蛍光バイオセンサーの動態とホルモン分泌プロファイルの同期評価のためのヒト偽島システム

要約

このプロトコルは循環アデノシンの一リン酸塩(cAMP)の生物センサー、 その場 (cADDis)のcAMPの相違の探知器のアデノウイルス配達を使用して細胞内シグナリングでき事およびインシュリンおよびグルカゴンの分泌およびmicroperifusionシステムの同時獲得そしてco登録のための方法を記述する。

要約

ランゲルハンス膵島は、膵臓全体に点在する特殊な内分泌細胞と支持細胞の小さな3Dコレクションであり、血糖値を下げるベータ細胞によるインスリンの分泌と、血糖値を上昇させるアルファ細胞によるグルカゴンの分泌を介して、グルコースホメオスタシスの制御に中心的な役割を果たしています。cAMPによって媒介されるものを含む細胞内シグナル伝達経路は、アルファ細胞およびベータ細胞ホルモンの分泌調節に重要です。3D膵島構造は、協調的な膵島機能に不可欠ですが、初代ヒト膵島細胞における細胞内シグナル伝達経路の機構研究には実験上の課題があります。これらの課題と制限を克服するために、このプロトコルでは、形態、組成、および機能において天然の膵島に類似している糖尿病のないドナーから生成された一次ヒト偽膵島を使用して、統合された生細胞イメージングおよびマイクロ流体プラットフォームについて説明します。これらの偽膵島は、初代ヒト膵島細胞の分散および再凝集プロセスを通じてサイズ制御されます。分散状態では、膵島細胞の遺伝子発現を操作し得る。例えば、遺伝子コードされたcAMPバイオセンサ、cADDisなどのバイオセンサを導入することができる。いったん形成されると、遺伝子にコードされたバイオセンサーを発現する偽膵島は、共焦点顕微鏡および微小周融合プラットフォームと組み合わせることで、蛍光バイオセンサーの動態とアルファ細胞およびベータ細胞ホルモン分泌プロファイルの同期評価を可能にし、細胞のプロセスと機能に関するより多くの洞察を提供します。

概要

ランゲルハンス島は、膵臓全体に散らばる小さな器官であり、その機能はグルコースの恒常性の維持に不可欠です。インスリンは、グルコースの代謝、ATP/ADP比の増加、ATP感受性カリウムチャネルの閉鎖、原形質膜の脱分極、および細胞外カルシウム^の流入に続いてベータ細胞から分泌されます1。アルファ細胞からのグルカゴン分泌はあまり理解されていませんが、細胞内およびパラクリン経路がグルカゴン顆粒エキソサイトーシスに寄与すると仮定されています^2,3,4。1型糖尿病と2型糖尿病はどちらも膵島細胞機能障害と関連しています^5,6,7。したがって、膵島ホルモン分泌を媒介する細胞内シグナル伝達経路の解明は、膵島における生理的・病態学的メカニズムの理解に不可欠です。

小島の球状構造は、実験に一定の障害をもたらします。これらの課題には、膵島サイズのばらつきや、膵島コア内のウイルス形質導入を減少させる膵島の3D特性が含まれる^8,9。これらの課題を克服するために、初代ヒト膵島を単一細胞に分散させ、目的の標的をコードするコンストラクトでアデノウイルス形質導入し、再凝集して偽島と呼ばれるサイズ制御された膵島様構造を形成する偽膵島系が開発^{されました7。}並行して培養された同じドナー由来の天然膵島と比較すると、これらの偽膵島は形態、内分泌細胞組成、および^{ホルモン分泌において}類似している7。この方法は、偽膵島全体に構築物を発現させることを可能にし、初代ヒト膵島の均一な遺伝子操作に対する以前の障壁を克服することを意味する^7,8,9。

