Os autores gostariam de agradecer à ArrayJet por seus conselhos especializados em relação à robótica de microarrays. SS e JS gostariam de agradecer o apoio do Fundo Fundamental 2022 (FF65/004), Universidade de Chiang Mai.

As principais etapas experimentais do método MAPP estão resumidas na Figura 1.
1. Preparação das amostras
NOTA: Aqui, o método é aplicado aos tecidos vegetais para fins ilustrativos. As plantas selecionadas foram Coffea arabica, Allium sativum var. As plantas foram selecionadas por sua importância comercial. Seu processamento para consumo humano gera resíduos agroindustriais atualmente subutilizados, que podem fornecer uma fonte de produtos de valor agregado, incluindo glicanos puros. Assim, o MAPP foi aplicado para caracterizar a composição glicânica da biomassa do resíduo vegetal para fins de bioprospecção.
<ol><li>Separe o material vegetal em diferentes tecidos (por exemplo, raiz, caule e folhas).</li>
	<li>Secar os tecidos vegetais em estufa a 40 °C durante 12-24 h (diminuir/aumentar o tempo de acordo com a amostra). Alternativamente, congele rapidamente as amostras em nitrogênio líquido e, posteriormente, liofilize por ~4 dias.</li>
	<li>Homogeneizar as amostras para um pó fino utilizando um pilão e argamassa ou um lisador mecânico de tecidos (ver Tabela de Materiais) com um rolamento de esferas em cada tubo. NOTA: Para tecidos vegetais frescos, recomenda-se a secagem ou liofilização antes da homogeneização. Geralmente, a homogeneização com pilão e argamassa é suficiente para a maioria das amostras secas. Para amostras particularmente resistentes, como grãos, leguminosas e alimentos processados, como massas, o congelamento instantâneo em nitrogênio líquido pode aumentar a velocidade e a eficiência da homogeneização da amostra. Descobrimos que a homogeneização mecânica é compatível com quase todos os tipos de amostra, é consideravelmente mais rápida e menos trabalhosa, e efetivamente minimiza o risco de contaminação cruzada da amostra pelo uso repetido do mesmo equipamento (i.e., pilão e argamassa).</li>
</ol>2. Preparação de resíduo insolúvel em álcool (AIR)
<ol><li>Adicionar 1,5 mL de etanol a 70% (v/v) a 50-100 mg de material de amostra seco ao ar e homogeneizado.</li>
	<li>Vórtice completamente para misturar e, em seguida, centrifugar a 10.000 x g por 10 minutos à temperatura ambiente. Descarte o sobrenadante resultante usando uma pipeta e retenha o pellet.</li>
	<li>Ao restante do pellet, adicionar 1,5 mL de metanol e clorofórmio (1:1 [v/v]). Vórtice, centrífuga e descarte o sobrenadante, conforme etapa 2.2.</li>
	<li>Ao restante do pellet, adicionar 1,5 mL de acetona a 100%. Vórtice, centrífuga e descarte o sobrenadante, conforme etapa 2.2.</li>
	<li>Coloque o pellet resultante durante a noite em um exaustor para permitir que a acetona residual evapore ou em uma centrífuga a vácuo até secar. NOTA: O material AIR pode ser armazenado à temperatura ambiente até que seja necessário.</li>
</ol>3. Extração de glicanos
NOTA: Se possível, execute todas as etapas de extração em um lisador de tecido com um rolamento de esferas em cada tubo para ajudar na ressuspensão. Se um lisador de tecido não estiver disponível, as extrações podem ser realizadas com agitação ou agitação contínuas. Pode ser necessário estender o tempo de extração se isso não for possível.
<ol><li>A 10 mg de material AIR, adicionar 30 μL/mg de ácido ciclohexanodiaminotetracético 50 mM (CDTA; ver Tabela de Materiais), pH 7,5.</li>
	<li>Agitar a 27 Hz por 2 min, seguido de 10 Hz por 2 h.</li>
	<li>Centrifugar a 10.000 x g por 10 min a 4 °C. Retenha o sobrenadante resultante, adicione-o a um tubo de microcentrífuga estéril e armazene-o a 4 °C num agitador rotativo.</li>
	<li>Ao pellet residual, adicionar 30 μL/mg de NaOH 4 M + NaBH a 0,1 % (p/v)4. CUIDADO: NaBH4 é tóxico se ingerido. Use equipamentos de proteção individual (EPIs). Alça sob um exaustor. Evite a formação de poeira. Evite respirar poeira. Não permita que o produto entre em contato com a água.</li>
	<li>Repita as etapas 3.2 a 3.3. Lavar o pellet residual duas ou três vezes com dH2O para remover o NaOH residual.</li>
	<li>Adicionar 30 μL/mg de celulase (de preferência GH5 endo-1,4-β-glucanase, em tampão enzimático adequado, conforme recomendado pelo fabricante; ver Tabela de Materiais) ao pellet e incubar à temperatura ótima da enzima por 16 h.</li>
	<li>Centrifugar as amostras a 10.000 x g durante 10 min a 4 °C. Retenha o sobrenadante, transfira para tubos de microcentrífuga limpos e armazene a 4 °C em um agitador rotativo. Uma vez extraídas, as amostras devem ser impressas o mais rapidamente possível.</li>
	<li>Centrifugar novamente todos os extractos armazenados a 10 000 x g durante 10 min a 4 °C. NOTA: As amostras devem estar isentas de partículas e detritos. Passe por um filtro de spin de 0,2 μm antes da impressão do microarray, se necessário. Amostras particularmente viscosas são incompatíveis com a análise de microarrays, pois os capilares do microarrayer e a cabeça de impressão podem ficar facilmente entupidos. Regra geral, os utilizadores devem poder pipetar todas as amostras destinadas à impressão com uma pipeta padrão de baixo volume.</li>
