Este trabalho foi apoiado pela pesquisa básica JST 2022 (Sociedade Japonesa de Transplante).

O protocolo experimental foi aprovado pelo Comitê de Experimentação Animal da Universidade de Kyoto. O estudo utilizou camundongos C57BL/6, com idade superior a 10 semanas e peso entre 25 g e 30 g, obtidos de uma fonte comercial (ver Tabela de Materiais). Todos os animais foram anestesiados com isoflurano a 2,5% (seguindo protocolos aprovados institucionalmente), mantidos em condições específicas livres de patógenos, e todos os procedimentos experimentais foram conduzidos em conformidade com o Regulamento de Experimentação Animal da Universidade de Kyoto. Os instrumentos apropriados utilizados para o estudo estão listados na Tabela de Materiais e representados na Figura 1 e na Figura 2.
1. Seleção de animais
<ol><li>Use ratos com um peso corporal de 25-30 g. NOTA: Embora os aloenxertos de fígado de camundongo2 sejam geralmente aceitos através da barreira do complexo principal de histocompatibilidade, optamos pelo modelo MOLT singênico neste estudo para focar no mecanismo detalhado da lesão de reperfusão de isquemia fria10. Camundongos com peso inferior a 25 g não são recomendados porque é impossível inserir um stent interno em um ducto biliar fino. Da mesma forma, camundongos com peso superior a 30 g não são recomendados devido à presença de uma grande quantidade de gordura intra-abdominal ao redor dos vasos.</li>
</ol>2. Fabricação de manguitos
<ol><li>Prepare cateteres intravenosos de 20 G e 16 G para PV e IHIVC, respectivamente.</li>
	<li>Usando um bisturi, corte o cateter para criar o manguito. O corpo principal do manguito deve medir 2 mm de comprimento, com uma alça de extensão de 1 mm (Figura 3A). NOTA: Se a alça for muito grande, pode ser um desafio inserir o manguito.</li>
	<li>Na superfície do manguito, crie uma ranhura rasa para fixação da linha usando a parte de trás da lâmina do bisturi. NOTA: Ao aplicar a parte de trás da lâmina do bisturi no manguito, certifique-se de que a ponta da lâmina esteja em um ângulo de aproximadamente 60 graus (conforme mostrado na Figura 3B). Depois de fazer a primeira ranhura, prenda a lâmina do bisturi e gire o manguito. Idealmente, duas ranhuras são recomendadas, mas uma única ranhura pode ser suficiente sem problemas.</li>
</ol>3. Fixação do manguito
<ol><li>Em um recipiente de plástico retangular, coloque pequenos cubos de gelo e posicione um pequeno copo de metal (6 cm de diâmetro) por cima. Encha o copo com fluido de preservação de órgãos (consulte a Tabela de Materiais) e coloque o enxerto singênico dentro.</li>
	<li>Role suavemente o enxerto de fígado singênico (extraído de outro camundongo doador) usando um cotonete, garantindo que a porta hepática esteja voltada para cima. Remova completamente qualquer sangue armazenado no lúmen da VCI com fluido de preservação de órgãos.</li>
	<li>Passe o PV pelo manguito usando um fio preso, por exemplo, à veia esplênica (ver Figura 4A).</li>
	<li>Com a alça do manguito na posição de 12 horas, prenda a alça e o manguito com um bulldog clamp (consulte a Tabela de Materiais), posicionando-o a 2 a 3 mm da borda PV.</li>
	<li>Prenda ainda mais a pinça bulldog usando uma pinça vascular grande e um molde de fixação para estabelecer o campo operatório (ver Figura 4B).</li>
	<li>Inspecione cuidadosamente o lúmen PV com ampliação de aproximadamente 15 a 20x. Se necessário, o gotejamento de água pode aumentar a visibilidade do lúmen.</li>
	<li>Segure suavemente o lúmen PV e exteriorize-o através do manguito.</li>
	<li>Uma vez totalmente exteriorizado, prenda-o com uma ligação dupla usando 8-0 fio de seda ao longo da ranhura do manguito (Figura 4C,D). NOTA: Certifique-se de que a ligadura não esteja solta. Além disso, tome cuidado para que o ponto de ligadura não seja muito grande, pois pode interferir na inserção do manguito. O ponto de ligadura pode ser posicionado em qualquer direção.</li>