このプロトコルでは、pseudoisletシステムはmicrofluidic装置と第一次人間の膵島のセルのbiosensorsを表現し、動的perifusion^10,11,12の間にpseudoisletホルモンの分泌の一時的な決断を得るために統合される。偽膵島はマイクロチップ内に配置され、蠕動ポンプ¹²を介して異なる分泌促進物質の安定した流れに曝露される。マイクロチップは透明なガラス底を持ち、共焦点顕微鏡に取り付けられ、バイオセンサーの蛍光強度の変化を介して細胞内シグナル伝達の動態を記録します。バイオセンサーイメージングは、インスリンおよびグルカゴン分泌のその後の分析のために、微小周融合廃液の収集と同期^{されます7。}大半融合と比較して、この微小半周融合アプローチは、大周輸チャン^バー7と比較してマイクロ流体デバイスの体積が小さいため、使用する偽膵島が少なくて済む。

このシステムの有用性を活用するために、環状アデノシン一リン酸(cAMP)差分検出器 in situ (cADDis)バイオセンサーをヒト偽島で発現させ、cAMPの動態とホルモン分泌を評価しました。cADDisバイオセンサーは、cAMP 2(EPAC2)によって活性化された交換タンパク質のヒンジ領域に配置され、その調節領域と触媒領域をつなぐ円形に順列された緑色蛍光タンパク質(cpGFP)で構成されています。cAMPがEPAC2の調節領域に結合すると、ヒンジ領域の立体構造変化が誘発され、cpGFPからの蛍光が増加します¹³。cAMPなどの細胞内メッセンジャーは、Gタンパク質共役受容体の上流活性化後にインスリンおよびグルカゴン分泌を誘発する¹⁴。生細胞イメージングと微小ペリフュージョンを組み合わせることで、細胞内のcAMP動態と膵島ホルモン分泌を結びつけることができます。具体的には、このプロトコルでは、cADDis表現のpseudoisletsはさまざまな刺激にアルファおよびベータセルのcAMPの応答を監視するために生成される: 低いブドウ糖(2 mMブドウ糖;G 2)、高グルコースとイソブチルメチルキサンチン(IBMX;20 mMグルコース + 100 μM IBMX;G 20 + IBMX)、および低グルコースとエピネフリン(Epi;2 mMグルコース + 1 μM Epi;G 2 + エピ)。この処理ワークフローにより 、1) IBMXを介したホスホジエステラーゼ阻害により、細胞内のcAMPレベルの分解を防ぐこと、および2)βアドレナリン受容体の活性化によって媒介されるアルファ細胞グルカゴン分泌の既知のcAMP依存性刺激剤であるエピネフリンを介して、細胞内のcAMP動態を直接評価できます。生細胞イメージング実験用のマイクロペリフュージョン装置のセットアップ、マイクロチップへの偽膵島の装填、同期生細胞イメージングおよびマイクロペリフュージョン、およびマイクロプレートベースのホルモンアッセイによるバイオセンサーの痕跡およびホルモン分泌の分析のステップを以下に詳述する。

プロトコル

ヒト膵島(N = 4製剤)は、Integrated Islet Distribution Program、Human Pancreas Analysis Program、Prodo Laboratories, Inc.、およびImagine Pharmaとのパートナーシップを通じて入手しました。ヴァンダービルト大学の治験審査委員会は、匿名化されたヒト膵臓標本をヒト被験者の研究とは見なしません。この活動は、臓器提供者やその家族、臓器調達団体の協力なくしては成り立ちません。ドナーの人口統計情報については、 表1 を参照してください。糖尿病のない膵臓ドナーからのヒト膵島は、15時間未満の寒冷虚血時間で単離されました。

1. 偽膵島形成(詳細はWalker et al.⁷)