</ol>4. Elaboração de normas
<ol><li>Preparar soluções de 1 mg/mL de padrões glicanos definidos (Tabela 1) em dH2O estéril. Se usar paquiman como padrão, dissolver em NaOH 4 M em vez disso e neutralizar com ácido acético glacial após solubilização.</li>
	<li>Conservar os padrões preparados durante a noite a 4 °C num agitador rotativo para permitir a solubilização completa.</li>
	<li>Centrifugar todos os padrões por 10 min a 10.000 x g a 4 °C para pellet quaisquer detritos. O sobrenadante resultante é usado para impressão subsequente.</li>
</ol>5. Impressão de microarray
<ol><li>Preparar uma diluição de 1:20 (v/v) de tinta indiana preta/tinta de desenho em tampão do sistema de glicerol (GSB; combinar 47% glicerol, 52,9% dH2O, 0,06% Triton X-100 e 0,04% biocida [0,15%-0,17% nitrato cúprico e 1,4%-2,0% nitrato de magnésio em água] e esterilizar o filtro) (ver Tabela de Materiais) e centrifugar por 10 min a 15.000 x g (temperatura ambiente). NOTA: A solução de tinta é necessária para criar uma borda superior e inferior ao redor das amostras impressas, para que os microarrays impressos possam ser detectados visualmente na membrana. No entanto, é provável que a solução de tinta contenha sedimentos. Todas as soluções devem estar isentas de partículas para impressão, por isso evite perturbar o sedimento durante a pipetagem. Descarte e prepare fresco quando isso não for mais possível. A solução não pode ser facilmente filtrada para remover partículas.</li>
	<li>Adicionar 40 μL de solução de tinta e GSB à primeira seção da primeira placa de 384 poços (Figura 2).</li>
	<li>Adicionar 25 μL de GSB a todos os poços de diluição 1 (D1). Adicionar 40 μL de GSB a todos os poços de diluição 2, 3 e 4 (D2-D4).</li>
	<li>Diluir as amostras de glicano extraídas e os substratos glicanos definidos 1:1 (v/v) com GSB adicionando 25 μL de amostra de glicano extraída aos poços D1 em ordem.</li>
	<li>Diluir serialmente cada amostra quatro vezes, retirando 10 μL da amostra do poço D1 e adicionando ao poço D2. Aspirar suavemente com uma pipeta para misturar.</li>
	<li>Repita o processo retirando 10 μL de amostra do poço D2 e adicionando-a ao poço D3.</li>
	<li>Repita bem para o D4. Após a mistura, descarte 10 μL do poço D4 para que cada poço contenha um volume final de 40 μL.</li>
	<li>Adicionar 40 μL de solução de tinta e GSB ao bloco final da placa final.</li>
	<li>Cubra as placas com uma tampa de placa adesiva e centrífuga por 10 min a 3.000 x g (temperatura ambiente). Certifique-se de que nenhuma bolha permaneça após a centrifugação e repita se necessário.</li>
	<li>Usando um robô de impressão de microarray piezoelétrico sem contato, imprima as amostras na membrana de nitrocelulose (consulte a Tabela de Materiais) seguindo as etapas abaixo. NOTA: Abaixo estão as ações recomendadas para uma ótima qualidade de impressão; no entanto, os parâmetros específicos necessários dependerão, em última instância, do instrumento utilizado. Recomendamos que os usuários entrem em contato com o fabricante do instrumento para discutir as personalizações apropriadas e as configurações de impressão necessárias para seu dispositivo.<ol><li>Antes da impressão, esvazie o reservatório tampão de resíduos e encha o reservatório tampão limpo com GSB limpo, conforme necessário. Ligue o instrumento e deixe-o estabilizar por >10 min se tiver um sistema integrado de controle de umidade e temperatura. Ligue o microarrayer e inicialize o sistema. NOTA: Recomenda-se a execução de um teste para determinar a pressão interna do instrumento. Se a pressão for muito baixa, pode ser necessário realizar uma purga de alta pressão. Novamente, entre em contato com o fabricante do instrumento para discutir o funcionamento específico do instrumento específico.</li>
		<li>Limpe a cabeça de impressão e os capilares várias vezes com GSB para remover detritos e potenciais contaminantes. Execute uma execução de impressão de teste carregando uma placa de GSB sozinha ou configurando o instrumento para imprimir diretamente do reservatório de buffer limpo, ignorando a aspiração da amostra de uma placa carregada. OBS: Não é necessário realizar a impressão do teste utilizando membrana de nitrocelulose; Lâminas limpas de microscópio são suficientes e oferecem a vantagem de que o tamanho, a forma e a qualidade do ponto podem ser avaliados visualmente antes da impressão da amostra.</li>
		<li>Ao imprimir amostras de glicano extraídas, programe o sistema para lavar com GSB limpo entre cada amostra. NOTA: Normalmente, o volume de amostra por ponto impresso é de 100 pL a 10 nL, e o tamanho do spot varia de 20 μm a 100 μm, dependendo do volume de amostra selecionado. A impressão de 100 microarrays a partir de uma placa de 384 poços de fonte leva aproximadamente 40 minutos, incluindo a descarga do sistema. Os microarrays resultantes terão aproximadamente 1cm2 de tamanho. Placas adicionais aumentarão o comprimento da matriz em aproximadamente 1 cm por placa. Um esquema do projeto de microarray impresso é mostrado na Figura 3. Uma vez impressos, os microarrays estão prontos para uso imediato e podem ser armazenados por vários anos. Se o trabalho de impressão precisar ser repetido por qualquer motivo, devido à potencial evaporação das amostras durante a impressão, recomenda-se que uma nova placa de amostra seja carregada e a placa original descartada.</li>