	<li>Fixe o manguito ao IHIVC usando um procedimento semelhante ao usado para o VP (Figura 4E). NOTA: Ao pinçar o IHIVC com o manguito, evite morder o parênquima hepático. Como o pescoço é mais curto que o PV, determine cuidadosamente a posição de fixação.</li>
	<li>Crie um nó corrediço passando a linha ao redor da base do IHIVC para ligar temporariamente o IHIVC (Figura 5). Este fio será removido após a reperfusão.</li>
</ol>4. Reconstrução da veia porta
<ol><li>Anestesiar o camundongo receptor induzindo anestesia com isoflurano a 2,5% e reduzi-lo para 0,6% antes de extrair o fígado nativo, conforme descrito na literatura publicada2. Dinsinfectar a área cirúrgica pelo menos três vezes com rodadas alternadas de iodóforo e etanol a 70% antes da laparotomia.</li>
	<li>Certifique-se de que o lobo hepático esteja posicionado corretamente e que o PV balonetado esteja livre de dobras e torções.</li>
	<li>Segure suavemente a borda PV do receptor usando uma pinça Pean e prenda-a com um torno. NOTA: Neste artigo, um torno refere-se a um aparelho mecânico usado para prender a pinça de Pean na mesa. Para obter mais informações sobre o torno, consulte Tabela de materiais.</li>
	<li>Aplique uma pinça vascular no PV do receptor e passe um 8-0 fio de seda em torno dele.</li>
	<li>Crie uma seção circunferencial de 1/4 a aproximadamente 0,5 mm da borda PV (Figura 6A). Amplie o orifício enquanto passa a solução salina pelo lúmen usando um instrumento especializado (uma agulha de 27 G com a ponta cortada e dobrada em forma de L).</li>
	<li>Use uma pinça reta para segurar a alça do manguito e insira-a no lúmen.</li>
	<li>Uma vez totalmente inserido, prenda o manguito com um 8-0 fio de seda. Uma única ligadura é suficiente para a fixação.</li>
	<li>Remova o grampo vascular e reperfunda o fígado.</li>
	<li>Solte cuidadosamente a pinça de Pean e conclua a reconstrução da veia porta. Todo o processo de reconstrução do PV deve levar aproximadamente 5 min.</li>
</ol>5. Reconstrução da veia cava inferior infra-hepática
<ol><li>Posicione o lobo do fígado adequadamente e mova a pinça de Pean presa ao receptor IHIVC dorsal para o lobo inferior direito do enxerto, prendendo-o com um torno.</li>
	<li>Elimine qualquer tecido hepático remanescente ao redor do IVIHC do receptor esfregando suavemente com um cotonete.</li>
	<li>Passe um 8-0 fio de seda ao redor do IVIHC do destinatário.</li>
	<li>Crie uma seção circunferencial de 1/4 a aproximadamente 0.5 mm da borda IVIHC do receptor (Figura 6B).</li>
	<li>Depois de introduzir solução salina normal no lúmen, insira o manguito no lúmen. NOTA: Devido ao pescoço curto, o manguito é frequentemente inserido de forma mais superficial do que no PV.</li>
	<li>Prenda cuidadosamente o manguito com um 8-0 fio de seda e, em seguida, remova a braçadeira vascular e a pinça Pean.</li>
</ol>6. Cuidados pós-operatórios
<ol><li>Utilize uma almofada de aquecimento e uma lâmpada de aquecimento para facilitar a recuperação pós-operatória.</li>
	<li>Monitore continuamente a pressão arterial, frequência cardíaca, frequência respiratória, temperatura corporal, bem como o consumo de alimentos e água.</li>
	<li>Administre injeção subcutânea de carprofeno (5 mg / kg, a cada 6 h ou até que seja necessário) para aliviar a dor pós-operatória. Siga as diretrizes institucionais locais. NOTA: Se a condição dos camundongos se deteriorar, o experimento será interrompido imediatamente e os camundongos serão sacrificados por inalação de dióxido de carbono.</li>
	<li>Para coletar a amostra de tecido, reanestesiar os camundongos e sacrificá-los por um método aprovado pela IACUC.</li>
</ol>