1. 膵島培養培地の外側の表面でピペットチップを汚染しないように細心の注意を払いながら、P200ピペットと卓上顕微鏡を使用して初代ヒト膵島を採取し、手摘みします(CMRL 1066中の10%FBS、100 μg/mLストレプトマイシン、100 U/mLペニシリン、2 mM L-グルタミン)。
2. 初代膵島を15 mLチューブに移し、コンタミネーションを防ぐために組織培養フードの下で以下の偽膵島形成ステップをすべて実行します。0.025%トリプシン中のP1000ピペットを使用して、室温で7分間一次膵島をゆっくりと解離します。膵島がバラバラになり始めると、溶液は不透明になります。
   1. これらの研究では、直径約200μmの200〜300個の手摘みされた一次膵島を500μLの0.025%トリプシンに分散させると、偽島嶵の96ウェルプレートが1〜2枚得られます。正確な数は、平均的な膵島の大きさと生存率によって異なる場合があります。>500 個の初代膵島については、0.025% トリプシンの容量を 1:1 の比率でスケールアップします(例:600 個の手摘みした膵島に対して 0.025% トリプシン 600 μL)。
3. 使用したトリプシンの量と同量のヴァンダービルト疑似島培地(VPM)を添加して、分散液をクエンチします。その後、1 mL の VPM で 2 回洗浄します。洗浄の場合は、分散した細胞を485 x g で4°C、4〜3分間、卓上遠心分離機で遠心分離します。細胞を規定量のVPM(通常1 mL)で再懸濁し、計数します。
   注:疑似膵島生成およびVPM組成は、先行刊行物⁷に詳述されている。簡単に説明すると、VPMには、同量の濃縮CMRL培地(20%FBS、100μg/mLストレプトマイシン、100U/mLペニシリン、1mMピルビン酸ナトリウム、2mMグルタマックス、CMRL 1066中の2mMHEPES)およびiEC-培地(VEGF培地コンプリートキットからFBS+内皮細胞培地サプリメント1本を差し引いたもの)が含まれています。擬似島生成の概略図を 図1Aに示します。
4. 10 μL のトリパンブルーと 10 μL の細胞懸濁液を混合して、自動セルカウンターを使用して細胞数と生存率を測定します。細胞懸濁液をよく混合して、正確な細胞数を確保します。
5. 必要な数の偽膵島に必要な細胞懸濁液、ウイルス、およびVPMの量を計算します。すべての計算は、ステップ1.4で得られた生細胞数に基づいて行います。
   1. これらの研究では、MOI 500(N = 1)または1,000(N = 2)で分散したヒト膵島細胞をAd-CMV-cADDisで総容量500 μLで形質導入します。形質導入した偽膵島(2,000細胞/偽膵島)の1プレートで、ドナー1人あたり3回の技術的複製(32の偽膵島/実験)が得られます。アデノウイルスは、この研究で商業的に入手された。
6. 計算した量の細胞懸濁液、ウイルス、VPMを1.5 mLのチューブに混ぜ合わせます。ピペッティングで上下させて内容物を静かに混合します。
7. 形質導入中は、チューブをオープンキャップでインキュベートし、37°C、5% CO 2/95%空気の組織培養インキュベーターで滅菌シャーレで₂時間覆います。
8. 各チューブに500 μLのVPMを加え、4°Cで3分間、500 x g で遠心分離して細胞を洗浄します。 さらに2回の洗浄を完了し、合計3回の洗浄を行います。上清を吸引し、細胞を 1 mL の VPM に再懸濁します。
9. 総細胞播種量(200 μL/偽島)を計算します。VPM(計算された細胞播種量から2 mLを引いたもの)を適切なサイズのコニカルチューブに加えます。ステップ1.7の形質導入細胞懸濁液をコニカルチューブに加えます。円錐形のチューブを少し閉じたままにしますが、セルの空気交換を可能にするためにしっかりと閉じないでください。
10. 1.5 mLのチューブ(ステップ1.7から)を1 mLのVPMで洗い流し、内容物をコニカルチューブに移し、その時点でコニカルチューブに総細胞播種量が含まれているはずです。
11. 電動血清ピペットでピペッティングしてコニカルチューブの内容物をよく混合し、内容物を滅菌試薬リザーバーに移します。リザーバーが細胞播種量全体を保持していない場合は、連続転写を行い、各ステップで懸濁液が十分に混合されていることを確認します。
12. マルチチャンネルP200ピペットを使用して、試薬リザーバー内の細胞懸濁液を3〜4回上下にピペットで固定して均質性を確保し、次に200 μLの細胞懸濁液をマイクロウェルプレートの各ウェルにピペットで移します。
13. 偽島を組織培養インキュベーターで37°C、5% CO₂/95%空気で培地を変化させずに6日間インキュベートします。6日目までに、偽島は完全に形成され、実験の準備が整うはずです(図1B-D)。