		<li>Uma vez por semana, limpe bem a cabeça de impressão e os capilares. Faça isso carregando um poço de 384 contendo uma diluição de 1:20 de NaOH concentrado em GSB e execute uma impressão de 40 min a 1 h em lâminas de microscópio. Os utilizadores devem certificar-se de que esta solução de limpeza é compatível com o seu instrumento antes de prosseguir.</li>
	</ol></li>
	<li>Salve o arquivo de grade exclusivo (arquivo .gal) produzido para o microarray impresso pronto para análise downstream.</li>
</ol>6. Sondagem de microarrays
<ol><li>Recorte microarrays impressos individuais e idênticos da membrana de nitrocelulose e coloque-os em um recipiente de tamanho apropriado para sondagem (por exemplo, uma placa de microtitulação de 12 ou 24 poços) (consulte a Tabela de Materiais). A matriz deve ficar plana na base do vaso. Um microarray é necessário por teste e representa uma réplica técnica.</li>
	<li>Para reduzir a ligação inespecífica, incubar os microarrays por 1 h em tampão de bloqueio MP-TBST (1x solução salina tamponada com Tris, pH 7,5, + 0,1% [v/v] TWEEN 20 [TBST] e suplementado com 5% [p/v] de leite em pó desnatado; ver Tabela de Materiais) em um agitador rotativo/balanço. Certifique-se de que o volume seja suficiente para submergir todo o array.</li>
	<li>Após a incubação, remova o MP-TBST e substitua-o por um novo volume de MP-TBST.</li>
	<li>Incubar as matrizes com anticorpos monoclonais (mAbs) ou CBMs marcados com His, ou outros GRMPs (por exemplo, lectinas), diluídos 1:10-1:1.000 (conforme especificado pelo fabricante; ver Tabela de Materiais) em MP-TBST por 2 h em um agitador rotativo/de balanço.</li>
	<li>Após a incubação, remova a solução de sonda molecular e cubra as matrizes em TBST limpo, garantindo que as matrizes estejam totalmente submersas. Para remover a solução de sonda residual, remova imediatamente o TBST e substitua por um volume fresco. Coloque as matrizes em um agitador giratório/oscilante por 5 min. Após 5 min, retire o TBST, substitua por um volume fresco e coloque em um agitador giratório/balanciador por 5 min. NOTA: Este processo deve ser repetido três vezes, não incluindo a adição inicial e remoção imediata de TBST.</li>
	<li>Incubar as matrizes com anticorpos secundários conjugados com fosfatase alcalina (anti-rato, anti-rato, anti-coelho, anti-His, conforme apropriado; ver Tabela de Materiais) diluídos 1:1.000 em MP-TBST por 2 h em um agitador de balanço/rotação. NOTA: Anticorpos secundários conjugados à peroxidase de raiz forte também são adequados, usados em conjunto com substrato tetrametilbenzidina (TMB)/peróxido de hidrogênio para o desenvolvimento de cores.</li>
	<li>Após a incubação, repetir o procedimento de lavagem, de acordo com o passo 6.5, para remover anticorpos secundários não especificamente ligados.</li>
	<li>Cubra as matrizes em solução de desenvolvimento de cor de tetrazólio nitro-azul (NBT)/5-bromo-4-cloro-3-indolil-fosfato (BCIP) (ver Tabela de Materiais) para a detecção cromogênica da ligação de anticorpos. Deixe até que manchas de precipitação roxas se desenvolvam nos locais de ligação ao antígeno (tipicamente 5-30 min, no entanto, as matrizes devem ser monitoradas de perto para evitar a saturação excessiva, pois a reação pode ocorrer rapidamente). CUIDADO: O BCIP é prejudicial quando em contato com a pele e pode causar irritação respiratória. Use EPI. Evite a formação de poeira. Evite respirar poeira.</li>
	<li>Para terminar a reação, submerja as matrizes em água limpa da torneira e lave extensivamente.</li>
	<li>Coloque as matrizes entre o papel manchado durante a noite à temperatura ambiente para secar.</li>
	<li>Descarte as matrizes com defeitos óbvios e repita o protocolo de sondagem nessas instâncias (Figura 4).</li>
</ol>7. Análise e quantificação
<ol><li>Digitalize os arrays desenvolvidos em uma resolução de 2.400 pontos por polegada (dpi) usando um scanner de mesa. Converta as imagens em arquivos TIFF e, em seguida, em negativos.</li>
	<li>Usando software de análise de microarray (consulte Tabela de Materiais), sobreponha o arquivo de grade .gal exclusivo em cada imagem de microarray para calcular a intensidade de cor do ponto produzido em cada local de ligação de antígeno e subtrair o plano de fundo local.</li>
	<li>Exporte os dados da grade como um arquivo .txt. Eles podem então ser importados manualmente para uma planilha do Excel para análise.</li>
	<li>Gere um valor médio de intensidade de sinal pontual para cada amostra calculando a média da intensidade pontual primeiro em cada diluição da amostra e, em seguida, em todas as réplicas biológicas incluídas.</li>
	<li>Atribua um valor de 100 à maior intensidade média de sinal de ponto e normalize os dados restantes de acordo. NOTA: As intensidades médias normalizadas do sinal do ponto podem então ser apresentadas como um mapa de calor da abundância relativa de epítopos glicanos usando a função de formatação condicional no Excel33 ou usando a função geom_tile no pacote R ggplot240,41.</li>
</ol>