Estratégias para Anastomose Vascular Eficiente em Transplante de Fígado de Camundongo

<ol>
	<li>Qian, S. G., Fung, J. J., Demetris, A. V., Ildstad, S. T., Starzl, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+the+mouse.">Orthotopic liver transplantation in the mouse.</a> Transplantation. 52 (3), 562-564 (1991).</li><li>Yokota, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+mouse+liver+transplantation+to+study+liver+biology+and+allograft+tolerance.">Orthotopic mouse liver transplantation to study liver biology and allograft tolerance.</a> Nat Protoc. 11 (7), 1163-1174 (2016).</li><li>Shen, X. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inflammatory+responses+in+a+new+mouse+model+of+prolonged+hepatic+cold+ischemia+followed+by+arterialized+orthotopic+liver+transplantation.">Inflammatory responses in a new mouse model of prolonged hepatic cold ischemia followed by arterialized orthotopic liver transplantation.</a> Liver Transpl. 11 (10), 1273-1281 (2005).</li><li>Kageyama, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ischemia-reperfusion+injury+in+allogeneic+liver+transplantation:+A+role+of+CD4+T+cells+in+early+allograft+injury.">Ischemia-reperfusion injury in allogeneic liver transplantation: A role of CD4 T cells in early allograft injury.</a> Transplantation. 105 (9), 1989-1997 (2021).</li><li>Li, T., Hu, Z., Wang, L., Lv, G. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Details+determining+the+success+in+establishing+a+mouse+orthotopic+liver+transplantation+model.">Details determining the success in establishing a mouse orthotopic liver transplantation model.</a> World J Gastroenterol. 26 (27), 3889-3898 (2020).</li><li>Tian, Y., R&#252;diger, H. A., Jochum, W., Clavien, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+arterialized+and+nonarterialized+orthotopic+liver+transplantation+in+mice:+Prowess+or+relevant+model.">Comparison of arterialized and nonarterialized orthotopic liver transplantation in mice: Prowess or relevant model.</a> Transplantation. 74 (9), 1242-1246 (2002).</li><li>Steger, U., Sawitzki, B., Gassel, A. M., Gassel, H. J., Wood, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+hepatic+rearterialization+on+reperfusion+injury+and+outcome+after+mouse+liver+transplantation.">Impact of hepatic rearterialization on reperfusion injury and outcome after mouse liver transplantation.</a> Transplantation. 76 (2), 327-332 (2003).</li><li>Chen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+various+techniques+of+mouse+liver+transplantation.">A review of various techniques of mouse liver transplantation.</a> Transplant Proc. 45 (6), 2517-2521 (2013).</li><li>Kojima, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=T+cell+carcinoembryonic+antigen-related+cell+adhesion+molecule+1-T+cell+immunoglobulin+domain+and+mucin+domain-containing+protein+3+cross+talk+alleviates+liver+transplant+injury+in+mice+and+humans.">T cell carcinoembryonic antigen-related cell adhesion molecule 1-T cell immunoglobulin domain and mucin domain-containing protein 3 cross talk alleviates liver transplant injury in mice and humans.</a> Gastroenterology. 165 (5), 1233-1248 (2023).</li><li>Yokota, S., Yoshida, O., Ono, Y., Geller, D. A., Thomson, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liver+transplantation+in+the+mouse:+Insights+into+liver+immunobiology,+tissue+injury,+and+allograft+tolerance.">Liver transplantation in the mouse: Insights into liver immunobiology, tissue injury, and allograft tolerance.</a> Liver Transpl. 22 (4), 536-546 (2016).</li></ol>

Nenhum autor tem conflitos de interesse a divulgar.

Aprender a reconstrução vascular é o aspecto mais desafiador para alcançar o MOLT bem-sucedido. A qualidade do manguito influencia significativamente na dificuldade de reconstrução, dado o pequeno tamanho dos camundongos5. Este artigo fornece um protocolo detalhado para preparação, fixação e reconstrução do manguito.
Embora não haja grandes diferenças em relação aos relatos anteriores em relação à preparação e conexão do man...