2.生細胞イメージングおよびマイクロペリフュージョンの準備(実験の1日前)

注:微小拡散培地の調製に関する情報は、protocols.io リソース(https://www.protocols.io/view/analysis-of-islet-function-in-dynamic-cell-perifus-bt9knr4w.html)から入手できます。

1. 偽膵島をマルチチャンネルピペットを使用して、96ウェルプレートから滅菌ペトリ皿に移し替えて収穫します。次に、偽膵島を手摘みし、新鮮なVPMを含む別の滅菌ペトリ皿に移します。偽膵島を組織培養インキュベーターで37°C、5%CO₂/95%空気で一晩インキュベートします。
2. 超純度水1Lに、BSA(ラジオイムノアッセイグレード)1g、ピルビン酸ナトリウム0.11g、L-グルタミン0.58g、重炭酸ナトリウム3.2g、HEPES1.11g、DMEMボトル1本を加えて、DMEM1Lを調製します。DMEMで1 Mグルコースストック溶液を調製します。両方の溶液を4°Cで一晩保持します。
3. 実験前日に微小周輸システムの流れを確認する。図2A-Bに示すように、空のマイクロチップが入ったチップホルダーにすべてのチューブを接続します。超純度水を廃液として利用し、フラクションコレクターで100μL/minの流量を確認します。

3. DMEMへの分泌促進剤の追加(実験当日)

1. 0.07 mg/mL アスコルビン酸を DMEM に添加し、グルコース含有バッファーに 1 M グルコースストックを使用して、DMEM + アスコルビン酸バッファーで分泌促進物質を調製します。
   注:アスコルビン酸塩は、エピネフリンの酸化を防ぐことにより、エピネフリンを安定させるために使用されます。エピネフリンを使用しない場合は、アスコルビン酸をDMEMから省略できます。
2. 分泌促進物質を0.22 μmのポアフィルターで2回ろ過し、そのたびに新しいフィルターを使用します。溶液を37°Cに温め、グルコメーター で グルコースを測定し、所望の濃度を確認します。

4. マイクロペリフュージョン装置のセットアップ

1. 共焦点レーザー走査型顕微鏡の環境チャンバーを37°Cに温め、すべてのドアが閉じられ、チャンバーが安定した温度に保たれるようにします。マイクロチップが入ったチップホルダーをチャンバーに入れてウォームアップします。赤外線ガンでチップ温度を確認します。
   注:この場合、恒温槽は38.5°Cに設定されており、チップは37°Cに達することができます。
2. すべてのチューブをチップホルダに接続します(図2A-Bを参照)。ベースライン分泌促進剤で5分間フラッシュラインします。この研究では、ラインを 2 mM グルコース(G 2)でフラッシュしました。デバブラーのバブルトラップメンブレンは、8〜10回の実験ごとに交換してください。

5. マイクロチップへの偽膵島の装填

1. マイクロチップを装填する前に、その後の膵島当量(IEQ)の定量化のために実験で使用される疑似膵島の明視野および暗視野画像(倍率10倍)を撮影します。
   注:IEQは、ホルモン分泌を実験全体の膵島数の変動に正規化するために使用されます。このステップは、実験の前日に行うこともできます。
2. マイクロチップの下半分と上半分から余分な液体を吸引します。マイクロチップの上半分には、各ウェルの適切なシールを確保するガスケットが含まれており、マイクロチップの下半分には、ガラスカバーガラスが取り付けられたウェルが含まれています。5 μLのDMEMでマイクロチップに1つを事前に濡らします。井戸の外縁の周りをピペットで動かして、隙間を濡らしてください。
3. あらかじめ湿らせたピペットを使用して、23 μLの容量で30〜32個の偽島を回収し、マイクロチップの底部にあるウェルの中央に偽島をゆっくりと分注します。ピペットの先端に偽膵島が付着していないか確認します。
4. ゲルローディングチップを使用して、偽島をウェルの中央に静かに動かします。これにより、最大数の疑似膵島が視野にキャプチャされます。
5. ステレオスコープ上のマイクロチップ内の偽膵島の画像を撮影します。このカウントは、このプロセス中の疑似膵島損失に対して計算されたIEQを調整するために使用されます。
   1. 手順5.3のすべての疑似アイズレットがマイクロチップにロードされていない場合は、それに応じてIEQを調整します。たとえば、現在 30 個の疑似膵島が可視化されているが、ステップ 5.1 で可視化されたのは 32 個の場合、ステップ 5.1 の画像の IEQ を計算し、30/32 を掛けます。
6. マイクロチップの底部をマイクロチップホルダーに入れます。マイクロチップの上部を、緑色のガスケット側を下にして慎重に置きます。
7. マイクロチップを所定の位置に保持しながら、マイクロチップホルダーを静かに閉じて、マイクロチップをクランプします。このプロセス中にマイクロチップに過度の圧力をかけると、ウェルに含まれる液体が置換され、偽島の損失につながる可能性があるため、マイクロチップに過度の圧力をかけないようにしてください。井戸に気泡を入れないでください。