Elucidando a estrutura e a ocorrência de glicanos usando o perfil de polímero de microarray

Os autores declaram a inexistência de conflitos de interesse.

A técnica MAPP aqui descrita é atualmente um método bem estabelecido para análise glicana. Os princípios básicos foram descritos pela primeira vez em 200711, mas a técnica tem passado por um desenvolvimento contínuo, a fim de capitalizar as mais recentes inovações em tecnologia de microarrays, desenvolvimento de sondas moleculares e avanços em nosso entendimento da bioquímica glicana. Em geral, os glicanos, especialmente os polissacarídeos, são mais difíceis de analisar do que proteínas e nucleotídeos devido à sua complexidade estrutural e heterogeneidade45, bem como ao fato de não poderem ser facilmente sequenciados ou sintetizados1. Em muitos casos, nenhuma técnica única pode decifrar a complexidade glicana conclusivamente; assim, o MAPP é frequentemente usado com outros métodos. Essa é uma das razões pelas quais a preparação do AIR é geralmente escolhida como ponto de partida para a MAPP, uma vez que a AR é compatível com a maioria dos outros métodos de análise glicânica34, facilitando a comparação subsequente de conjuntos de dados.
Devido à homogeneização da amostra antes da preparação do AIR, algumas informações espaciais são invariavelmente perdidas. Entretanto, como os polissacarídeos são liberados sequencialmente das amostras, a presença de epítopos nas frações obtidas fornece informações sobre a arquitetura molecular e a composição dessa amostra17. Assim, a seleção de um regime de extração adequado é fundamental para o sucesso do método. Múltiplos parâmetros determinam a adequação do método de extração: estrutura celular, tempo, temperatura, pH, pressão, força iônica do solvente e finura da amostra sólida de partículas49. Recomenda-se que uma gama de solventes cada vez mais agressivos seja usada para maximizar a probabilidade de extrair com sucesso os glicanos constituintes e construir uma imagem composicional representativa da amostra. Para a maioria das amostras, CDTA, NaOH e celulase são suficientes para remover polissacarídeos de armazenamento e de parede celular derivados de plantas 33,50,51,52. Para algumas amostras de tecido, um regime de extração híbrido que também inclui CaCl2, HCl e Na2CO3 demonstrou ser bem-sucedido53, enquanto amostras de microalgas marinhas podem exigir a adição de ácido etilenodiaminotetracético (EDTA)10.
Os microarrays devem incluir uma gama de padrões de glicanos puros e definidos para serem usados como controles positivos5. As normas incluídas devem ser modificadas de acordo com a natureza da amostra. Uma vez impressos, os GRMPs apropriados precisam ser selecionados. A geração de mAbs de hibridomas para estruturas polissacarídicas é desafiadora54; Os anticorpos ligantes de glicanos são difíceis de aumentar e podem ter baixa afinidade55. Felizmente, informações de sequência gênica para CBMs podem ser obtidas com relativa facilidade para expressão recombinante4 e engenharia de suas especificidades de ligação56,57. Embora tenha sido desenvolvido um impressionante catálogo de GRMPs, com a maioria agora disponível a partir de fontes comerciais, em relação à diversidade de estruturas glicânicas existentes na natureza, apenas uma pequena proporção foi produzida e caracterizada com sucesso58. Isso pode limitar a capacidade de detectar e discriminar entre certas estruturas. É aconselhável realizar um experimento inicial de sondagem usando uma ou duas sondas representativas de cada estrutura glicana principal prevista para estar presente, para as quais a especificidade de ligação é bem caracterizada. Em experimentos de sondagem subsequentes, a lista de sondas pode ser expandida para cobrir uma gama mais ampla de glicanos e aprofundar estruturas finas.
Apesar de mundano, garantir que os microarrays sejam lavados completamente após cada etapa de incubação é fundamental para o sucesso do procedimento de sondagem. A remoção ineficaz de sondas não especificamente ligadas provavelmente obscurecerá o resultado, causando um alto sinal de fundo após o desenvolvimento da cor. Neste caso, é necessário repetir o procedimento de sondagem, começando com um novo microarray. Além disso, as matrizes devem ser tocadas com moderação e apenas segurando as bordas com pinças; A membrana de nitrocelulose é quebradiça e facilmente danificada. A solução de revelação de cores se acumula em trincas e vincos, causando saturação excessiva, o que impede a análise da matriz.
O MAPP é rápido, adaptável e conveniente. Este método é compatível com glicanos animais, microbianos ou vegetais derivados de qualquer sistema biológico ou industrial, desde que possam ser extraídos e imobilizados em nitrocelulose, e para os quais se tenha sondas moleculares apropriadas. Os dados gerados fornecem informações composicionais detalhadas, semiquantitativas, que não podem ser facilmente obtidas por meio de outros métodos de análise glicana.

