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O presente estudo destaca as vantagens de empregar o método desenvolvido por Jeffrey e Humphrey para extrair e quantificar pigmentos lipossolúveis de microalgas. Este método serve como uma ferramenta valiosa para avaliar a influência dos fatores de crescimento na produção de clorofila e no conteúdo celular nesses organismos.
As microalgas contêm dois grupos principais de pigmentos: clorofilas e carotenóides. A clorofila é um pigmento verde que absorve a energia da luz e a transforma em energia química para facilitar a síntese de compostos orgânicos. Este pigmento serve como uma valiosa fonte primária para produtos de insumos biotecnológicos nas indústrias alimentícia, farmacêutica e cosmética devido às suas altas propriedades antioxidantes e capacidade de coloração. O objetivo desta pesquisa foi avaliar o efeito de fatores de crescimento (concentração de CO2 , cor clara e intensidade de luz) por meio de um delineamento experimental de Taguchi L4 sobre o crescimento celular e o conteúdo celular de clorofila a e b em Chlorella sorokiniana, seguido da validação do método utilizando Haematococcus pluvialis microalgas como modelo de estudo adicional. O crescimento celular foi quantificado usando a técnica espectrofotométrica de densidade óptica em um comprimento de onda de 550 nm. Para a quantificação das clorofilas, obteve-se um extrato celular utilizando uma solução de acetona pura a 90% e, posteriormente, as concentrações de clorofilas a e b foram quantificadas por meio de técnicas espectrofotométricas nos comprimentos de onda de 647 nm e 664 nm, de acordo com o método descrito por Jeffrey e Humphrey. Os resultados experimentais indicaram que o controle de condições de baixa adição de CO2 , luz roxa e baixa intensidade de luz aumenta o crescimento celular e a concentração de clorofilas a e b dentro das células. A implementação deste método de quantificação de clorofila permite uma determinação rápida, simples e precisa do teor de clorofila, uma vez que os comprimentos de onda utilizados estão nos picos de absorbância de ambos os tipos de clorofilas, tornando esta técnica facilmente reprodutível para qualquer microalga em estudo.
Nos últimos anos, os crescentes problemas ambientais causados pelas atividades antrópicas e seus efeitos adversos na saúde e no equilíbrio dos ecossistemas têm impulsionado a busca por sistemas de produção mais eficientes e ecologicamente corretos. Isso acelerou os processos nas indústrias e promoveu a implementação de tratamentos de biorremediação e o desenvolvimento de biocompostos para mitigar esses efeitos nocivos1.
Este contexto tem levado a um crescimento significativo no estudo das microalgas, impulsionado pela necessidade de encontrar soluções inovadoras para os desafios ambi....
1. Preparação de meios de cultura e preparação de inóculo
Para observar a eficiência da técnica em detectar variações na concentração celular de clorofila e avaliar o efeito dos fatores de crescimento em C. sorokiniana, foi estabelecido um delineamento experimental Taguchi L4 , avaliando a adição de volume de CO2 , cor clara e intensidade de luz. Cada fator foi avaliado em níveis baixo e alto, conforme apresentado na Tabela 1, nas condições definidas pelo delineamento experimental da
O estudo comparativo entre H. pluvialis e C. sorokiniana revelou diferenças significativas na dinâmica de produção de clorofila. Enquanto H. pluvialis exibiu uma diminuição na concentração de clorofila ao longo do experimento, C. sorokiniana mostrou um aumento constante. Além disso, houve inicialmente uma menor proporção de clorofila a em ambas as espécies, mas essa proporção se inverteu em condições particulares de crescimento.......
Os autores não têm nada a divulgar.
Os autores agradecem o financiamento parcial do TecNM no âmbito da Chamada de Pesquisa Científica, Desenvolvimento Tecnológico e Inovação (16898.23-P) para os Institutos Tecnológicos Federais. Eles também agradecem o apoio do Instituto de Ciencia, Tecnología e Innovación del Estado de Michoacán de Ocampo (FCCHTI23_ME-4.1.-0001).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
C3H6O | Meyer | 67-64-1 | Acetone 90% |
15 mL tube | Biologix | 10-9502 | Test tube |
2510-DTH | Branson | D-73595 | Sonicator |
5 mL screw cap test tube | Kimax | 45066-13100 | Test tube |
50 mL centrifuge tube | Biologix | 10-9151 | Test tube |
Aluminum foil | Reynolds | 611 standard, 12" x 1000 feet | Test tube cover |
CaCl2 | Meyer | 0925-250 | Calcium Chloride |
Centrifuge | Dynamica | 14 R | Centrifuge Refrigerated |
CoCl2 | Merck | 1057-100 | Cobalt dichloride |
FeCl3 | Merck | 157740 | Iron(III) Chloride |
K2HPO4 | Meyer | 2051-250 | Dipotassium Phosphate |
KH2PO4 | Meyer | 2055-250 | Monopotassium Phosphate |
MgSO4 | Meyer | 1605-250 | Magnesium Sulphate |
Micropipette | LabNet | Model Beta-Pette | Micropipette |
MnCl2 | Merck | 429449 | Manganese(II) Chloride |
Na2 EDTA | Merck | 200-449-4 | Edatamil, Edetato Disodium Salt Dihydrate |
Na2MoO4 | Merck | 243655 | Sodium Molybdate |
NaCl | Meyer | 2365-500 | Sodium Chloride |
NaNO3 | Meyer | 2465-250 | Sodium Nitrate |
RGB LED stripe | Steren | GAD-LED2 | Light source |
Spectrophotometer | PerkinElmer | Model Lambda35 | Spectrophotometer |
spectroradiometer | Gigahertz-Optik | model BTS256 | |
Vortex | Scientific Industries | Vortex-Genie® 2 | Vortex |
ZnCl2 | Merck | 208086 | Zinc Chloride |
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