6. 同期生細胞イメージングとマイクロペリフュージョン

1. 分泌促進剤、ポンプ、マイクロチップをホルダーに入れ、共焦点顕微鏡に取り付けられた恒温槽に移します。排出チューブをチャンバーからフラクションコレクターに導きます。
   1. バッファーを 15 mL のコニカルチューブに入れ、キャップに穴を開けます。これらの穴は、収集チューブがチューブから漂うのを防ぎます。
   2. チューブをデバブラーにねじ込むときは、ナットとフェルールを分離してから、デバブラーにねじ込みます。これにより、ラインのねじれが防止されます。
2. フラクションコレクターを2分ごとに回転するように設定します。適切な数のチューブをフラクションコレクターにロードし、洗浄と実験フラクションを考慮します。これらの実験では、15本の洗浄チューブ(合計30分間の洗浄)と28本のフラクション回収用チューブを使用しました。
3. ポンプを始動して、ベースライン培地(ベースラインのグルコース濃度を含む)を 100 μL/分で送液します(100 μL/分の流速で 2 分間の回収を行うと、各フラクションチューブあたり 200 μL の廃液が得られます)。この流量は、疑似膵島へのストレスを制限し、ライブイメージング中の重大な疑似膵島の動きを防ぐために選択されました。
   1. 流体が装置内を流れている間は、次の点に注意してください。
      1. フラクションコレクターの注ぎ口の端にある液滴に注意し、システム内の流れを示します。
      2. システムからの排出の減少に注意してください。コレクションチューブに<200μLがある場合は、システムに詰まりまたは漏れがある可能性があることを示しています。排水量の減少の考えられる原因、解決策、および防止のヒントのリストについては、 表2 を参照してください。
4. 排出チューブから安定した媒体の流れができたら、フラクションコレクターヘッドを回転させてチューブに分注し、フラクションコレクターを始動します。最初の 15 フラクション(30 分)を洗浄として回収し、偽膵島を平衡化させます。これらの最初の 15 フラクションを使用して、システム内の継続的かつ正確な培地フローを確保します。後でこれらの分数を破棄します。
5. 30分間の洗浄中に、次のパラメータに従って生細胞イメージング用に顕微鏡をセットアップします:対物レンズ:Uプラン蛍石20倍、1倍ズーム。蛍光チャンネル:EGFP(発光= 510 nm、レーザー波長= 488、検出波長= 500-600 nm);時系列:実験全体(つまり、56分)で2秒ごとに取得された画像。サンプリング速度:2μs/ピクセル。
   1. 視野内の偽島嶼の底部を特定し、焦点面をこの位置より15μm上に調整します。これは、イメージング実験全体で使用されるフレームです。
6. 30分間の洗浄が完了したら、フラクションの回収と画像取得を開始します。
   メモ: この手順の前に、問題を特定して修正するためにあらゆる努力を払ってください。データ収集が始まると、実験の一時停止や分泌促進物質への過度の曝露は、結果に悪影響を与える可能性があります。
7. 最初のベースライン採取の期間中、偽膵島をベースライン培地で周接流し続け、廃液を1.5 mLチューブに集めます。実験に適した時期に、チューブをベースラインバッファーから新しい刺激バッファーチューブに手作業で切り替えます。
   1. 標準的な微小周絡血流配列を 表3に示す。
   2. ~10 個のフラクションを採取した後、すべてのフラクションを実験終了まで 4 °C の冷蔵庫に入れ、ホルモン、特にグルカゴンの分解を防ぎます。
   3. 各チューブの排水量を確認することにより、実験全体を通してシステムの流れを引き続き監視します。
8. 実験が完了したら、ベースライン培地に切り替え、ポンプを5分間運転し続けて、ベースライン培地(この場合は2 mMグルコース)で刺激を洗い流します。
9. ポンプを停止し、デバブラーとフラクションコレクターでマイクロチップホルダーチューブを外して、マイクロチップホルダーを環境チャンバーから取り外します。マイクロチップを取り外した後、すべてのドアを閉めて温度を維持します。
10. ペリフューセートを-80°Cで保存し、その後のホルモン分析に役立ててください。