Os glicanos são onipresentes em todos os domínios da vida e exibem uma diversidade incomparável em estrutura e função em comparação com outras macromoléculas1. No entanto, devido à sua complexidade, variabilidade na biossíntese e ligações glicosídicas, e a escassez de métodos apropriados para dissecar estruturas glicânicas, nossa compreensão dessa diversidade em estruturas e funções é relativamente limitada2.
Muitas técnicas de análise de glicanos são destrutivas e requerem a decomposição dos glicanos em seus monossacarídeos constituintes, o que pode obscurecer contextos tridimensionais e biológicos relevantes3. Por outro lado, anticorpos monoclonais (mAbs), módulos de ligação a carboidratos (CBMs), lectinas, aglutininas virais e adenas microbianas, conhecidas coletivamente como sondas moleculares de reconhecimento de glicano (GRMPs)4, reconhecem e se ligam a epítopos específicos e podem ser usados como ferramentas para detectar e discriminar glicanos dentro de matrizes multiglicânicas complexas 5,6.
Aqui, apresentamos o perfil polimérico de microarranjos (MAPP), um método rápido, versátil e não destrutivo para análise de glicanos que é aplicável a um amplo espectro de amostras biológicas. O método visa fornecer uma tecnologia robusta e de alto rendimento para análise de glicanos de diversos sistemas biológicos e industriais/comerciais. O MAPP une a especificidade de reconhecimento de sondas moleculares direcionadas a glicanos com a tecnologia de triagem de microarrays reprodutível e de alto desempenho para permitir que milhares de interações moleculares sejam perfiladas em paralelo. O resultado dessa abordagem é a compreensão diagnóstica sobre a composição e abundância relativa de glicanos dentro de uma amostra ou tecido de interesse.
O MAPP pode ser utilizado como método independente, isolado ou em conjunto com outras técnicas bioquímicas, como a microscopia de imunofluorescência 7,8,9 e a análise de monossacarídeos ou ligações10,11. A técnica também pode ser usada para mapear especificidades de epítopos de novos GRMPs, usando matrizes impressas com padrões de oligossacarídeos puros e estruturalmente bemdefinidos12. Uma grande vantagem do MAPP sobre outros métodos, como o ensaio imunoenzimático (ELISA), é sua compatibilidade com pequenos volumes de amostra13,14. Além disso, o MAPP oferece análise de rendimento significativamente maior15 e fornece uma forma eficaz de preservação da amostra, pois as amostras impressas são secas e estáveis quando imobilizadas em nitrocelulose16.
A ligação de GRMPs é geralmente dependente da presença de um número de resíduos de açúcar contíguos que coletivamente formam um sítio de ligação (epítopo) que é exclusivo de uma classe particular de polissacarídeos (xilana, manana, xiloglucano, etc.) 17. Em contraste, os resíduos individuais de açúcar (xilose, manose, glicose) que são quantificados usando a maioria das técnicas bioquímicas, por exemplo, composição de monossacarídeos ou análise de metilação, podem ser componentes de múltiplas classes de polissacarídeos e, portanto, difíceis de atribuir18.
O MAPP foi desenvolvido em resposta a uma lacuna tecnológica, ou seja, a capacidade de analisar rapidamente múltiplos glicanos de uma variedade de fontes usando pequenas quantidades de material. O MAPP capitaliza o extenso repertório de GRMPs que vem sendo desenvolvido e caracterizado ao longo das últimas três décadas 12,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28,29,30,31,32. O desenvolvimento do MAPP tem sido um processo iterativo, com a técnica sendo constantemente refinada e otimizada. Atualmente, existe uma vasta literatura descrevendo a aplicação do MAPP em vários sistemas naturais e industriais, onde os glicanos desempenham papéis centrais 5,6,9,10,21,33,34,35,36,37,38,39. Aqui, descrevemos o estado atual da arte do MAPP.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>1,3:1,4-&#946;-D-Glucan, Lichenan (icelandic moss)</td>
			<td>Megazyme</td>
			<td>P-LICHN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1,4-&#946;-D-Mannan</td>
			<td>Megazyme</td>
			<td>P-MANCB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>384-well microtiter plate</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>M1686</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5-bromo-4-chloro-3-indolyl-phosphate (BCIP)</td>
			<td>Melford</td>
			<td>B74100-1.0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetone</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>270725</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alkaline Phosphatase AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG (H+L)</td>
			<td>Jackson ImmunoResearch</td>
			<td>115-055-003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alkaline Phosphatase AffiniPure Goat Anti-Rat IgG (H+L)</td>
			<td>Jackson ImmunoResearch</td>
			<td>112-055-003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alkaline Phosphatase AffiniPure Rabbit Anti-His Tag</td>
			<td>Jackson ImmunoResearch</td>
			<td>300-055-240</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arabinoxylan (wheat)</td>
			<td>Megazyme</td>
			<td>P-WAXYL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Array-Pro Analyzer Software</td>
			<td>Media Cybernetics</td>
			<td>Version 6.3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bacillus sp. Cellulase 5A (BCel5A)</td>
			<td>NZYTech</td>
			<td>CZ0564</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BAM antibodies</td>
			<td>SeaProbes</td>
			<td>Various</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Black drawing ink (indian ink)</td>
			<td>Winsor &#38; Newton</td>
			<td>GWD030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carbohydrate binding modules</td>
			<td>NZYTech</td>
			<td>Various</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CCRC antibodies</td>
			<td>CarboSource</td>
			<td>Various</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CDTA</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>319945</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chloroform</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>PHR1552</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>1.11727</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Galactan (potato)</td>
			<td>Megazyme</td>
			<td>P-GALPOT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Galactomannan (carob)</td>
			<td>Megazyme</td>
			<td>P-GALML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycerol solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>49781-5L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gum tragacanth (legumes)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G1128</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>INCh antibodies</td>
			<td>INRA</td>
			<td>Various</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LM and JIM antibodies</td>
			<td>PlantProbes</td>
			<td>Various</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Marathon Argus Microarray Printer</td>
			<td>ArrayJet</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methanol</td>
			<td>Sigma&#160;</td>
			<td>34860</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monoclonal antibodies</td>
			<td>Biosupplies Australia</td>
			<td>Various</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaBH4</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>452882</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaOH</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S5881</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nitro-blue tetrazolium (NBT)</td>
			<td>Melford</td>
			<td>N66000-1.0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nitrocellulose membrane</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>88018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pectin (degree of methyl esterification 46%)</td>
			<td>Danisco</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ProClin 200</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>48171-U</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rhamnogalacturonan (soybean pectic fibre)</td>
			<td>Megazyme</td>
			<td>P-RHAGN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rotating mixer</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>88-861-050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rotating/rocking Shaker</td>
			<td>Cole-Parmer</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Skimmed milk powder</td>
			<td>Marvel</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spin filter</td>
			<td>Costar Spin-X</td>
			<td>8160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless steel beads</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>69989</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TissueLyser II</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>85300</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>93362</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T8787-250ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tween 20</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P9416-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylan (beechwood)</td>
			<td>Megazyme</td>
			<td>P-XYLNBE</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xyloglucan (tamarind)</td>
			<td>Megazyme</td>
			<td>P-XYGLN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#946;-Glucan (oat)</td>
			<td>Megazyme</td>
			<td>P-BGOM</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

microarray polymer profiling (mapp) for high-throughput glycan analysis

Microarray polymer profiling (MAPP) é uma abordagem robusta e reprodutível para determinar sistematicamente a composição e abundância relativa de glicanos e glicoconjugados dentro de uma variedade de amostras biológicas, incluindo tecidos vegetais e algais, materiais alimentares e amostras humanas, animais e microbianas. A tecnologia de microarrays sustenta a eficácia deste método fornecendo uma plataforma de triagem miniaturizada e de alto rendimento, permitindo que milhares de interações entre glicanos e sondas moleculares direcionadas a glicanos altamente específicas sejam caracterizadas concomitantemente, usando apenas pequenas quantidades de analitos. Os glicanos constituintes são fracionados química e enzimaticamente, antes de serem extraídos sequencialmente da amostra e imobilizados diretamente em membranas de nitrocelulose. A composição do glicano é determinada pela ligação de sondas moleculares específicas que reconhecem glicanos às moléculas extorquidas e impressas. O MAPP é complementar às técnicas convencionais de análise de glicanos, como análise de monossacarídeos e ligações e espectrometria de massas. No entanto, sondas moleculares que reconhecem glicanos fornecem informações sobre as configurações estruturais dos glicanos, o que pode ajudar a elucidar interações biológicas e papéis funcionais.

