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Method Article
Este estudo estabeleceu um método estável e eficiente para o isolamento, cultura e determinação funcional de células-tronco CD34+ residentes na parede vascular (CD34+ VW-SCs). Este método de isolamento fácil de seguir e eficaz em termos de tempo pode ser utilizado por outros investigadores para estudar os mecanismos potenciais envolvidos nas doenças cardiovasculares.
As células-tronco e progenitoras residentes na parede vascular CD34+ residentes (VW-SCs) são cada vez mais reconhecidas por seu papel crucial na regulação da lesão e reparo vascular. Estabelecer um método estável e eficiente para cultivar VW-SCs CD34+ murinos funcionais é essencial para investigar ainda mais os mecanismos envolvidos na proliferação, migração e diferenciação dessas células sob várias condições fisiológicas e patológicas. O método descrito combina triagem de esferas magnéticas e citometria de fluxo para purificar VW-SCs CD34+ residentes em cultura primária. As células purificadas são então identificadas funcionalmente por meio de coloração por imunofluorescência e imagem de Ca2+ . Resumidamente, as células vasculares da adventícia da aorta murina e da artéria mesentérica são obtidas por meio da fixação de blocos teciduais, seguida de subcultura até atingir uma contagem de células de pelo menos 1 × 107. Posteriormente, os VW-SCs CD34+ são purificados usando classificação magnética de esferas e citometria de fluxo. A identificação de VW-SCs CD34+ envolve a coloração por imunofluorescência celular, enquanto a multipotência funcional é determinada pela exposição das células a um meio de cultura específico para diferenciação orientada. Além disso, a liberação funcional interna de Ca2+ e a entrada externa de Ca2+ são avaliadas usando uma estação de trabalho de imagem disponível comercialmente em células carregadas com Fura-2 / AM expostas a ATP, cafeína ou tapsigargina (TG). Este método oferece uma técnica estável e eficiente para isolar, cultivar e identificar células-tronco CD34+ residentes na parede vascular, proporcionando uma oportunidade para estudos in vitro sobre os mecanismos regulatórios de VW-SCs e a triagem de medicamentos direcionados.
A parede vascular desempenha um papel fundamental no desenvolvimento vascular, na regulação homeostática e na progressão de doenças vasculares. Nos últimos anos, vários estudos revelaram a presença de várias linhagens de células-tronco nas artérias. Em 2004, o grupo do professor Qingbo Xu relatou pela primeira vez a existência de células-tronco vasculares / progenitoras na periferia da parede vascular adulta, expressando CD34, Sca-1, c-kit e Flk-11. Essas células-tronco vasculares exibem potencial de diferenciação e proliferação multidirecional. Em condições normais, eles permanecem relativamente quiescentes; no entanto, quando ativados por fatores específicos, eles podem se diferenciar em células musculares lisas, células endoteliais e fibroblastos. Alternativamente, eles podem regular a formação da matriz perivascular e dos microvasos por meio de efeitos parácrinos para promover o reparo ou remodelamento dos vasos lesados 2,3,4,5,6. Recentemente, descobriu-se que as células-tronco CD34+ residentes na parede vascular desempenham um papel na regeneração das células endoteliais após lesão do fio-guia da artéria femoral2. Consequentemente, o isolamento e a quantificação de VW-SCs CD34+ e o exame das características biológicas básicas das células-tronco CD34+ são cruciais para o estudo das vias de sinal envolvidas na regulação das VW-SCs CD34+.
Vários métodos de separação celular estão atualmente disponíveis, incluindo técnicas baseadas nas características da cultura celular ou propriedades físicas das células, como centrifugação por gradiente de densidade, que resulta em células classificadas contendo muitas células não-alvo e pureza relativamente baixa 7,8,9,10,11,12 . Outra técnica comumente usada é a classificação de células por fluorescência / magnética. A classificação de células ativadas por fluorescência (FACS) é um sistema complexo com altos requisitos técnicos, relativamente caro, demorado e potencialmente afeta a atividade das células selecionadas13,14. No entanto, a classificação de células ativadas por magnetismo (MACS) é mais eficiente e conveniente, com alta taxa de recuperação e atividade celular e menor impacto em aplicações a jusante8. Portanto, neste protocolo, aplicamos MACS para purificar CD34+ VW-SCs e identificamos as células por citometria de fluxo. O estabelecimento de métodos de isolamento baseados em MACS para estudar células-tronco da parede vascular seria inestimável. Em primeiro lugar, permite estudos experimentais genéticos e biológicos celulares. Em segundo lugar, o isolamento eficiente e a cultura de células-tronco residentes na parede vascular permitem a avaliação sistemática e a triagem dos fatores de sinalização que regulam as funções das células-tronco. Em terceiro lugar, a identificação de fenótipos cruciais em células-tronco fornece um importante "controle de qualidade" na avaliação do status celular. Assim, a identificação de métodos de purificação pode ser útil para aplicações semelhantes a células-tronco análogas derivadas de vasos.