7.偽島酸エタノール抽出

1. マイクロチップホルダーを慎重に開き、マイクロチップの上部を持ち上げて外します。ピペットと卓上顕微鏡を使用して、ウェルから偽島を採取し、1.5 mLチューブに移します。必要に応じて、卓上顕微鏡を使用してすべての偽膵島を確実に収集します。
   1. ウェルから取り出す前に、マイクロチップ内の偽膵島の最終画像を撮影し、ステップ5.5と同様に、膵島抽出物IEQを調整します。
2. 500 μL の PBS で 2 回洗浄します。各洗浄の合間に偽膵島を94 x g で1分間スピンダウンし、上清を吸引します。
3. 最後の洗浄液を除去した後、200 μLの酸性エタノール(5.5 mLの95%エタノール + 50 μLの12 N HCl)を加えます。4°Cで一晩保管してください。
4. 翌日、抽出物を 15,989 x g、4°C で 10 分間スピンダウンします。 45 μL を 3 本の新しいチューブに分注します。ホルモン含量分析のために-80°Cで保存してください。ホルモン分泌をIEQに正常化する代替として、ホルモン分泌を抽出物から測定した偽島ホルモン含量に正規化することもできる。

8. 追加実験とクリーンアップ

1. 後続の疑似膵島グループで手順5〜7を繰り返して、追加のテクニカルレプリケートを取得します。
2. すべての微小拡散実験が終了したら、マイクロチップとチューブに10%漂白剤を5分間通し、次に超精製水を30分間流してチューブを消毒します。

9. データ分析

注:生細胞イメージングは、レーザー走査型共焦点顕微鏡を使用して行いました。画像は、顕微鏡関連のイメージングソフトウェアパッケージを使用して分析されました。以下は一般的なガイドラインですが、顕微鏡メーカーや画像取得ソフトウェアによって異なる場合があります。

