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Resumo

Aqui nós descrevemos um método para infligir a cabeça fechado traumatismo crânio-encefálico (TCE) em Drosophila. Este método oferece um portal para investigar os mecanismos celulares e moleculares que estão na base patologias TCE, utilizando a vasta gama de ferramentas experimentais e técnicas disponíveis para as moscas.

Resumo

Traumatismo crânio-encefálico (TCE) afeta milhões de pessoas a cada ano, causando comprometimento da saúde física, cognitiva e funções comportamentais e morte. Estudos utilizando Drosophila têm contribuído importantes avanços na compreensão de processos neurológicos. Assim, com o objetivo de compreender a base celular e molecular de patologias TCE em humanos, foi desenvolvido o dispositivo de Trauma de Alto Impacto (HIT) para infligir cabeça fechada TBI em moscas. Moscas submetidos aos fenótipos visor do dispositivo HIT consistentes com TBI humano, tais como incapacidade temporária e neurodegeneração progressiva. O dispositivo HIT usa um mecanismo baseado em mola para impulsionar moscas contra a parede de um tubo de ensaio, provocando danos mecânicos ao cérebro mosca. O dispositivo é barato e fácil de construir, a sua operação é simples e rápida, e que produz resultados reprodutíveis. Por conseguinte, o dispositivo de HIT pode ser combinada com as ferramentas experimentais existentes e técnicas de moscas para tratar fundamentaisdúvidas sobre TCE que podem levar ao desenvolvimento de diagnósticos e tratamentos para o TCE. Em particular, o dispositivo HIT pode ser usado para realizar telas genéticos em grande escala para compreender a base genética de patologias TBI.

Introdução

Traumatismo crânio-encefálico (TCE) é definida como lesão no cérebro de uma força mecânica externa. Mais vulgarmente, a partir de resultados de TCE forças de cabeça fechada, como forças rombas e aceleração inércia e forças de desaceleração que causam o cérebro para atingir o interior do crânio. Nos Estados Unidos, estima-se que 50.000 pessoas morrem a cada ano de TBI e 2,5-6.500.000 indivíduos estão a viver com as consequências do TCE, incluindo debilitante físico, cognitivo e problemas de comportamento 1,2. As conseqüências do TCE não são apenas devido a lesões mecânicas primárias para o cérebro, mas também a lesões celulares e moleculares secundários para o cérebro, bem como outros tecidos que ocorrem ao longo do tempo 3-5. O desenvolvimento de abordagens para diagnosticar e tratar o TCE tem provado ser difícil porque o TCE é um processo de doença complexa. A natureza variável de lesões primárias, fisiologia humana e fatores ambientais resulta em i secundário heterogêneonjuries e patologias. Factores variáveis ​​subjacentes incluem a gravidade da lesão primária, o tempo entre as lesões primárias repetitivas, e da idade e do genótipo do indivíduo. A compreensão de como cada fator variável contribui para as conseqüências de TBI é susceptível de ajudar no desenvolvimento de abordagens para diagnosticar e tratar TBI 6,7.

Aqui nós descrevemos um método para infligir TBI cabeça fechada em Drosophila melanogaster (mosca da fruta) que pode ser usado para delinear a contribuição de fatores variáveis ​​para as consequências do TCE. O método baseia-se na observação inicial de que intensamente que bate no lado de um frasco de cultura mosca contra a palma de uma mão causada moscas do tipo selvagem para ficar temporariamente incapacitada, uma consequência provável da TBI. Assim, construímos o dispositivo High-Impact Trauma (HIT) recapitular as forças de aceleração e desaceleração a partir da ação de bater a mão. Um filme de alta velocidade mostra que um único golpe doHIT dispositivo faz com que voa para entrar em contato com a parede do frasco várias vezes com a cabeça eo corpo 8. Em certa medida, todos os contatos são susceptíveis de fazer com que o cérebro da mosca a ricochetear e deformar contra a cápsula cabeça, semelhante ao que acontece com os seres humanos em quedas e acidentes de carro 9. Assim, moscas tratados com os fenótipos visor do dispositivo HIT consistentes com lesão cerebral, incluindo a incapacidade temporária seguido por ataxia, a recuperação gradual da mobilidade, alterações de expressão gênica na cabeça, e neurodegeneração progressiva no cérebro 10. Assim, o dispositivo de HIT torna possível estudar TBI utilizando o enorme arsenal de ferramentas e técnicas desenvolvidas para moscas experimentais.

