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Resumo

Este protocolo descreve um modelo de rato com aneurisma da aorta abdominal induzido por fosfato de cálcio (AAA) para estudar as características patológicas e os mecanismos moleculares dos AAAs.

Resumo

Um aneurisma da aorta abdominal (AAA) é uma doença cardiovascular com risco de vida que ocorre em todo o mundo e é caracterizada por dilatação irreversível da aorta abdominal. Atualmente, vários modelos de AAA murino quimicamente induzidos são usados, cada um simulando um aspecto diferente da patogênese do AAA. O modelo AAA induzido por fosfato de cálcio é um modelo rápido e custo-efetivo em comparação com os modelos AAA induzidos por angiotensina II e elastase. A aplicação de cristais de CaPO4 na aorta do rato resulta em degradação de fibras elásticas, perda de células musculares lisas, inflamação e deposição de cálcio associada à dilatação da aorta. Este artigo apresenta um protocolo padrão para o modelo AAA induzido por CaPO4. O protocolo inclui o preparo do material, a aplicação cirúrgica do CaPO4 na adventícia da aorta abdominal infrarrenal, a colheita de aortas para visualização de aneurismas da aorta e análises histológicas em camundongos.

Introdução

Um aneurisma da aorta abdominal (AAA) é uma doença cardiovascular letal caracterizada por dilatação permanente da aorta abdominal, com altas taxas de mortalidade uma vez que ocorre a ruptura. O AAA está associado ao envelhecimento, tabagismo, sexo masculino, hipertensão arterial e hiperlipidemia1. Vários processos patológicos demonstraram contribuir para a formação de AAA, incluindo proteólise de fibra de matriz extracelular, infiltração de células imunes e perda de células musculares lisas vasculares. Atualmente, os mecanismos patológicos do AAA permanecem elusivos, e não há medicamentos comprovados para o tratamento do AAA1. A pesquisa em AAA humano é limitada devido à existência de poucas amostras de aorta humana; assim, vários modelos de AAA animal induzidos por modificação química foram estabelecidos e amplamente adotados, incluindo infusão subcutânea de angiotensina II (AngII), incubação de elastase perivascular ou intraluminal e aplicação de fosfato de cálcio perivascular2. Um modelo de camundongo comumente utilizado é a aplicação de fosfato de cálcio (CaPO4) na adventícia da aorta abdominal infrarrenal, que é custo-efetiva e não requer modificação genética.

A aplicação direta de CaCl2 na artéria carótida de coelhos para induzir alteração aneurismática foi inicialmente relatada por Gertz et al.3 e posteriormente aplicada nas aortas abdominais de camundongos. O modelo foi desenvolvido por Yamanouchi et al. para acelerar a dilatação da aorta utilizando cristais CaPO 4 em camundongos4. A infiltração de CaPO4 em aortas de camundongos recapitula muitas características patológicas observadas em AAAs humanos, incluindo infiltração profunda de macrófagos, degradação da matriz extracelular e deposição de cálcio. Os fatores de risco do AAA humano, como a hiperlipidemia, também aumentam o AAA induzido por CaPO4 em camundongos5. Em contraste com o AAA induzido por perfusão AngII em camundongos ApoE-/- ou LDLR-/-, o AAA induzido por CaPO 4 ocorre na região aórtica infrarrenal, que imita o AAA humano. Atualmente, esse método tem sido amplamente aplicado para avaliar a suscetibilidade ao desenvolvimento de AAA em camundongos geneticamente modificados e avaliar os efeitos anti-AAA de fármacos 6,7.

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Protocolo

Os estudos em animais foram realizados em conformidade com as diretrizes do Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais do Centro de Ciências da Saúde da Universidade de Pequim e foram aprovados pelo Comitê de Ética Biomédica da Universidade de Pequim (LA2015142). Todos os camundongos para cirurgia foram anestesiados com isoflurano (1,5%-2%), e a anestesia foi cuidadosamente monitorada para evitar dor ou desconforto para os camundongos.

1. Preparação

  1. Corte tiras de 0,3 cm de largura de luvas de borracha e gaze sem pó.
  2. Compre ratos machos C57BL/6J de 8-10 semanas de idade. Abrigar os animais em um ambiente climatizado com um ciclo claro-escuro de 12 horas e livre acesso a comida e água.
  3. Autoclave a gaze, cotonetes, tesouras e fórceps antes da cirurgia.
  4. Obtenha betadina, etanol a 70% e lavagem antisséptica das mãos.
  5. Coloque uma máscara, avental e luvas estéreis.