Glycans are ubiquitous in all domains of life and exhibit unparalleled diversity in structure and function compared to other macromolecules1. However, due to their complexity, variability in biosynthesis and glycosidic linkages, and the paucity of appropriate methods for dissecting glycan structures, our understanding of this diversity in structures and functions is relatively limited2.
Many glycan analysis techniques are destructive and necessitate the breakdown of glycans into their constituent monosaccharides, which can obscure relevant three-dimensional and biological contexts3. Conversely, monoclonal antibodies (mAbs), carbohydrate binding modules (CBMs), lectins, viral agglutinins, and microbial adhesins, known collectively as glycan-recognizing molecular probes (GRMPs)4, recognize and bind to specific epitopes and can be used as tools to detect and discriminate between glycans within complex multi-glycan matrices5,6.
Here, we present microarray polymer profiling (MAPP), a rapid, versatile, and nondestructive method for glycan analysis that is applicable to a broad spectrum of biological samples. The method aims to provide a robust and high-throughput technology for analyzing glycans from diverse biological and industrial/commercial systems. MAPP unites the recognition specificity of glycan-directed molecular probes with reproducible, high-performance microarray screening technology to allow thousands of molecular interactions to be profiled in parallel. The output of this approach is diagnostic insight into the composition and relative abundance of glycans within a sample or tissue of interest.
MAPP can be used as an independent, stand-alone method, or in conjunction with other biochemical techniques, such as immunofluorescence microscopy7,8,9 and monosaccharide or linkage analysis10,11. The technique can also be used to map epitope specificities of novel GRMPs, using arrays printed with pure and structurally well-defined oligosaccharide standards12. A major advantage of MAPP over other methods, such as enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), is its compatibility with small sample volumes13,14. Moreover, MAPP offers significantly higher-throughput analysis15 and provides an effective form of sample preservation, as printed samples are dry and stable when immobilized onto nitrocellulose16.
The binding of GRMPs is generally dependent on the presence of a number of contiguous sugar residues that collectively form a binding site (epitope) that is unique to a particular polysaccharide class (xylan, mannan, xyloglucan, etc.)17. In contrast, the individual sugar residues (xylose, mannose, glucose) that are quantified using most biochemical techniques, for example monosaccharide composition or methylation analysis, can be components of multiple polysaccharide classes and thus difficult to assign18.
MAPP has been developed in response to a technology gap, namely the ability to rapidly analyze multiple glycans from a variety of sources using small amounts of material. MAPP capitalizes on the extensive repertoire of GRMPs that have been developed and characterized over the last three decades12,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28,29,30,31,32. The development of MAPP has been an iterative process, with the technique being steadily refined and optimized. There is now a substantial body of literature describing the application of MAPP to various natural and industrial systems where glycans play central roles 5,6,9,10,21,33,34,35,36,37,38,39. Here, we describe the current state of the art for MAPP.

Autor em destaque: Protocolo MAPP - Avançando na análise de glicanos 

Perfil de polímero de microarray (MAPP) para análise de glicanos de alto rendimento

Our research focuses on the occurrence functions and structures of complex glycans within diverse domestic, industrial, and commercial systems. Further refinements to non-contact microarray technology and our ability to rapidly access sequence information for carbohydrate binding modules is increasing our capacity to both print and interrogate glycan microarrays. Glycans are challenging to study due to their structural heterogeneity, complexity, and variability in biosynthesis.Many glycan analysis methods necessitate the breakdown of glycans into their constituent monosaccharides. MAPP offers a versatile glycan analysis platform which retains a lot of the important structural 3D information.

