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Resumo

Duas técnicas podem ser usadas para estabelecer esse modelo: injeção de uma suspensão de células de câncer na parede cecal ou transplante de um pedaço de tumor subcutâneo para o ceco. Este modelo é útil para estudar a progressão natural do câncer colo-retal e testes de novos agentes terapêuticos contra o câncer colorretal.

Resumo

O modelo tradicional tumor subcutâneo é menos do que ideal para estudar o câncer colorretal. Modelos de ratos ortotópico de câncer colorretal, que apresentam células cancerosas em crescimento em sua localização natural, replicar a doença humana com alta fidelidade. Duas técnicas podem ser usadas para estabelecer este modelo. Ambas as técnicas são semelhantes, e requer anestesia mouse e laparotomia para exposição do ceco. Uma técnica envolve a injeção de uma suspensão de células do câncer colorretal na parede cecal. As células cancerosas são primeiramente cultivadas na cultura, colhidas quando confluentes e preparado como uma suspensão única célula. Um volume pequeno de células é injetado lentamente para evitar fugas. A outra técnica envolve o transplante de uma peça de tumor subcutâneo para o ceco. Um rato com um tumor colorretal previamente estabelecidos subcutânea é eutanásia eo tumor é removido utilizando técnica estéril. A peça de tumor é dividido em pequenos pedaços para transplante para outro mouse. Antes do transplante, a parede cecal é levemente danificada para facilitar a infiltração de células tumorais. O tempo para o desenvolvimento de tumores primários e metástases hepáticas irá variar dependendo da técnica, linha celular, e as espécies de mouse usado. Este modelo do rato ortotópico é útil para estudar a progressão natural do câncer colo-retal e testes de novos agentes terapêuticos contra o câncer colorretal.

Protocolo

I. Preparação celular

  1. Células de câncer colorretal são cultivadas em cultura e colhidos quando confluentes.
  2. A suspensão única célula é preparada em tampão fosfato salina e mantidos em gelo.

II. Preparação do tumor

  1. Um rato com um tumor colorretal previamente estabelecidos subcutânea é eutanasiado.
  2. O tumor subcutâneo é removido usando técnica estéril e dividido em pedaços 2-3 milímetros
  3. As peças tumor são mantidos em tampão fosfato salino no gelo.

III. Preparação do mouse

Nota: Em nosso laboratório usamos isoflurano inalado para anestesiar o rato, alternativamente, pode-se usar anestésicos injetáveis ​​para alcançar o mesmo efeito

  1. A profundidade da anestesia é avaliada através de pinch dedo do pé. Não deve haver reflexo retirar com pitada dedo do pé.
  2. Antibióticos pode ser dada neste momento.
  3. O rato anestesiado, que anteriormente era raspada, está posicionada corretamente.
  4. O abdômen é preparado com uma solução de betadine.
  5. Do abdômen e do sítio cirúrgico é coberto de forma estéril.

IV. Laparotomia

  1. Um nick pequeno é feito na pele
  2. A musculatura da parede abdominal é agarrado e levantado
  3. A cavidade abdominal é inserido e uma única lâmina da tesoura é usada para empurrar o conteúdo intra-abdominal de distância
  4. A incisão é estendida a 2-3 cm

V. exposição do ceco

  1. O ceco com sua bolsa terminando cego é identificado e exteriorizado
  2. O ceco é isolado do resto do mouse usando um pré-corte de gaze estéril,
  3. Salina morna é usada para manter a umidade do ceco

VI. Injeção de células para a parede do ceco

  1. A G 27 ou mais fina agulha é usada para injetar um volume de 50 mL de células na parede cecal
  2. A agulha é removida
  3. O local da injeção é inspecionado para garantir que não haja vazamento
  4. O ceco é retornado para a cavidade abdominal

VII. Transplante de Tumor sobre o Ceco

Nota: Além de injetar células na parede cecal, uma abordagem alternativa é o transplante tumor para o ceco

  1. Uma figura de oito ponto é colocado no ceco com 6-0 ou 7-0 sutura tamanho
  2. A parede cecal é levemente danificados
  3. Então, o pedaço do tumor é posicionado
  4. O ponto é amarrado
  5. O ceco é retornado para a cavidade abdominal

VIII. Rato fechamento da parede abdominal e recuperação

  1. A parede abdominal do rato é fechado com três pontos interrompidos com 3-0 ou 4-0 sutura tamanho
  2. Alternativamente, pode-se usar um ponto simples execução
  3. Pós-operatório de analgésicos e um bolus de fluido pode ser dada neste momento
  4. O mouse é permitida a recuperação anestésica.