O transplante hepático ortotópico de camundongo (MOLT) é um método experimental eficaz relatado pela primeira vez em 19911. Este modelo experimental, que utiliza camundongos geneticamente modificados e vários reagentes de pesquisa, desempenhou um papel fundamental na investigação de lesões de isquemia e reperfusão quentes e frias. No entanto, a alta complexidade técnica do modelo tem dificultado o desenvolvimento da medicina básica para transplante hepático2. O MOLT envolve três etapas principais: (1) recuperação do fígado do camundongo doador, (2) cirurgia na mesa dorsal e (3) implantação do fígado no receptor. Dentre esses procedimentos receptores, a anastomose vascular representa o maior desafio. Enquanto a anastomose da veia cava inferior supra-hepática é tipicamente completada por costura à mão2, a veia cava inferior infra-hepática (IHIVC) e a veia porta (PV) podem ser reconstruídas de forma mais eficiente usando manguitos de plástico no lugar de suturas costuradas à mão.
O período anepático significa o intervalo entre a remoção do fígado nativo do receptor e o implante do enxerto. Para garantir resultados consistentes, é imperativo limitar o tempo anepático a menos de 20 min. Consequentemente, os estudos que empregam esse modelo têm sido confinados a instituições específicas 3,4,5,6,7,8,9. Entre os vários estágios do MOLT, a reconstrução suave de PV e IHIVC é crucial para minimizar o tempo anepático e garantir o sucesso do transplante.
A reconstrução da VP e da VCI é geralmente realizada com manguitos vasculares, uma vez que a técnica do balonete simplifica a anastomose vascular em comparação com as suturas costuradas à mão 2,5,8. A técnica envolvida na preparação do manguito vascular e na fixação segura do manguito afeta significativamente a complexidade da reconstrução vascular do receptor. Nosso objetivo é fornecer orientação visual detalhada para inúmeras dicas técnicas relacionadas ao método do manguito, reduzindo assim a curva de aprendizado. Esses videoclipes fornecerão uma compreensão clara de como prender o manguito aos vasos e reconstruir o PV e o IHIVC durante a cirurgia do receptor.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>16 G intravenous catheter</td>
			<td>TERUMO</td>
			<td>SR-FF2032</td>
			<td>IHIVC cuff</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 G intravenous catheter</td>
			<td>TERUMO</td>
			<td>SR-FF1651</td>
			<td>PV cuff</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>8-0 braid silk</td>
			<td>Natsume Seisakusho</td>
			<td>CR9-80B2</td>
			<td>8-0 silk</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Belzer UW Cold Storage Solution&#160;</td>
			<td>Astellas</td>
			<td></td>
			<td>Organ preservation fluid</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bulldog clamp</td>
			<td>B BRAUN</td>
			<td>FB329R</td>
			<td>Bulldog clamp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C57BL/6 mice&#160;&#160;</td>
			<td>Oriental Bio Service</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane inhalation solution</td>
			<td>Viatris</td>
			<td></td>
			<td>Anesthesic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Blunted Tips 0.1 mm x 0.06 mm&#160;</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>11253-20</td>
			<td>Straight microforceps</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Serrefine Clamp Applicator with Lock</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>18056-14</td>
			<td>Vessel clip applicator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Serrefines&#160;</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>18055-4</td>
			<td>Vessel clip</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>No.11 Spare Blades</td>
			<td>FEATHER Safety Razor</td>
			<td>11</td>
			<td>Blades</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ophthalmic scissor, round handle</td>
			<td>B BRAUN</td>
			<td>FD103R</td>
			<td>Microscissor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic rectangular-shaped container&#160;&#160;</td>
			<td>Daiso</td>
			<td></td>
			<td>10 cm long, 15 cm wide and 6 cm high</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SuperGrip Tips</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>00649-11&#160;</td>
			<td>Curved microforceps</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SZX7</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>SZX7</td>
			<td>Microscope</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

vascular reconstruction with the cuff technique in mouse orthotopic liver transplantation

O transplante hepático ortotópico de camundongos é uma metodologia eficaz para investigar os mecanismos subjacentes da isquemia hepática e lesão de reperfusão. No entanto, os desafios técnicos representam uma barreira para a utilização desse valioso modelo experimental e a transmissão dessas habilidades para a próxima geração. O aspecto mais desafiador desse procedimento é a reconstrução vascular, incluindo a veia porta (VP), a veia cava inferior infra-hepática (IHIVC) e a veia cava inferior supra-hepática. O uso de manguitos de plástico, em vez de suturas, permite uma reconstrução mais suave da VP e da IHIVC. Os vasos são reconstruídos anexando um manguito feito de um cateter intravenoso à ponta do vaso do enxerto e interpondo o manguito no vaso receptor. Os dois aspectos mais cruciais são visualizar adequadamente o lúmen interno do vaso e evitar o uso de força excessiva. Nosso objetivo é fornecer uma visão geral técnica das reconstruções vasculares usando a técnica do manguito na cirurgia do receptor. Espera-se que essas dicas técnicas para a técnica do manguito ajudem os microcirurgiões a facilitar a reconstrução vascular e avançar em suas pesquisas.