2. Procedimento cirúrgico

  1. Alimentar comprimidos de carprofeno mastigável (dose de 5 mg/kg) a um rato C57BL/6J de 8-10 semanas de idade 2-4 h antes da cirurgia. Em seguida, coloque o rato numa câmara de indução (206 mm x 210 mm x 140 mm) com isoflurano a um caudal de 1,5%-2%.
    1. Monitore o mouse por cerca de 5 minutos até que a respiração esteja visivelmente mais lenta. Certifique-se de que o rato não tem resposta à estimulação da dor antes da cirurgia.
  2. Aplique uma pomada oftálmica nos olhos e forneça suporte térmico com uma almofada de aquecimento ou cobertor. Confirme a profundidade da anestesia com uma pitada no dedo do pé a cada 15 minutos durante o procedimento cirúrgico.
  3. Raspe os pelos abdominais do rato usando um cortador elétrico ou creme de depilação. Esfregue e limpe a área raspada com betadine, seguida de etanol a 70%, várias vezes em movimento circular. Troque as luvas para manter a esterilidade.
  4. Use uma tesoura para fazer uma incisão de ~ 1,5 cm no abdômen inferior ao longo da linha média do abdômen.
  5. Use um cotonete estéril umedecido com solução salina normal para remover cuidadosamente o intestino até que a aorta infrarrenal esteja visível.
  6. Dissecar o tecido conjuntivo e a gordura da aorta infrarrenal por uma seção de aproximadamente 0,5 cm. Observe os pequenos vasos para o lado dorsal e evite rasgá-los. Não há necessidade de separar a aorta abdominal da veia principal abdominal.
  7. Embale um pedaço da tira de luva de borracha embebida em solução salina sob a aorta abdominal e a veia principal abdominal. Use um cotonete para limpar o excesso de líquido.
  8. Embale um pedaço de gaze embebido com CaCl2 0,5 M na adventícia da vasculatura abdominal infrarrenal por 10 min. Para o grupo de camundongos simulados, substitua o CaCl2 0,5 M por solução salina normal.
  9. Retire a gaze e embale outro pedaço de gaze embebido com solução de PBS por 5 min para gerar cristais de CaPO4 in situ na adventícia da aorta.
  10. Retire cuidadosamente a tira de luva de borracha e a gaze. Redefina o trato intestinal do rato.
  11. Suture a incisão abdominal e a pele com uma sutura 5-0.
  12. Coloque o rato numa almofada de aquecimento até que o rato recupere a consciência. Fornecer alojamento de recuperação da dor pós-cirúrgica e analgesia, de acordo com o comitê de ética animal local.
  13. Abrigue o mouse por mais 14 dias. Monitore o rato de perto após a cirurgia e observe pelo menos 1x todos os dias posteriormente. Realize uma necropsia imediatamente se algum rato morrer durante este período.

3. Colheita para imagem de aortas

  1. 14 dias após a cirurgia, sacrifique os ratos usando CO2.
  2. Abra as cavidades torácica e abdominal do rato ventralmente e abra o átrio direito.
  3. Perfundir os camundongos com tampão PBS através do ventrículo esquerdo do coração para remover o sangue na aorta e, em seguida, perfundir com paraformaldeído a 4%, conforme descrito anteriormente8.
  4. Colha a aorta sob o estereoscópio.
  5. Colocar as aortas colhidas em tubos contendo 5 mL de paraformaldeído a 4% por 48 h.
  6. Remova o tecido adventício e a gordura cuidadosamente sob o estereoscópio e prenda a aorta em uma placa de cera preta com agulhas de insetos.
  7. Adquira imagens da aorta.

4. Avaliação da degradação das fibras elásticas

  1. Corte os tecidos do aneurisma da aorta em criosecções seriadas (7 μm de espessura).
  2. Analise as fibras elásticas usando um kit de coloração elástica comercial van Gieson (EVG) de acordo com o protocolo do fabricante.
  3. Classifique a degradação da elastina. Grau 1: <25% de degradação; grau 2: 25% a 50% de degradação; grau 3: 50% a 75% de degradação; ou grau 4: >75% de degradação.

