異を生成するこの方法では、 GLAの突然変異の約 66.5% が最初の試行で得られたことを明らかにしました。さらに 25% をわずかに変更された第 2 PCR 後取得でした。

    カテゴリー...

    Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

    ディスカッション

    記載プロトコルは、代謝の遺伝性ライソゾーム病の酵素損傷評価のための強力な結果を提供します。この原稿は、議定書の改正発行以前15です。最も重要な変更を伴う逼迫 (すなわち、ベクター構築準備の過程で)、(すなわち、HEK293H 細胞のメンテナンス、トランスフェクション条件)、細胞培養のプロトコル、高の標準化結果の再現性に著しく貢献した実験繰り?...

    Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

    開示事項

    著者は、彼らは競合する金銭的な利益があることを宣言します。

    謝辞

    著者は、優れたテクニカル サポートのマンディ Loebert とティナの Czajka を認めたいと思います。編集のヘルプ言語ありがとうフローラ羅 (ハーバード大学医学部、ボストン、マサチューセッツ州、米国)。

    Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

    資料

    NameCompanyCatalog NumberComments
    Material
    QuikChange II XL Site-Directed Mutagenesis Kit Stratagene, La Jolla, CA, USA#200522
    Primer GLA[R301Q]-frw: 5´- CTA ATG ACC TCC AAC ACA TCA GCC C-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GLA[R301Q]-rev: 5´- GGG CTG ATG TGT TGG AGG TCA TTA G-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GLA[A156V]-frw: 5´-CTA CGA CAT TGA TGT CCA GAC CTT TGC TG-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GLA[A156V]-rev: 5´-CAG CAA AGG TCT GGA CAT CAA TGT CGT AG-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GLA[A156V]-frw: 5´-GGA AAT AAA ACC TGC ACA GGC TTC CCT GGG A-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GLA[A143T]-rev: 5´-TCC CAG GGA AGC CTG TGC AGG TTT TAT TTC C-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GAA[F455Y]-frw: 5´-CTG CCG GGA GCT TCA GGC CCT ACG A-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GAA[F455Y]-rev: 5´-TCG TAG GGC CTG AAG CTC CCG GCA G-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GAA[P545L]-frw: 5´-CAC CCT ACG TGC TTG GGG TGG TTG G-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GAA[P545L]-rev: 5´-CCA ACC ACC CCA AGC ACG TAG GGT G-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GAA[L552P]-frw: 5´-TTG GGG GGA CCC CCC AGG CGG CCA C-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer GAA[P545L]-rev: 5´-GTG GCC GCC TGG GGG GTC CCC CCA A-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer T7: 5´-TAA TAC GAC TCA CTA TAG GG-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    Primer BGHrev: 5´-TAG AAG GCA CAG TCG AGG-3´MWG Eurofins Operon, Ebersberg, Germanyn.a.
    TryptoneCarl Roth, Karlsruhe, Germany8952.1
    Yeast ExtractMerck, Darmstadt, Germany103,753
    Sodium chlorideMerck, Darmstadt, Germany1,064,041,000
    Potasium chlorideMerck, Darmstadt, Germany1,049,360,500
    MgCl2 x 6H2OMerck, Darmstadt, Germany1,058,330,250
    D (+)-Glucose monohydrateMerck, Darmstadt, Germany1,083,422,500
    Sodium HydroxideMerck, Darmstadt, Germany1,064,980,500
    GlycineCarl Roth, Karlsruhe, Germany3908.2
    Citric acidCarl Roth, Karlsruhe, GermanyX863.3
    disodium hydrogen phosphateMerck, Darmstadt, Germany1,065,860,500
    Sodium acetateMerck, Darmstadt, Germany1,062,640,050
    Glacial acetic acidSigma Aldrich, Munich, GermanyA6283
    LB AgarCarl Roth, Karlsruhe, GermanyX969.2