Mouse orthotopic liver transplantation (MOLT) is an effective experimental method first reported in 19911. This experimental model, which utilizes genetically modified mice and various research reagents, has played a pivotal role in investigating warm and cold ischemia and reperfusion injuries. However, the model&#39;s high technical complexity has hindered the development of basic medicine for liver transplantation2. MOLT involves three major steps: (1) retrieval of the liver from the donor mouse, (2) back table surgery, and (3) implantation of the liver into the recipient. Among these recipient procedures, vascular anastomosis poses the greatest challenge. While the suprahepatic inferior vena cava anastomosis is typically completed by hand stitching2, the infrahepatic inferior vena cava (IHIVC) and portal vein (PV) can be reconstructed more efficiently using plastic cuffs in place of hand-sewn sutures.
The anhepatic period signifies the interval between the removal of the recipient&#39;s native liver and the graft implantation. To ensure consistent results, it is imperative to limit the anhepatic time to less than 20 min. Consequently, studies employing this model have been confined to specific institutions3,4,5,6,7,8,9. Among the various stages of MOLT, achieving smooth PV and IHIVC reconstruction is crucial for minimizing anhepatic time and ensuring successful transplantation.
PV and IVC reconstruction is generally carried out using vascular cuffs since the cuff technique simplifies vascular anastomosis compared to hand-sewn sutures2,5,8. The technique involved in vascular cuff preparation and secure attachment of the cuff significantly impacts the complexity of recipient vascular reconstruction. Our objective is to provide detailed visual guidance for numerous technical tips related to the cuff method, thereby reducing the learning curve. These video clips will provide a clear understanding of how to attach the cuff to the vessels and reconstruct the PV and IHIVC during recipient surgery.

Autor em destaque: Explorando a isquemia fria e a lesão de reperfusão quente no transplante de fígado gorduroso

Reconstrução Vascular com a Técnica do Manguito no Transplante Hepático Ortotópico de Camundongo

We focus our research on liver transplantation, in particular on cold ischemia and warm reperfusion injury. We use mouse liver transplantation model as a research tool for this purpose. Because the technique is difficult, so it can take a long time to learn and to achieve consistent results.In the future, we'd like to conduct research on fatty liver transplantation. This is still a problem to overcome on clinical liver transplantation.

A reconstrução da VP é bem-sucedida quando, ao despinçar a veia porta, não há tortuosidade e o fígado é perfundido uniformemente. O tempo anepático deve ser inferior a 20 min, pois tempos anepáticos superiores a 25 min aumentam o risco de mortalidade em camundongos. A reconstrução da IHIVC é considerada bem-sucedida se não houver regurgitação sanguínea do enxerto.
O armazenamento do enxerto em temperaturas frias por 1 h com solução de preservação de órgãos resulta em um ...

Watch this Scientific Journal Video about Author Spotlight: Exploring Cold Ischemia and Warm Reperfusion Injury in Fatty Liver Transplantation at JoVE.com

Este protocolo fornece informações técnicas para a reconstrução de vasos usando a técnica do manguito no transplante hepático ortotópico de camundongos.

Mouse orthotopic liver transplantation is an effective methodology for investigating the underlying mechanisms of liver ischemia and reperfusion injury. ...

Concentramos nossa pesquisa no transplante de fígado, em particular na isquemia fria e na lesão de reperfusão quente. Usamos o modelo de transplante de fígado de camundongo como ferramenta de pesquisa para esse fim. Como a técnica é difícil, pode levar muito tempo para aprender e alcançar resultados consistentes.No futuro, gostaríamos de realizar pesquisas sobre transplante de fígado gorduroso. Este ainda é um problema a ser superado no transplante clínico de fígado.

vascular-reconstruction-with-cuff-technique-mouse-orthotopic-liver

Research

JoVE Journal

Medicine

Vascular Reconstruction with the Cuff Technique in Mouse Orthotopic Liver Transplantation

833 visualizações.  Kyoto University. Concentramos nossa pesquisa no transplante de fígado, em particular na isquemia fria e na lesão de reperfusão quente. Usamos o modelo de transplante de fígado de camundongo como ferramenta de pesquisa para esse fim. Como a técnica é difícil, pode levar muito tempo para aprender e alcançar resultados consistentes.No futuro, gostaríamos de realizar pesquisas sobre transplante de fígado gorduroso. Este ainda é um problema a ser superado no transplante clínico de fígado.