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Protocolo

1. Construção do Dispositivo HIT

  1. Fixe a mola para a placa utilizando dois grampos e quatro parafusos (Figura 1A). Centralize os grampos em relação à largura da placa e Butt-los uns contra os outros com o flush braçadeira exterior com a borda da placa. Antes de fixar os grampos, dobre-os usando um alicate para caber firmemente sobre a primavera.
    NOTA: Consulte a Tabela 1 para obter descrições dos materiais necessários para a construção do dispositivo de HIT. A extremidade apertada da mola deve ser de 1/8 de polegada (3,2 mm) a partir da borda da placa, ea extremidade livre deve estender-se sobre a placa por 3/4 de polegada (19 mm). Ajustar a mola de modo que ela se encontra em paralelo com o comprimento do bordo.
  2. Enrole a extremidade livre da mola em torno de uma vez com a fita adesiva de loops de velcro. A borda externa do velcro deve estar nivelada com a extremidade da mola. O Velcro é importante porque é usado para proteger o frasco para a mola por CREAting um encaixe de compressão apertado. O velcro permite também uma fácil ligação e remoção de tubos de ensaio, permitindo que muitos frascos a serem processados ​​num curto período de tempo.
  3. Coloque a tampa do balde de gelo de cabeça para baixo, centrado, apertado contra a placa de madeira. Orientar a região elevada da tampa balde de gelo de modo a que a borda é paralelo ao longo da largura do tabuleiro. Note-se que a região elevada do balde de gelo é de 1/2 polegada (13 mm) maior do que a placa de madeira, de modo que quando um frasco é ligado à mola a mola não vou mentir plana no tabuleiro.
  4. Deslize todo o dispositivo contra um objeto fixo, como uma parede, de modo que a tampa balde de gelo está encravado entre o conselho eo objeto e não se move.
  5. Tape o transferidor de papel para o fundo de um cartão voar bandeja frasco e coloque na borda contra a extensão do tabuleiro de modo que a marca de 90 ° está alinhado com a primavera, quando ele é puxado de volta para uma posição perfeitamente vertical.

2.O funcionamento do dispositivo HIT

  1. Lugar entre 1 e 60 CO 2 -anesthetized voa em um frasco vazio e tapar o frasco usando uma bola de algodão apertada.
  2. Confinar as moscas para a parte inferior de 1 polegada (2,5 cm) do frasco, empurrando a bola de algodão para dentro do frasco até que seja de 1 polegada (2,5 cm) a partir do fundo. É útil para desenhar uma linha no frasco na marca de 1 polegada (2,5 cm). Note-se que as moscas para confinar regiões maiores ou menores do frasco pode afectar a gravidade dos fenótipos.
  3. Esperar 5 min para as moscas para recuperar a mobilidade do CO 2. Note-se que não se sabe se 5 min é suficiente para eliminar completamente os efeitos de CO 2.
  4. Inserir a extremidade da mola para dentro do frasco até que a extremidade interior do Velcro é nivelada com o topo do frasco (Figura 1B). Quando a primavera está deitado, de 1 polegada (2,5 cm) do frasco para injectáveis ​​deve sobrepor-se a região elevada da tampa do balde de gelo. Os frascos podem ser reutilizados mqualquer hora.
  5. Ao sentar-se, mantenha o frasco a região de Velcro usando o polegar eo dedo indicador de sua mão esquerda. Segure a placa firmemente à bancada usando sua mão direita. Como alternativa, use C-braçadeiras para segurar a placa apertada para a bancada.
  6. Puxe a mola perfeitamente em linha reta de volta para o ângulo desejado. Solte a primavera. Permitir que a primavera chegar a uma paragem completa.
  7. Retire o recipiente da primavera e permitir que as moscas se recuperar para ≥5 min. Apresentar as moscas para outra greve ou transferir as moscas para um frasco com alimentos mosca.
    NOTA: Uma variedade de ensaios pode ser utilizada para avaliar os efeitos fenotípicos de ataques do dispositivo HIT. Por exemplo, os efeitos sobre a longevidade pode ser determinada através da análise da percentagem de moscas que sobrevivem às vezes após a lesão, os efeitos na morfologia do cérebro pode ser determinada por análise histológica da cabeça, e os efeitos sobre a expressão do gene pode ser determinada por análise quantitativa dos níveis de ARNm 10.
  8. Determine efeitos do procedimento que não são devido a greves, tratando de forma idêntica moscas de controle que não são sujeitos a ataques. Usar protecção auricular, porque o impacto do frasco contra a cobertura balde de gelo produz um ruído alto.

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Resultados

Estamos interessados ​​em entender por que as moscas morrem logo após a lesão primária. Para quantificar a morte, determinou-se o Índice de mortalidade às 24 horas (MI 24), que é a percentagem de moscas que morreram dentro de 24 horas da lesão primária. Moscas sujeitos a ataques do dispositivo HIT foram incubadas a 25 ° C num frasco com comida mosca, e o número de moscas mortas foi contado após 24 horas. Utilizou-se esta abordagem para identificar os factores que afectam a MI 24 e de...

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Discussão

O método dispositivo HIT se distingue de outros métodos que infligem lesões traumáticas em moscas pelo fato de que ele faz com que a cabeça fechado, em vez de penetrar TBI 11. Além disso, o método de dispositivo HIT leva menos tempo, esforço e habilidade para infligir TBI em muitas moscas, por isso, o método é mais favorável do que outros métodos para telas genéticos de grande escala. Por fim, o facto de as lesões primárias infligidos pelo dispositivo HIT não estão limitados ao cérebro é ao...

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Divulgações

Não temos conflitos de interesse para divulgar.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado pelo National Institutes of Health subvenção, R01 AG033620 (BG) e por Robert Draper Inovação Tecnológica Financiamento (DAW).

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Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Zinc plated compression springThe Hillman  Group5401899 7/8 inch (length, 2.2 cm), 15/16 inch (outer diameter, 2.4 cm), 0.12 inch (wire size, 0.3 cm)
Wooden board9 inch (length, 22.9 cm), 6.5 inch (width, 16.5 cm), 0.75 inch (height, 1.9 cm)
ClampsSigma Electrical Manufacturing Corporation498223.10 inch (length, 7.9 cm), 0.68 inch (width, 1.7 cm), 1.11 inch (height, 2.8 cm), EMT Two Hole Straps, click on type for 1 inch (2.5 cm) steel EMT conduit
Loop half of self-adhesive velcro3 inch (length, 7.6 cm), (3/4 inch width, 1.9 cm)
Polyurethane ice bucket coverFisher Scientific02-591-459 1/8 inch (length, 23.2 cm), 9 1/8 inch (width, 23.2 cm), 1 1/4 inch (height, 3.2 cm)
Plastic fly vialsApplied ScientificAS-5103 11/16 inch (height, 9.4 cm), 1 1/16 inch (inner diameter, 2.7 cm), 1 1/8 inch (outer diameter, 2.9 cm)
Large cotton ballsFisher Scientific22-456-883
Paper protractor10 inch (diameter, 25.4 cm)

Referências

  1. Harrison-Felix, C. L., Whiteneck, G. G., Jha, A., DeVivo, M. J., Hammond, F. M., Hart, D. M. Mortality over four decades after traumatic brain injury rehabilitation: A retrospective cohort study. Arch Phys Med Rehabil. 90, 1506-1513 (2009).
  2. Coronado, V. G., et al. Surveillance for traumatic brain injury-related deaths – United States. MMWR Surveill Summ. 60, 1-32 (1997).
  3. Masel, B., DeWitt, D. S. Traumatic brain injury: A disease process, not an event. J. Neurotrauma. 27, 1529-1540 (2010).
  4. Blennow, K., Hardy, J., Zetterberg, H. The neuropathology and neurobiology of traumatic brain injury. Neuron. 76, 886-899 (2012).
  5. Prins, M., Greco, T., Alexander, D., Giza, C. C. The pathophysiology of traumatic brain injury at a glance. Disease Models Mech. 6, 1307-1315 (2013).
  6. Menon, D. K. Unique challenges in clinical trails in traumatic brain injury. Crit Care Med. 37, S129-S135 (2009).
  7. Xiong, Y., Mahmood, A., Chopp, M. Animal models of traumatic brain injury. Nature Rev Neurosci. 14, 128-142 (2013).
  8. Balsiger, Z., Leudkte, J., Mawer, S., Willey, M. HIT device high speed analysis. , Available from: https://www.youtube.com/watch?v=hkmCXwPacBQ (2014).
  9. Davceva, N., Janevska, V., Illevski, B., Petrushevska, G., Popeska, Z. The occurrence of acute subdural haematoma and diffuse axonal injury as two typical acceleration injuries. J Forensic Leg Med. 19, 480-484 (2012).
  10. Katzenberger, R. J., Loewen, C. A., Wassarman, D. R., Petersen, A. J., Ganetzky, B., Wassarman , D. A. A Drosophila. model of closed head traumatic brain injury. Proc Natl Acad Sci USA. 110, E4152-E4159 (2013).
  11. Fang, Y., Bonini, N. M. Axon degeneration and regeneration: insights from Drosophila .models of nerve injury. Annu Rev Cell Biol. 28, 575-597 (2012).
  12. Babcock, D. T., Ganetzky, B. An improved method for accurate and rapid measurement of flight performance in Drosophila. J Vis Exp. (84), e51223(2014).
  13. Tully, T., Preat, T., Boynton, S. C., Vecchio, M. D. Genetic dissection of consolidated memory in Drosophila. Cell. 79, 35-47 (1994).
  14. Andretic, R., Shaw, P. J. Essentials of sleep recordings in Drosophila.: moving beyond sleep time. Methods Enzymol. 393, 759-772 (2005).

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Erratum


Formal Correction: Erratum: A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila
Posted by JoVE Editors on 7/14/2015. Citeable Link.

An author's name was corrected in the publication of A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila. The second to last author's was spelled incorrectly. It has been updated from:

Barry Ganetky

to:

Barry Ganetzky

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