Nota: Com anestésicos inalatórios isso normalmente leva 30 segundos

IX. Resultados - tumor primário e metástase hepática

figure-protocol-3307figure-protocol-3371figure-protocol-3435
Tumor primário - mostrado in situ (A) e com evidência de neovascularização (B); na coloração H & E, os tumores são localmente invasivos (C)

figure-protocol-3661
As metástases no fígado - mostrado ex vivo (D)

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Discussão

Embora os modelos de tumor subcutâneo do rato são fáceis de estabelecer e monitorar, é claro que este modelo não pode replicar o site original anatômica do câncer colorretal. Devido à diferença de microambiente, células de câncer colorretal crescer sob a pele têm sido mostrados para mudar seu fenótipo e quase sempre falham ao progresso e metástases 1,2. Na verdade, a resposta do tumor à terapia pode variar drasticamente, dependendo se as células cancerosas são implantados em uma gravidez ectópica (subcutânea) v...

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Agradecimentos

Departamento de Cirurgia da Universidade da Califórnia, San Francisco
Raymond Shaheen, MD

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Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Cell culture media and componentswill vary depending on cell line used
Phosphate Buffered SalineBioWhittaker17-512Falso sold by a number of other vendors
15 mL centrifuge tubes, polypropyleneCorning430790
6 well plates with lidBD Biosciences353046
Iris forceps, straight, serrated tipsWorld Precision Instruments, Inc.15914best to have a pair of these instruments
Iris dissecting scissors, straight, sharpWorld Precision Instruments, Inc.14393
Needle Holder (regular)World Precision Instruments, Inc.14109
Needle Holder (Castroviejo)World Precision Instruments, Inc.14137
Cidex PlusWorld Precision Instruments, Inc.7364instruments should be autoclaved periodically, but may also be sterilized by soaking in Cidex
6-0 or 7-0 suturefor cecum; courtesy of Department of Surgery, UCSF
3-0 or 4-0 suturefor abd wall; courtesy of Department of Surgery, UCSF
Anesthetic machine / IsofluraneJ.A. Baulch and Associates3206also sold by a number of other vendors
Heating Pad, disposable, 6" x 6"Prism Technologies20419
Tape, orange, 13 mm x 13 mFisher Scientific15901Ffor restraining anesthetized mouse
Pro-Cord/Cordless TrimmerOster Professional Products78997-010for shaving mouse fur
BetadineFisher Scientific19-027132may also be purchased at any medical supply store
2 x 2 gauze, 3-plyJohnson & Johnson7635may also be purchased at any medical supply store
Sterile Field, Barrier, 16" x 29"Johnson & Johnson0905may also be purchased at any medical supply store
Cotton tipped applicators, 6"Fisher Scientific14-960-3Qmay also be purchased at any medical supply store
Syringe, 10 cc, Luer lock tipBD Biosciences309604
Syringe, 1 cc, tuberculin, slip tipBD Biosciences309602
27 1/2 G needleBD Biosciences305109
30 G needleBD Biosciences305106

Referências

  1. Heijstek, M. W., Kraneburg, O., Rinkes Borel, I. H. Mouse models of colorectal cancer and liver metastases. Dig Surg. 22, 16-25 (2005).
  2. Kobaek-Larsen, M., Thorup, I., Diederichsen, A., Fenger, C., Hoitinga, M. R. Review of colorectal cancer and its metastases in rodent models: comparative aspects with those in humans. Comp Med. 50, 16-26 (2000).
  3. Wilmanns, C., Fan, D., O'Brian, C. A., Bucana, C. D., Fidler, I. J. Orthotopic and ectopic organ environments differentially influence the sensitivity of murine colon carcinoma cells to doxorubicin and 5-fluorouracil. Int J Cancer. 52, 98-104 (1992).
  4. Kashtan, H., Rabau, M., Mullen, J. B., Wong, A. H. C., Roder, J. C., Shiptz, B., Stern, H. S., Gallinger, S. Intra-rectal injection of tumor cells: a novel animal model of rectal cancer. Surg Oncol. 1, 251-256 (1992).

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