Vídeo: Autor em destaque: Explorando a isquemia fria e a lesão de reperfusão quente no transplante de fígado gorduroso

Mouse orthotopic liver transplantation is an effective methodology for investigating the underlying mechanisms of liver ischemia and reperfusion injury. However, the technical challenges pose a barrier to utilizing this valuable experimental model and passing on these skills to the next generation. The most challenging aspect of this procedure is vascular reconstruction, including the portal vein (PV), infrahepatic inferior vena cava (IHIVC), and suprahepatic inferior vena cava. The use of plastic cuffs, rather than sutures, allows for smoother PV and IHIVC reconstruction. Vessels are reconstructed by attaching a cuff made from an intravenous catheter to the tip of the graft vessel and interposing the cuff into the recipient vessel. The two most crucial aspects are properly visualizing the inner lumen of the vessel and avoiding the use of excessive force. Our aim is to provide a technical overview of vascular reconstructions using the cuff technique in recipient surgery. These technical tips for the cuff technique are expected to help microsurgeons facilitate vascular reconstruction and advance their research.

This protocol provides technical information for vessel reconstruction using the cuff technique in mouse orthotopic liver transplantation.

Medicina

Preparation and Attachment of Vascular Cuffs for Syngeneic Liver Grafting

To begin, prepare 16-gauge and 20-gauge intravenous catheters for the portal vein, or PV, and the infra hepatic inferior vena cava, or IHIVC, respectively. Using a scalpel, cut the catheter to create the cuff. Then with the back of the scalpel, create a shallow groove on the cuff's surface for thread fixation.Place small ice cubes in a rectangular-shaped plastic container, and position a small metal cup on top of the container. Fill the cup with organ preservation fluid and place the syngeneic liver graft in it. Under eight to 10 X magnification, gently roll the liver graft using a cotton swab, ensuring that the porta hepatis faces upwards.Thread the PV through the cuff, using a thread attached to the splenic vein. With the cuff handle at the 12:00 position, secure the handle and cuff with a bulldog clamp, positioning it two to three millimeters from the PV edge. Further secure the bulldog clamp using large vascular forceps and a fixation mold to establish the operative field.Next, increase the magnification to 15 to 20 X and carefully inspect the PV lumen. After grasping the PV lumen, externalize the thin wall of PV through the inner lumen of the cuff. Secure the fully externalized PV lumen with a double ligation using 8-O silk thread along the cuff's groove, and then cut the string.Similarly, attach the cuff to the IHIVC lumen, and fix it using 8-O silk thread. Then, to create a slipknot, pass the thread around the base of the IHIVC to temporarily ligate it.

Preparação e Fixação de Manguitos Vasculares para Enxerto Singênico de Fígado

Portal Vein and Infrahepatic Inferior Vena Cava Reconstruction in Mouse Liver Transplantation

After extracting the native liver from the anesthetized recipient mouse, gently grasp the recipient's liver portal vein or PV edge using pen forceps and secure it with a vice. Pass an eight oh silk thread around the PV and place a vascular clamp on it. Create a one fourth circumferential section approximately 0.5 millimeters from the PV edge.While passing saline through the hole, use a specialized instrument to enlarge the hole. Grip the cuff handle using straight forceps and insert it into the lumen. Then secure the cuff with an 8.0 silk thread.Remove the vascular clamp from PV to allow reperfusion of the liver. Finally, carefully release the pen forceps to complete the PV reconstruction. After positioning the liver lobe, Move the pen forceps attached to the recipient IHIVC dorsal to the graft's right lower lobe.Then secure the IHIVC with a vice. Rub away any remaining liver tissue around the recipient's IHIVC with a cotton swab. Pass an 8.0 silk thread around the recipient's IHIVC.Create a one fourth circumferential section, approximately 0.5 millimeters from the recipient's IHIVC edge. After flushing the lumen with saline, insert the cuff into the IHIVC lumen. Carefully secure the cuff with an 8.0 silk thread.Finally, remove the vascular clamp and pen forceps. The preservation of the graft at cold temperatures for one hour resulted in serum alanine aminotransferase levels, averaging approximately 2000 units per liter at six hours post reperfusion. A survival rate of 100%was observed at seven days following transplantation.