    LB MediumCarl Roth, Karlsruhe, GermanyX968.2
    Zyppy Plasmid Miniprep KitZymoResearch, Freiburg, GermanyD4020
    QIAfilter Plasmid Midi KitQiagen, Hilden, Germany12245
    HEK293H cell lineInvitrogen, Karlsruhe, Germany11631-017 
    Dulbecco´s Modified Eagle Medium Invitrogen, Karlsruhe, Germany31966-047
    HyClone fetal bovine serum GE Healthcare, South Logan, Utah, USASV30160.03
    Penicillin/streptomycinInvitrogen, Karlsruhe, Germany15140-122
    CELLSTAR Standard Cell Culture Flasks, Greiner Bio OneVWR International GmbH, Hannover, Germany82050-854
    Cell culture plates (24 well)Sarstedt, Nümbrecht, Germany831,836
    Cellstar 96 well plateGreiner bio one, Frickenhausen, Germany655185
    SafeSeal reaction tubes, 1,5mL Sarstedt, Nümbrecht, Germany72,706
    Lipofectamine 2000Invitrogen, Karlsruhe, Germany11668-019
    1-Deoxygalactonojirimycin Hydrochloride Sigma Aldrich, Munich, GermanyD9641
    1-Deoxygalactonojirimycin Hydrochloride Toronto Research Chemicals, Toronto, CanadaD236500
    1-Deoxynojirimycin Sigma Aldrich, Munich, GermanyD9305
    PBS Dulbecco w/o Calcium, w/o MagnesiumBiochrom, Berlin, GermanyL 1825
    Trypsin-EDTA (0.05%), phenol redThermo Scientific, Braunschweig, Germany25300054
    Pierce BCA Protein Assay KitThermo Scientific, Braunschweig, Germany23225
    4-MethylumbelliferoneSigma Aldrich, Munich, GermanyM1381
    4-Methylumbelliferyl α-D-galactopyranosideSigma Aldrich, Munich, GermanyM7633
    4-Methylumbelliferyl α-D-glucopyranosideSigma Aldrich, Munich, GermanyM9766
    NameCompanyCatalog NumberComments
    Equipment
    incubator type T6Heraeus Instruments, Hanau, Germanyn.a.
    Luminous Plate Gr. 2 ECarl Roth, Karlsruhe, GermanyP265.1
    3130 xl Genetic Analyzer Applied Biosystems, Darmstadt, Germanyn.a.
    GFL-3032 bacterial shakerGFL, Burgwedel, Germany n.a.
    Avanti J-25 centrifugeBeckman/Coulter, Krefeld, Germanyn.a.
    Ultraspec 3100 pro SpectrophotometerAmersham Biosciences, Buckinghamshire, United Kingdomn.a.
    water-jacket incubator Binder, Tuttlingen, Germanyn.a.
    Vortex Genie 1 touch mixerScientific Industries, Bohemia, NY, USAn.a.
    Z 233 MK-2 refrigerated microtube centrifugeHermle, Tuttlingen, Germany n.a.
    LaboStar ultrapure water deviceSiemens, Berlin, Germanyn.a.
    Thermo Shaker PST-60HL-4 orbital shakerBiosan, Riga, Latvian.a.
    Tecan GENios ReaderTecan, Männedorf, Switzerlandn.a.
    HI 223 Microprocessor pH MeterHANNA Instruments, Arvore, Portugaln.a.
    CASY
    Cell Counter + Analyser System
    Model TT
    Innovatis AG, Cham/Zug, Switzerland
    NameCompanyCatalog NumberComments
    Software
    Magellan data analysis software v6.6Tecan, Männedorf, Switzerlandn.a.
    GraphPad Prism 5.04GraphPad Software, Inc., La Jolla, CA; USAn.a.
    Microsoft Office 2010Microsoft Corporation, Redmond, WA, USAn.a.
    BioEdit Alignment Editor, V7.0.1http://www.mbio.ncsu.edu/bioedit/bioedit.htmln.a.
    Abbreviations
    frw = forward; rev = reverse
    n.a. = not applicable