Este relatório fornece uma demonstração detalhada de um método estável e confiável para a cultura de CD34+ VW-SCs, incluindo identificação celular e avaliação funcional realizada por citometria de fluxo, coloração por imunofluorescência e medição de sinalização de Ca2+ . Este estudo fornece uma base para pesquisas mais aprofundadas sobre a função dos CD34+ VW-SCs e seus mecanismos regulatórios em condições fisiológicas e patológicas.
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Este estudo foi aprovado e os animais foram manejados de acordo com as Diretrizes para o Manejo e Uso de Animais de Laboratório na China. A pesquisa seguiu rigorosamente os requisitos éticos dos experimentos com animais, com aprovação do Comitê de Ética Animal (Número de Aprovação: SWMU2020664). Camundongos C57BL/6 saudáveis de oito semanas de idade, de ambos os sexos, pesando entre 18-20 g, foram utilizados para o presente estudo. Os animais foram alojados no Centro de Animais de Laboratório da Southwest Medical University (SWMU).
1. Cultura de blocos teciduais de adventícia da aorta e artérias mesentéricas
2. Identificação celular por imunofluorescência
3. Diferenciação induzida e caracterização de VW-SCs CD34+
4. Detecção de sinalização intracelular de Ca2+ em células-tronco CD34+ vasculares
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Isolamento e purificação de CD34+ VW-SCs
A alta pureza dos VW-SCs CD34+ é obtida a partir da adventícia da artéria aórtica e mesentérica de camundongo por fixação tecidual e classificação de microesferas magnéticas. A porcentagem de células CD34+ na parede do vaso é geralmente de 10% a 30%. A citometria de fluxo confirma que a pureza das células CD34+ obtidas por classificação magnética de esferas é superior a 90% (Fig...
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Este estudo fornece um método rápido e conveniente para a obtenção de VW-SCs CD34+ funcionais da aorta e artérias mesentéricas de camundongos. Os VW-SCs CD34+ obtidos por este método têm atividade proliferativa e propriedades de diferenciação multidirecional. Os receptores de trifosfato inositol 1,4,5-trifosfato (IP3Rs), os receptores de rianodina (RyRs) e os canais de cálcio operados por armazenamento medeiam a liberação e entrada de Ca2+ em VW-SCs CD34+
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Os autores não têm conflitos de interesse a divulgar.
Este trabalho foi financiado por doações da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (nº 82070502, 31972909, 32171099), do Programa de Ciência e Tecnologia de Sichuan da Província de Sichuan (23NSFSC0576, 2022YFS0607). Os autores gostariam de agradecer a Qingbo Xu, da Universidade de Zhejiang, pela ajuda com a cultura de células, e os autores reconhecem a assistência científica e técnica da plataforma de citometria de fluxo na Southwest Medical University.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
2% gelatin solution | Sigma | G1393 | |
Anti-CD31 antibody | R&D | AF3628 | |
Anti-CD34 antibody | Abcam | ab81289 | |
Anti-c-kit antibody | CST | 77522 | |
Anti-FITC MicroBeads | Miltenyi Biotec | 130-048-701 | |
Anti-FITC MicroBeads MACS | Miltenyi Biotec | 130-048-701 | |
Anti-Flk- 1 antibody | Abcam | ab24313 | |
Anti-Ki67 antibody | CST | 34330 | |
Anti-PDGFRα antibody | Abcam | ab131591 | |
Anti-Sca- 1 antibody | Invitrogen | 710952 | |
CD140a (PDGFRA) Monoclonal Antibody (APA5), FITC | eBioscience Invitrogen | 11-1401-82 | |
CD31 (PECAM-1) Monoclonal Antibody (390), APC | eBioscience Invitrogen | 17-0311-82 | |
CD34 Antibody, anti-mouse, FITC, REAfinity Clone REA383 | Miltenyi Biotec | 130-117-775 | |
cell culture hood | JIANGSU SUJING GROUP CO.,LTD | SW-CJ-2FD | |
Centrifuge | CENCE | L530 | |
CO2 incubators | Thermofisher Scientific | 4111 | |
Confocal laser scanning microscope | Zeiss | zeiss 980 | |
DMEM High Glucose Medium | ATCC | 30-2002 | |
EBM-2 culture medium | Lonza | CC-3162 | |
FACSMelody | BD Biosciences | ||
FACSMelody™ System | BD | ||
Fetal bovine serum | Millipore | ES-009-C | |
FM-2 culture medium | ScienCell | 2331 | |
Fura-2/AM | Invitrogen | M1292 | |
Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor Plus 488 | Thermofisher Scientific | A32731 | |
Leukemia inhibitory factor | Millipore | LIF2010 | |
Microscope | Olympus | IX71 | |
MiniMACS Starting Kit | Miltenyi Biotec | 130-090-312 | |
Penicillin-Streptomycin-Amphotericin B Solution | Beyotime | C0224 | |
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 (Mouse BD Fc Block) | BD Pharmingen | 553141 | |
Stereo Microscope | Olympus | SZX10 | |
TILLvisION 4.0 program | T.I.L.L.Photonics GmbH | polychrome V | |
VWF Monoclonal Antibody (F8/86) | Thermofisher Scientific | MA5-14029 | |
β-Mercaptoethanol | Thermofisher Scientific | 21985023 |
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