O MAPP foi aplicado para determinar a composição glicânica de resíduos de biomassa agrícola, compreendendo cascas de manga de várias variedades do norte da Tailândia, polpa de cereja de Coffea arabica e resíduos do processamento de grãos de café, e tecidos de raiz, caule e folha de alho preto tailandês, Allium sativum var. Vários polissacarídeos de origem vegetal são utilizados na indústria de alimentos como ingredientes funcionais 42,43. Assim, o objetivo deste experimento foi deduzir se esses resíduos agroindustriais, abundantes e atualmente subutilizados, podem fornecer uma fonte de polissacarídeos puros de valor agregado.
O material AIR é rotineiramente empregado na preparação de amostras destinadas à análise glicana44. Existem várias vantagens em usar o AIR; o tratamento com solventes remove efetivamente CAZymes endógenos, metabólitos, pequenos sacarídeos, lipídios e pigmentos, resultando em amostras enriquecidas com polissacarídeos e proteínas estruturais34. Além disso, a produção de AIR é uma maneira rápida e eficaz de aumentar a longevidade da amostra, pois é termoestável e pode ser armazenada por vários anos.
Três frações mistas de glicanos constituintes foram sequencialmente extraídas do material AIR vegetal usando CDTA, NaOH e celulase. CDTA quelatos Ca2+ íons, que permitem a remoção de Ca2+ reticulado pectinas desesterificadas da parede celular vegetal45. Condições alcalinas permitem que predominantemente hemiceluloses, como manana, xilana e β-glucano, sejam liberadas devido à ruptura da ligação de hidrogênio e saponificação de ligações ésteres entre microfibrilas de celulose e hemicelulose, e lignina e hemicelulose, respectivamente46. Uma endo-1,4-β-glucanase recombinante de Bacillus spp foi utilizada para degradar regiões amorfas das microfibrilas estruturais de celulose, liberando glicanos residuais ligados à celulose dentro das paredes celulares47. Embora este método efetivamente separe os glicanos nesses três grandes grupos, deve-se notar que as amostras não são puras; Pela própria natureza do método de extração, a hemicelulose, se presente na amostra, será inevitavelmente extraída e subsequentemente detectada em graus variados nas frações CDTA e celulase. Da mesma forma, alguma pectina será detectada na extração de NaOH se presente na amostra.
Um robô de impressão de microarrays piezoelétricos sem contato foi usado para imobilizar as frações glicânicas extraídas em nitrocelulose via acessório não covalente11, formando 300 microarrays idênticos. Os padrões glicanos definidos (Tabela 1) também foram incluídos nos microarrays impressos como controles positivos (Figura 5). O perfil de ligação do MAPP obtido para os padrões glicanos selecionados corresponde às especificidades de epítopos previamente relatadas. Por exemplo, LM21 exibiu forte ligação a múltiplos mananpolissacarídeos (galactomanana e glucomanana), enquanto LM22 exibiu apenas ligação fraca a galactomanana25. Da mesma forma, LM19 preferencialmente ligado a homogalacturonano48 desesterificado e LM15 ligado a xiloglucano de semente de tamarindo23.
A abundância relativa de 16 epítopos, diagnósticos de polissacarídeos não celulósicos da parede celular vegetal, foi detectada pela ligação de anticorpos monoclonais dirigidos ao glicano (Tabela 2) aos extratos impressos (Figura 6). A maioria dos glicanos extraídos foi detectada dentro da fração alcalina de NaOH. Fortes sinais de ligação foram registrados para mAbs LM10 e LM11, representando xilana/arabinoxilano, dentro das cascas de todas as variedades de manga testadas. Dentro das amostras de alho, LM10 e LM11 ligaram-se preferencialmente ao extrato de tecido radicular (Alho R) e exibiram apenas fraca ligação ao extrato de tecido foliar (Alho L). LM19, representando homogalacturonan parcialmente metil-esterificado ou não-esterificado, ligado fortemente a alguns extratos de variedades de manga (Aokrong e Talabnak), mas ligado apenas fracamente, ou sua ligação foi indetectável, em outras variedades (Chokanan, Mamkamdang, Mahachanok e Nga). Além disso, o LM19 ligou-se apenas às frações da polpa do café e não se ligou ao resíduo do processamento do grão, anteriormente considerado composto de pectina de café semipurificada (dados não publicados).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65443/65443fig01.jpg"> Figura 1: Principais etapas experimentais do método MAPP. (A) As amostras são homogeneizadas para formar pós finos. (B) As amostras homogeneizadas são processadas para isolar seus AIRs. (C) Os glicanos constituintes são extraídos sequencialmente usando um regime de extração personalizado. (D) As frações glicânicas extraídas, tinta e GSB são transferidas para placas de 384 poços, de acordo com o layout da placa, para impressão em nitrocelulose. (E) Os microarrays impressos são sondados com GRMPs selecionados. (F) A ligação do GRMP às frações de glicano impressas é quantificada e analisada antes que os dados sejam apresentados como um mapa de calor. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65443/65443fig01large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65443/65443fig02.jpg"> Figura 2: Exemplo de um layout de placa de 384 poços para carregamento de amostra, tinta e GSB com quatro diluições por amostra/padrão de glicano extraído. Cores diferentes denotam amostras provenientes de diferentes reagentes de extração, enquanto diferentes tonalidades representam diluições seriadas. O primeiro número do código representa o número da amostra, enquanto o número final representa o número de diluição (D1 denota diluição um, D2 denota diluição dois, e assim por diante). Por exemplo, um bem rotulado '12D3' representa a amostra de glicano 12, diluição três. As placas de poço devem ser divididas em oito seções idênticas, compostas por seis colunas e oito linhas. A primeira seção da primeira placa deve conter apenas tinta e tampão e se assemelhar ao layout da placa de exemplo. As amostras de glicano extraídas podem então ser carregadas em seções de placa subsequentes de acordo com o layout da placa. Reagentes de extração diferentes não devem ser carregados na mesma seção da placa. Se não houver amostras suficientes para preencher uma seção inteira, preencha todos os poços restantes nessa seção com tampão; Não deixe nenhum poço vazio. Se forem necessárias várias chapas, a próxima secção após o carregamento de todas as amostras deve conter três colunas alternadas de tinta e GSB - esta pode não ser a secção oito, dependendo do número de amostras que estão a ser impressas. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65443/65443fig02large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65443/65443fig03.jpg"> Figura 3: Representação esquemática do projeto de microarray impresso. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65443/65443fig03large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65443/65443fig04.jpg"> Figura 4: Microarrays representativos. (A) Sem vinculação. (B) O sinal de ligação é obscurecido por um sinal de fundo elevado. (C) Coloração generalizada azul/roxa por supersaturação com NBT/BCIP. (D) Sondagem defeituosa devido à alta concentração de substrato. (E) Impressão defeituosa devido à cabeça de impressão suja. (F) Forte ligação a poucas amostras. (G) Forte ligação a muitas amostras. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65443/65443fig04large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65443/65443fig05.jpg"> Figura 5: Ligação de anticorpos monoclonais aos padrões glicanos definidos, incluídos para validar o processo de impressão e sondagem. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65443/65443fig05large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65443/65443fig06.jpg"> Figura 6: MAPP de glicanos extraídos de resíduos de biomassa agrícola. As amostras incluem resíduos de polpa de café (polpa de café e pectina de café), cascas de manga de várias variedades tailandesas (AO, Aokrong; KO, Márcia; Ribeiro, Rad; CH, Chokanan; MA, Mamkamdang; Ribeiro, Adriano; MH, Mahachanok; NG, Nga) e folhas de alho preto (Alho L), caule (Alho S), bulbo (Alho BG) e raízes (Alho R), utilizando CDTA, NaOH e celulase (Bacillus spp. cellulase 5A). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65443/65443fig06large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
Tabela 1: Padrões de polissacarídeos comerciais definidos usados na análise MAPP como controles positivos. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65443/65443_Table%201.xlsx" target="_blank">Clique aqui para baixar esta tabela.</a>
Tabela 2: Anticorpos monoclonais direcionados ao glicano selecionados para a interrogação de microarrays de glicanos vegetais extraídos. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65443/65443_Table%202.xlsx" target="_blank">Clique aqui para baixar esta tabela.</a>

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Microarray polymer profiling (MAPP) é uma técnica de alto rendimento para análise composicional de glicanos em amostras biológicas.

Microarray polymer profiling (MAPP) is a robust and reproducible approach to systematically determine the composition and relative abundance of glycans ...

Nossa pesquisa se concentra nas funções e estruturas de ocorrência de glicanos complexos dentro de diversos sistemas domésticos, industriais e comerciais. Refinamentos adicionais na tecnologia de microarrays sem contato e nossa capacidade de acessar rapidamente informações de sequência para módulos de ligação de carboidratos estão aumentando nossa capacidade de imprimir e interrogar microarrays de glicano. Os glicanos são difíceis de estudar devido à sua heterogeneidade estrutural, complexidade e variabilidade na biossíntese.Muitos métodos de análise de glicanos requerem a quebra de glicanos em seus monossacarídeos constituintes. O MAPP oferece uma plataforma versátil de análise de glicanos que retém muitas das informações estruturais importantes em 3D.