    参考文献

    1. Cardiff University. , http://www.hgmd.cf.ac.uk/ac/index. (2017).
    2. Meiji Pharmaceutical University. , http://fabry-database.org (2017).
    3. Erasmus Medical Center. Mutations In Human Acid Alpha-Glucosidase. , http://cluster15.erasmusmc.nl/klgn/pompe/mutations.html?lang=en (2017).
    4. Ishii, S., et al. Mutant alpha-galactosidase A enzymes identified in Fabry disease patients with residual enzyme activity: biochemical characterization and restoration of normal intracellular processing by 1-deoxygalactonojirimycin. Biochem J. 406, 285-295 (2007).
    5. Tajima, Y. Structural and biochemical studies on Pompe disease and a "pseudodeficiency of acid alpha-glucosidase". J Hum Genet. 52, 898-906 (2007).
    6. Lukas, J. Functional and Clinical Consequences of Novel α-Galactosidase A Mutations in Fabry Disease. Hum Mutat. 37, 43-51 (2016).
    7. Parenti, G. Treating lysosomal storage diseases with pharmacological chaperones: from concept to clinics. EMBO Mol Med. 1, 268-279 (2009).
    8. Yasuda, M. Fabry disease: characterization of alpha-galactosidase A double mutations and the D313Y plasma enzyme pseudodeficiency allele. Hum Mutat. 22, 486-492 (2003).
    9. Shimotori, M., Maruyama, H., Nakamura, G., Suyama, T., Sakamoto, F., Itoh, M., Miyabayashi, S., Ohnishi, T. Novel mutations of the GLA gene in Japanese patients with Fabry disease and their functional characterization by active site specific chaperone. Hum Mutat. 29, 331(2008).
    10. Andreotti, G., et al. Therapy of Fabry disease with pharmacological chaperones: from in silico predictions to in vitro tests. Orphanet J Rare Dis. 6, 66(2011).
    11. Khanna, R. The pharmacological chaperone AT2220 increases the specific activity and lysosomal delivery of mutant acid alpha-glucosidase, and promotes glycogen reduction in a transgenic mouse model of Pompe disease. PLoS One. 9, e102092(2014).
    12. Siekierska, A. α-Galactosidase aggregation is a determinant of pharmacological chaperone efficacy on Fabry disease mutants. J Biol Chem. 287, 28386-28397 (2012).
    13. Parenti, G. Pharmacological enhancement of mutated alpha-glucosidase activity in fibroblasts from patients with Pompe disease. Mol Ther. 15, 508-514 (2007).
    14. Wu, X. A pharmacogenetic approach to identify mutant forms of α-galactosidase A that respond to a pharmacological chaperone for Fabry disease. Hum Mutat. 32, 965-977 (2011).
    15. Lukas, J. Functional characterisation of alpha-galactosidase a mutations as a basis for a new classification system in fabry disease. PLoS Genet. 9, e1003632(2013).
    16. Andreotti, G., Citro, V., Correra, A., Cubellis, M. V. A thermodynamic assay to test pharmacological chaperones for Fabry disease. Biochim Biophys Acta. 1840, 1214-1224 (2014).
    17. , https://www.google.ch/patents/US9095584 (2017).
    18. Lukas, J., et al. Enzyme enhancers for the treatment of Fabry and Pompe disease. Mol Ther. 23, 456-4564 (2015).
    19. , http://www.genomics.agilent.com/primerDesignProgram.jsp (2017).
    20. Yam, G. H., Bosshard, N., Zuber, C., Steinmann, B., Roth, J. Pharmacological chaperone corrects lysosomal storage in Fabry disease caused by trafficking-incompetent variants. Am J Physiol Cell Physiol. 290, C1076-C1082 (2006).
    21. Shin, S. H., et al. Screening for pharmacological chaperones in Fabry disease. Biochem Biophys Res Commun. 359, 168-173 (2007).
    22. Shin, S. H., et al. Prediction of response of mutated alpha-galactosidase A to a pharmacological chaperone. Pharmacogenet Genomics. 18, 773-7780 (2008).
    23. Filoni, C., et al. Functional studies of new GLA gene mutations leading to conformational Fabry disease. Biochim Biophys Acta. 1802, 247-252 (2010).
    24. Citro, V. The Large Phenotypic Spectrum of Fabry Disease Requires Graduated Diagnosis and Personalized Therapy: A Meta-Analysis Can Help to Differentiate Missense Mutations. Int J Mol Sci. 17, (2016).
    25. Cammisa, M., Correra, A., Andreotti, G., Cubellis, M. V. Fabry_CEP: a tool to identify Fabry mutations responsive to pharmacological chaperones. Orphanet J Rare Dis. 8, 111(2013).
    26. Leinekugel, P., Michel, S., Conzelmann, E., Sandhoff, K. Quantitative correlation between the residual activity of beta-hexosaminidase A and arylsulfatase A and the severity of the resulting lysosomal storage disease. Hum Genet. 88, 513-523 (1992).
    27. Germain, D. P. Safety and pharmacodynamic effects of a pharmacological chaperone on α-galactosidase A activity and globotriaosylceramide clearance in Fabry disease: report from two phase 2 clinical studies. Orphanet J Rare Dis. 7, 91(2012).
    28. Hughes, D. A., et al. Oral pharmacological chaperone migalastat compared with enzyme replacement therapy in Fabry disease: 18-month results from the randomised phase III ATTRACT study. J Med Genet. 54, 288-296 (2017).
    29. Parenti, G., Andria, G., Valenzano, K. J. Pharmacological Chaperone Therapy: Preclinical Development, Clinical Translation, and Prospects for the Treatment of Lysosomal Storage Disorders. Mol Ther. 23, 1138-1148 (2015).
    30. Parenti, G., et al. A Chaperone Enhances Blood α-Glucosidase Activity in Pompe Disease Patients Treated With Enzyme Replacement Therapy. Mol Ther. 22, 2004-2012 (2014).

    Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

    転載および許可

    このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します

    許可を申請

    さらに記事を探す

    130

    This article has been published

    Video Coming Soon

    JoVE Logo

    個人情報保護方針

    利用規約

    一般データ保護規則

    研究

    教育

    JoVEについて

    Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved