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Method Article
Este protocolo descreve a fabricação de lipossomas e como estes podem ser imobilizados em uma superfície e imagemindividualmente de uma forma paralela maciça usando microscopia de fluorescência. Isso permite a quantificação do tamanho e inhomogeneidade composicional entre os lipossomos únicos da população.
A maioria das pesquisas que empregam lipossomas como sistemas de modelo de membrana ou portadores de entrega de drogas depende de técnicas de leitura em massa e, portanto, assume intrinsecamente todos os lipossomas do conjunto para ser idêntico. No entanto, novas plataformas experimentais capazes de observar lipossomos no nível de partículaúnica tornaram possível realizar estudos altamente sofisticados e quantitativos sobre interações de membrana proteica ou propriedades de portadores de drogas em lipossomos individuais, evitando assim erros da média do ensemble. Aqui apresentamos um protocolo para preparar, detectar e analisar lipossomos individuais usando um ensaio microscopia à base de fluorescência, facilitando tais medições de partículas únicas. A configuração permite a imagem de lipossomos individuais de forma paralela maciça e é empregada para revelar o tamanho intra-amostral e inhomogeneidades composicionais. Além disso, o protocolo descreve as vantagens de estudar lipossomas no nível único de lipossoma, as limitações do ensaio e as características importantes a serem consideradas ao modificá-lo para estudar outras questões de pesquisa.
Os lipossomas são vesículas à base de fosfolípido esféricas que são fortemente utilizadas tanto na pesquisa básica quanto aplicada. Funcionam como sistemas excelentes do modelo da membrana, porque suas propriedades physiochemical podem facilmente ser manipuladas variando os componentes lipídicos que compõem o liposome1,2. Além disso, os lipossomas constituem o sistema de nanocarrier de entrega de medicamentos mais utilizado, oferecendo farmacocinética melhorada e farmacodinâmica, bem como alta biocompatibilidade3.
Por muitos anos, os lipossomas têm sido estud....
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1. Preparação para Lipossoma
NOTA: Brevemente, a preparação de lipossomas geralmente inclui três etapas cruciais: 1) preparação de filmes lipídicos secos da composição lipídica desejada; 2) reidratação dos lipídios para formação de lipossomas; e 3) controlar o tamanho e a lamellaridade da população de lipossomas.
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Seguir o protocolo descrito torna possível a imagem de lipossomos únicos de uma forma paralela maciça (Figura 1). A bem-sucedida imobilização superficial dos lipossomas deve ser imediatamente aparente após a adição da solução lipossoma à câmara (passo 3.6 no protocolo), já que as manchas de intensidade limitada de difração devem aparecer na imagem (Figura 1B e Figura 1.......
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É importante notar que, embora descrevamos em detalhes como o ensaio único dos lipossomas pode ser usado para estudar a inhomogeneidade composicional entre os lipossomas individuais, a plataforma é muito versátil. Como mostrado anteriormente e discutido na introdução, o protocolo pode ser facilmente adaptado para estudar aspectos da fusão membrana-membrana, interações proteína-membrana ou caracterização lipossômica do portador de drogas. Para quaisquer questões científicas que estão sendo abordadas, o pod.......
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Os autores declaram nenhum conflito de interesses.
Este trabalho foi financiado pelo Conselho Dinamarquês para a Investigação Independente [número de subvenção 5054-00165B].
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
8-well microscopy slides (µ slides) | Ibidi | 80827 | Microscopy slides with glass bottom |
Avanti Mini Extrusion kit | Avanti Polar Lipids | 610000 | Consumables (Whatman filters) can be aquired from GE Healthcare |
BSA | Sigma | A9418 | |
BSA-Biotin | Sigma | A8549 | |
Cholesterol | Avanti Polar Lipids | 700000 | Traded trough Sigma |
Computer with FIJI (Fiji Is Just ImageJ) | ComDet plugin must be installed. Also, a data handling software (Excel, MatLab, OpenOffice, GraphPad Prism etc.) able to load .txt files will be needed to plot the data | ||
DOPE-Atto488 | Atto-Tech | AD488-165 | |
DOPE-Atto655 | Atto-Tech | AD655-165 | |
DOPE-PEG-Biotin | Avanti Polar Lipids | 880129 | Traded trough Sigma |
D-Sorbitol | Sigma | S-6021 | |
Freeze-dryer | e.g. ScanVac Coolsafe from Labogene | ||
Glass vials | Brown Chromatography | 150903 | Glass vials that can resist snap-freezing in liquid nitrogen. The 8 mL version of the vials has a size that also fits with the syringes of the extrusion kit |
HCl | Honeywell Fluka | 258148 | |
Heating bath | Capable of heating to minimum 65 °C | ||
Heating plate with Magnet stirring | Capable of heating to minimum 65 °C | ||
HEPES | Sigma | H3375 | |
Liquid nitrogen | Including container for storage, e.g. Rubber-bath | ||
Magnetic stirring bars | VWR | 442-4520 (EU) | |
Microcentrifuge tubes 1.5 mL | Eppendorf | 0030 120.086 (EU) | |
Microscope | For the images in this protocol a Leica SP5 confocal microscope has been used | ||
Na HEPES | Sigma | H7006 | |
NaCl | Sigma | S9888 | |
NaOH | Honeywell Fluka | 71686 | |
POPC | Avanti Polar Lipids | 850457 | Traded trough Sigma |
Streptavidin | Sigma | S4762 | |
tert-Butanol (2-methyl-2-propanol) | Honeywell Riedel-de Haën | 24127 | |
Ultrapure water | e.g. MilliQ |
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