1. データ正規化のための合計アイレット等価物 (IEQ) の決定
   1. ソフトウェアプログラムを開き、ウィンドウの右上にある[ 取得 ]タブをクリックします。マクロ・マネージャー (マクロ・マネージャー (マクロ・マネージャー) の「バッチ ・バーンイン 」機能を選択して、すべての暗視野イメージ>>バッチ書き込みを行います。
      1. 一度に複数のイメージを書き込むには、マクロマネージャ内の実行ボタンをクリックする前に、バッチモードの切り替えボタンをクリックします。画面の指示に従って、書き込んだ画像のソース画像の場所と保存先の場所を選択します。画像ファイルの種類として、[タグ付きイマジンファイル形式 (*.tif)] を選択します。
   2. IEQ測定では、手順5.1で撮影した10倍暗視野画像の焼き付きバージョンを開きます。上部の [Count and Measure ] タブをクリックし、左側の [ Manual HSV Threshold ] ボタンを選択します。
      1. ドロッパー機能を使用して、各疑似島が赤で強調表示されるまで、疑似島の境界を越えずに正の領域(赤)を追加/削除します。[ Count and Measure] をクリックします。
   3. 自動分割機能または手動分割機能を使用して、結合された疑似島を分割します。
      1. 疑似島を手動で分割するには、手動分割機能を選択し、左クリックして疑似島を区切る線を引き、右クリックして線を完成させます。自動分割するには、自動分割機能を選択し、グループ化された疑似島をクリックします。その後、正しい自動分割を確認します。
   4. バッチ書きの画像では、縮尺記号と拡大テキストが正の値としてマークされる場合があります。これらのオブジェクトを削除すると、正確なカウントが得られるように、マウスを使用してテキストと縮尺記号をハイライト表示し、キーボードの Delete キーを押します。
   5. フィルターのオンとオフを切り替えて、すべての疑似膵島がカウントされていることを確認します。このファイルは、相互参照のためにプログラムの外部で開くこともできます。終了したら、[ Excelにエクスポート]をクリックします。
   6. スプレッドシートを開き、次のように変更します。
      1. 下部のカウント、平均、および並べ替え情報を削除します。平均直径に基づいてオブジェクトを並べ替えます。平均直径の後に列を挿入し、その列に「Pseudoislet count」という名前を付けます。
      2. 膵島数は、以下の各指標内に収まる平均直径の疑似膵島の数によって決定されます。インデックスあたりの疑似島数にそれぞれのIEQ変換係数を掛け、これらの値を合計して合計IEQを決定します。各実験の前に取得した画像に対してIEQ計算を実行します。次のインデックスと IEQ 変換係数を使用します。
         1-49 μm:×0.167
         50-100 μm:0.667×
         101-150 μm: × 1.685
         151-200 μm:× 3.500
         201-300 μm:× 6.315
         301-350 μm:× 10.352
      3. IEQ カウントを決定するためのスプレッドシートの例については、 補足ファイル 1 を参照してください。
2. ソフトウェアによる生細胞イメージングの定量
   1. cellSensで目的のファイル(.oir)を開きます。
   2. 関心領域 (ROI) を次のように指定します。
      1. 描画ツールを使用して、ROI(つまり、各擬似島)を指定します。フリーハンド描画オプションを使用する場合は、右クリックして図形を閉じます。
      2. 矢印を使用してドラッグし、イメージ内のすべての ROI を囲むようにドラッグして、すべての ROI を強調表示します。すべての ROI が強調表示された状態で、右クリックして [時間の経過に伴う動的 ROI に変換] を選択します
      3. XYT ファイルを再生して、ROI が経時的に正確であることを確認します。特定の期間でROIが正確でない場合は、その期間のサイズ/位置を修正します。ソフトウェアは、これらの変更に合わせて、時間の経過とともにROIのサイズ/場所を徐々に調整します。イメージング実験全体を通してROIが正確になるまで、これらの手順を繰り返します。
   3. 次のように、各 ROI の強度測定を実行します。
      1. ツールバーで、 Measure Intensity Profileをクリックします。分析するROIを強調表示します。Shift + クリックを使用して、複数の ROI を選択します。
         注:ソフトウェアでは一度に複数のファイルを開くことができますが、一度に1つのファイルからのみROIを解析してください。
      2. バックグラウンド ノイズを考慮するには、各強度値から減算する定数値を選択するか、1 つの ROI をバックグラウンドとして指定します。「 実行」をクリックします。
      3. 強度プロファイルツールバーで、Excelにエクスポートをクリックしてデータをエクスポートします。
      4. すべてのデータポイントを、7〜8分(つまり、最初のベースライン培地周輸の最後の数分)から測定された強度の平均に正規化します。各時点におけるこれらの正規化された値は、相対的なcADDis強度として定義されます。画像データの解析と正規化のスプレッドシートの例については、 補足ファイル 2 を参照してください。
3. 各画分と膵島抽出物のホルモン分泌を測定します。これらの実験では、インスリンとグルカゴンの濃度をELISAで測定しました。ステップ9.1で決定されたIEQ測定値または抽出物ホルモン含有量を使用して、各画分のホルモン分泌を偽島体積に正規化します。

結果

バイオセンサーを発現するヒト偽膵島は、cAMPバイオセンサーcADDisをコードするコンストラクトのアデノウイルス送達によって作製されました(図1A)。図1Bは、形質導入したヒト膵島細胞の経時的な再凝集を示しており、6日間の培養後に完全に形成された偽膵島が観察されています。細胞は48時間以内に可視的なcADDis蛍光を示し始め、培養期間...