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Resultados

14 dias após a aplicação do CaPO4, os camundongos machos C57BL/6J foram sacrificados e suas aortas foram colhidas e limpas. A morfologia das aortas foi fotografada para visualizar a formação de AAA. Como mostra a Figura 1A-B, a aplicação do CaPO4 levou à dilatação da aorta abdominal infrarrenal. Histologicamente, o CaPO4 resultou em uma degradação dramática das fibras elásticas, como ilustrado pelas quebras de e...

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Discussão

A aplicação periaórtica de CaPO4 é uma abordagem robusta para induzir AAA em camundongos. Vários estudos têm utilizado o modelo CaPO4 e consistentemente relatado que este é um método rápido e reprodutível para estudar AAA em camundongos 7,9. Este modelo é considerado para recapitular parte das características do aneurisma da aorta humana e fornecer insights mecanicistas sobre a patogênese AAA, incluindo inflamação e degradaç?...

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Agradecimentos

Esta pesquisa foi apoiada pelo financiamento da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (NSFC, 81730010, 91839302, 81921001, 31930056 e 91529203) e do Programa Nacional de P & D de Chaves da China (2019YFA 0801600).

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Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
CaCl2MECKLINC805225
NaClBiomedSH5001-01
PBSHARVEYBIOMB5051
Small animal ventilatorRWDH1550501-012

Referências

  1. Kent, K. C. Abdominal aortic aneurysms. The New England Journal of Medicine. 371, 2101-2108 (2014).
  2. Patelis, N., et al. Animal models in the research of abdominal aortic aneurysms development. Physiological Research. 66 (6), 899-915 (2017).
  3. Gertz, S. D., Kurgan, A., Eisenberg, D. Aneurysm of the rabbit common carotid artery induced by periarterial application of calcium-chloride in vivo. Journal of Clinical Investigation. 81 (3), 649-656 (1988).
  4. Yamanouchi, D., et al. Accelerated aneurysmal dilation associated with apoptosis and inflammation in a newly developed calcium phosphate rodent abdominal aortic aneurysm model. Journal of Vascular Surgery. 56 (2), 455-461 (2012).
  5. Wang, Y. T., et al. Influence of apolipoprotein E, age and aortic site on calcium phosphate induced abdominal aortic aneurysm in mice. Atherosclerosis. 235 (1), 204-212 (2014).
  6. Zhao, G., et al. Unspliced xbp1 confers VSMC homeostasis and prevents aortic aneurysm formation via foxo4 interaction. Circulation Research. 121 (12), 1331-1345 (2017).
  7. Jia, Y., et al. Targeting macrophage TFEB-14-3-3 epsilon interface by naringenin inhibits abdominal aortic aneurysm. Cell Discovery. 8 (1), 21(2022).
  8. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. Journal of Visualized Experiments. (65), e3564(2012).
  9. Yu, B., et al. CYLD deubiquitinates nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase 4 contributing to adventitial remodeling. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 37 (8), 1698-1709 (2017).
  10. Altobelli, E., Rapacchietta, L., Profeta, V. F., Fagnano, R. Risk factors for abdominal aortic aneurysm in population-based studies: A systematic review and meta-analysis. International Journal of Environmental Research and Public Health. 15 (12), 2805(2018).
  11. Theivacumar, N. S., Stephenson, M. A., Mistry, H., Valenti, D. Diabetes mellitus and aortic aneurysm rupture: A favorable association. Vascular and Endovascular Surgery. 48 (1), 45-50 (2014).
  12. Tanaka, T., Takei, Y., Yamanouchi, D. Hyperglycemia suppresses calcium phosphate-induced aneurysm formation through inhibition of macrophage activation. Journal of the American Heart Association. 5 (3), 003062(2016).
  13. Lu, H., et al. Subcutaneous angiotensin II infusion using osmotic pumps induces aortic aneurysms in mice. Journal of Visualized Experiments. (103), e53191(2015).
  14. Urry, D. W. Neutral sites for calcium ion binding to elastin and collagen: A charge neutralization theory for calcification and its relationship to atherosclerosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 68 (4), 810-814 (1971).
  15. Li, Z. Q., et al. Runx2 (runt-related transcription factor 2)-mediated microcalcification is a novel pathological characteristic and potential mediator of abdominal aortic aneurysm. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 40 (5), 1352-1369 (2020).
  16. Kelly, M. J., Igari, K., Yamanouchi, D. Osteoclast-like cells in aneurysmal disease exhibit an enhanced proteolytic phenotype. International Journal of Molecular Sciences. 20 (19), 4689(2019).

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