Para começar, prepare todos os materiais necessários para o ensaio. Para os padrões GSH, adicione 40 microlitros de tampão glutationa total a cada poço. Em seguida, aspire o meio de cada poço de uma placa contendo o pellet celular e lave a célula três vezes com PBS gelado.
Preparar a gama de calibração com 10 microlitros de glutationa e água bidestilada em branco em triplicatas. Para a quantificação desejada do alvo, incubar as células lavadas com as misturas apropriadas em um agitador orbital a 300 RPM por dois minutos. Em seguida, adicione cinco microlitros de 0,01 molar, solução de 2-carboxietil fosfina a cada poço e incube novamente por 10 minutos.
Em seguida, centrifugue a placa a 200 G por cinco minutos e transfira 25 microlitros de cada poço de amostra para uma placa transparente separada de 96 poços para quantificação de proteínas. Em seguida, adicione 170 microlitros de solução de orto-ftalaldeído de trabalho a cada poço contendo 30 microlitros de amostras. Para proteger a placa da luz, cubra-a bem com uma folha e incube-a no agitador orbital por 15 minutos.
Finalmente, leia a fluorescência usando um leitor de placas com excitação de 340 nanômetros e emissão de 450 nanômetros. As células A549 tratadas com vários nanomateriais apresentaram diferentes proporções de dissulfeto de glutationa neste ensaio, e o maior valor foi observado para as células tratadas com 125 microgramas por mililitro de prata.