ディスカッション

微小周融合システム、バイオセンサー発現偽島、レーザー走査型共焦点顕微鏡の統合により、細胞内シグナル伝達イベントと動的ホルモン分泌プロファイルの同期評価が可能になります。動的微小周輸システムは、一連の明確に定義された刺激を偽膵島に送達することができ、市販のELISAによってインスリンおよびグルカゴン濃度を測定できる廃液の収集を可能にする。同時に、共焦点顕微?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Ad-CMV-cADDis	Welgen	Not applicable
0.01” FEP tubing	IDEX	1527L
1 M HEPES	Gibco	15630-080	Enriched-CMRL Media Component
1.5 mL and conical tubes	Any	Any
10 μm PTFE filter	Cole-Parmer	SK-21940-41	Change every 8-10 runs
100 mM Sodium Pyruvate	Thermo Scientific	11360070	Enriched-CMRL Media Component
190 proof Ethanol	Decon labs	2816	Acid Ethanol Component
200 mM GlutaMAX-I Supplement	Gibco	35050061	Enriched-CMRL Media Component
Ascorbate	Sigma	A5960	DMEM Perifusion Buffer Component
Bovine Serum Albumin	Sigma	A7888	DMEM Perifusion Buffer Component
Bubble trap	Omnifit	006BT
CellCarrier ULA 96-well Microplates	Perkin Elmer	6055330
cellSens analysis software	Olympus	v3.1	Software used for data analysis
CMRL 1066	MediaTech	15-110-CV	Enriched-CMRL Media Component
Conical adapter (IDEX, P-794)	IDEX	P-794
D-(+)-Glucose	Sigma	G7528	Glucose Buffer Component
DMEM	Sigma	D5030	DMEM Perifusion Buffer Component
Environmental chamber	okolab	IX83
Epinepherine (Epi)	Sigma	E4250	Stimulation Buffer Component
Fetal Bovine Serum (FBS), Heat Inactivated	Sigma	12306C	Enriched-CMRL Media Component
Glucagon ELISA	Mercodia	10-1281-01
Glucagon Kit HTRF	Cisbio	62CGLPEH
HCl (12N)	Any	Any	Acid Ethanol Component
HEPES	Sigma	H7523	DMEM Perifusion Buffer Component
iCell Endothelial Cells Medium Supplement	Cell Dynamics	M1019	iEC Media Component
Idex Derlin nut & ferrule 1/4-24	Cole-Parmer	EW-00414-LW
Insulin ELISA	Mercodia	10-1113-01
Isobutylmethylonine (IBMX)	Sigma	I5879	Stimulation Buffer Component
Laser scanning confocal microscope	Olympus	FV3000
L-Glutamine	Sigma	G8540	DMEM Perifusion Buffer Component
Microchip (University of Miami, FP-3W)	University of Miami	FP-3W
Microchip holder	Micronit Microfluidics	FC_PRO_CH4525
Model 2110 Fraction Collector	Biorad	7318122
P10, P200, and P1000 pipets and tips	Any	Any
Penicillin/Streptomycin	Gibco	15140-122	Enriched-CMRL Media Component
Peristaltic pump	Instech	P720
Phosphate Buffered Saline	Gibco	14190-144	Wash Islets
Sarstedt dishes	Sarstedt	depends on dish diameter
Sodium Bicarbonate	Sigma	S6014	DMEM Perifusion Buffer Component
Sodium Pyruvate	Sigma	P2256	DMEM Perifusion Buffer Component
Stereoscope	Olympus	SZX12
Steriflip Filter (0.22 μm)	Millipore	SCGP00525	Filter all buffers twice
VascuLife VEGF Medium Complete Kit	LifeLine Cell Technology	LL-0003	iEC Media Component