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Research

JoVE Journal

Biology

Microarray Polymer Profiling (MAPP) for High-Throughput Glycan Analysis

1.0K visualizações.  Newcastle University. Nossa pesquisa se concentra nas funções e estruturas de ocorrência de glicanos complexos dentro de diversos sistemas domésticos, industriais e comerciais. Refinamentos adicionais na tecnologia de microarrays sem contato e nossa capacidade de acessar rapidamente informações de sequência para módulos de ligação de carboidratos estão aumentando nossa capacidade de imprimir e interrogar microarrays de glicano. Os glicanos são difíceis de estudar devido à sua heterogeneidade estrutur...

Vídeo: Autor em destaque: Protocolo MAPP - Avançando na análise de glicanos 

Microarray polymer profiling (MAPP) is a robust and reproducible approach to systematically determine the composition and relative abundance of glycans and glycoconjugates within a variety of biological samples, including plant and algal tissues, food materials, and human, animal, and microbial samples. Microarray technology underpins the efficacy of this method by providing a miniaturized, high-throughput screening platform, allowing thousands of interactions between glycans and highly specific glycan-directed molecular probes to be characterized concomitantly, using only small amounts of analytes. Constituent glycans are chemically and enzymatically fractionated, before being sequentially extracted from the sample and directly immobilized onto nitrocellulose membranes. The glycan composition is determined by the attachment of specific glycan-recognizing molecular probes to the extorted and printed molecules. MAPP is complementary to conventional glycan analysis techniques, such as monosaccharide and linkage analysis and mass spectrometry. However, glycan-recognizing molecular probes provide insight into the structural configurations of glycans, which can aid in elucidating biological interactions and functional roles.

Microarray polymer profiling (MAPP) is a high-throughput technique for compositional analysis of glycans in biological samples.

Biologia

Extraction of Glycan from Alcohol Insoluble Residue

To begin, use a mechanical TissueLyser to shake previously prepared AIR CDTA mixture at 27 hertz for two minutes, followed by 10 hertz for two hours. Next, centrifuge the mixture at 10, 000 G for 10 minutes at four degree Celsius. Transfer the supernatant to a sterile micro centrifuge tube.Finally, add sodium hydroxide and sodium borohydride mixture to the residual pellet. After shaking and centrifuging the pellet, wash the residual pellet two to three times with distilled water. Add 30 microliters per milligram of cellulase to the pellet, then incubate the tubes in a heat block at the enzyme's optimal temperature for 16 hours.Centrifuge the samples and store the supernatant on a rotary shaker. Centrifuge all stored extracts again at 10, 000 G for 10 minutes at four degrees Celsius.

Extração de Glicano de Resíduo Insolúvel em Álcool

Microarray Printing for Glycan Analysis

Begin by preparing a 1 to 20 dilution of black Indian ink and glycerol system buffer, then centrifuge for 10 minutes at 15, 000g at room temperature. Add 40 microliters of ink solution and glycerol system buffer to the first section of the 384 well plate. Now add 25 microliters of glycerol system buffer to all dilution one wells and 40 microliters to all dilution two, three, and four wells.Add 25 microliters of extracted glycan sample to the dilution one wells to dilute the samples in a one-to-one ratio. Serially dilute each sample four times by transferring 10 microliters from the dilution one to the dilution two well, then gently mix using a pipette. Repeat the process by transferring 10 microliters of the sample from the dilution two to the dilution three well.After repeating the process for the dilution four well, discard 10 microliters from it so that all wells have a final volume of 40 microliters. Add 40 microliters of ink solution and glycerol system buffer to the final plate. Then cover the plate with an adhesive cover before centrifuging it for 10 minutes at 3000g at room temperature.To print the samples on the nitrocellulose membrane, start by purging the print head and capillaries multiple times with glycerol system buffer. Initiate a test print run by loading a plate with the buffer alone. To configure the instrument to print directly from the clean buffer reservoir, click on File, followed by New, then choose Print Run.Choose the microplate type and change the slide settings accordingly. Next, change the mini array settings before editing the spot property settings. Click on the Overview tab to view the plate.Finally, under the Options tab, select Using buffer and calculate printing time before allocating file locations to save the file. After saving the location, press on Start Print Run to proceed with the run. While printing extracted glycan samples, program the system as before.Under the Options tab, click on Using source microplates. Finally, save the unique grid file generated for the printed microarray for downstream analysis. Defined glycan standards were also included in the printed microarrays as positive controls.The map binding profile obtained for the selected glycan standards corresponds to previously reported epitope specificities.

Impressão de microarrays para análise de glicanos

Microarray Probing for Glycan Recognition

Begin by cutting out identical printed microarrays from the nitrocellulose membrane and placing them in a suitable vessel for probing. To reduce non-specific binding, add MP-TBST blocking buffer to the microarrays and incubate for one hour on a rotating shaker. After incubation, replace the buffer with fresh MP-TBST.Incubate the arrays with monoclonal antibodies and MP-TBST for two hours on a rotating shaker. After incubation, remove the molecular probe solution. Submerge the arrays fully in clean TBST.Immediately replace the buffer with a fresh volume to remove the residual probe solution. Place the arrays on a rotating shaker for five minutes. Replace the TBST with a fresh buffer volume and place the arrays on the shaker for another five minutes.Next, incubate the arrays with alkaline phosphatase conjugated antibodies for two hours on a rotating shaker. Once incubation is complete and the microarrays have been washed, cover them in nitro blue tetrazolium, and BCIP color development solution to chromogenically detect the antibody binding. Terminate the reaction by immersing the array in clean tap water.Then place the arrays to dry between blotting paper overnight at ambient temperature. The relative abundance of 16 epitopes diagnostic of non-cellulosic plant cell wall polysaccharides were detected by attaching glycan-directed monoclonal antibodies to printed extracts. Most of the extracted glycans were detected within the alkaline sodium hydroxide fraction.Strong binding signals were recorded for LM-10 and LM-11 representing xylan and arabinoxylan within the peels of all the mango varieties tested. LM-10 and LM-11 displayed preferential binding to the garlic root tissue extract, and weak binding to the leaf tissue extract. LM-19 representing partially methylesterified or unesterified homogalacturonan bound strongly to some mango variety extracts and only to the coffee pulp fractions.