Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Method Article
Бисульфит мутагенеза является золотым стандартом для анализа метилирования ДНК. Наш модифицированный протокол позволяет для анализа ДНК метилирования на уровне одной клетки и была специально разработана для отдельных яйцеклеток. Она также может быть использован для расщепления стадии эмбриона.
Epigenetics encompasses all heritable and reversible modifications to chromatin that alter gene accessibility, and thus are the primary mechanisms for regulating gene transcription1. DNA methylation is an epigenetic modification that acts predominantly as a repressive mark. Through the covalent addition of a methyl group onto cytosines in CpG dinucleotides, it can recruit additional repressive proteins and histone modifications to initiate processes involved in condensing chromatin and silencing genes2. DNA methylation is essential for normal development as it plays a critical role in developmental programming, cell differentiation, repression of retroviral elements, X-chromosome inactivation and genomic imprinting.
One of the most powerful methods for DNA methylation analysis is bisulfite mutagenesis. Sodium bisulfite is a DNA mutagen that deaminates cytosines into uracils. Following PCR amplification and sequencing, these conversion events are detected as thymines. Methylated cytosines are protected from deamination and thus remain as cytosines, enabling identification of DNA methylation at the individual nucleotide level3. Development of the bisulfite mutagenesis assay has advanced from those originally reported4-6 towards ones that are more sensitive and reproducible7. One key advancement was embedding smaller amounts of DNA in an agarose bead, thereby protecting DNA from the harsh bisulfite treatment8. This enabled methylation analysis to be performed on pools of oocytes and blastocyst-stage embryos9. The most sophisticated bisulfite mutagenesis protocol to date is for individual blastocyst-stage embryos10. However, since blastocysts have on average 64 cells (containing 120-720 pg of genomic DNA), this method is not efficacious for methylation studies on individual oocytes or cleavage-stage embryos.
Taking clues from agarose embedding of minute DNA amounts including oocytes11, here we present a method whereby oocytes are directly embedded in an agarose and lysis solution bead immediately following retrieval and removal of the zona pellucida from the oocyte. This enables us to bypass the two main challenges of single oocyte bisulfite mutagenesis: protecting a minute amount of DNA from degradation, and subsequent loss during the numerous protocol steps. Importantly, as data are obtained from single oocytes, the issue of PCR bias within pools is eliminated. Furthermore, inadvertent cumulus cell contamination is detectable by this method since any sample with more than one methylation pattern may be excluded from analysis12. This protocol provides an improved method for successful and reproducible analyses of DNA methylation at the single-cell level and is ideally suited for individual oocytes as well as cleavage-stage embryos.
День 1
Подготовьте следующие решения свежий в день яйцеклетки коллекции стерильной дистиллированной воды, таких как вода GIBCO. Чтобы снизить вероятность загрязнения ДНК, изменить перчатки часто и использовать фильтр советы. Хранить трубы под углом же, когда открыты, и резюмировать все трубы, когда они не используются. Мы рекомендуем, что решения принимаются, как N +1.
3% агарозном LMP
30 мг низкую температуру плавления (LMP) агарозном
до 1 мл GIBCO H 2 O
растворяют при 70 ° C
Лизис решения
8 мкл буфера для лизиса
1 мкл протеиназы К
1 мкл 10% Igepal
место на льду, пока готов к использованию
2:01 агарозы: Лизис решения (10 мкл в отдельные ооциты, сумма составляет 3 ооцитов)
20 мкл 3% агарозном LMP
10 мкл Решение Лизис
смешивать при 70 ° C
SDS LySIS буфера (501 мкл на отдельные ооциты)
1x TE рН 7,5 | 450 мкл |
10% SDS | 50 мкл |
Протеиназы K | 1 мкл |
501 мкл |
1. Коллекция ооцитов
2. Агарозном вложения и Лизис
ДЕНЬ 2
Подготовьте следующие решения свежий в день бисульфит мутагенеза. Чтобы уменьшить возможность загрязнения ДНК, изменить перчатки часто и использовать фильтр советы. Хранить трубы под углом же, когда открыты, и резюмировать все трубы, когда они не используются. Мы рекомендуем, что решения принимаются, как N +1.
3 М NaOH | 2,4 г NaOH в 20 мл автоклавного DDH 2 O |
0,1 М NaOH | 0,5 мл 3М в 14,5 мл автоклавного DDH 2 O |
0,3 М NaOH | 1,5 мл 3М в 13,5 мл автоклавного DDH 2 O |
2,5 М бисульфит решение
Когда полностью растворяются, перемешать раствор (а) и (б)
* Хранить вдали от света *
3. Бисульфит мутагенеза
4. 1-й и 2-го Круглого ПЦР-амплификации
10 мкМ Primer вперед космическом | 0,5 мкл |
10 мкМ Primer обратной космическом | 0,5 мкл |
240 нг / мл тРНК | 1 мкл |
H 2 O | 13 мкл |
Добавить в Illustra прет-а-К Горячий старт ПЦР бисера
Аккуратно вставьте твердый шарик агарозы в ПЦР-пробирку (~ 10 мкл)
Нагреть до 70 ° C и смесь
Добавить 25 мкл минерального масла
Всего: 50 мкл
10 мкМ Primer вперед Внутренние | 0,5 мкл |
10 мкМ Primer обратной Внутренняя | 0,5 мкл |
H 2 O | 19 мкл |
Добавить в Illustra прет-а-К Горячий старт ПЦР бисера
Добавьте 5 мкл 1-й Круглый продукт в качестве шаблона. Нагрейте 1-й тур продукта до 70 ° С в течение 1 минуты, чтобы смягчить агарозы. Будьте уверены, чтобы пипеткой под слоем минерального масла.
Добавить 25 мкл минерального масла
Всего: 50 мкл
Примечание: Вложенные последовательности грунт для Snrpn, H19 и Peg3 может быть найдено в Маркет-Velker и др. 1012.
2-й Круглый продукт | 4 мкл |
Рестрикции | 1 мкл |
Буфер | 1 мкл |
H 2 O | 4 мкл |
5. Т.А. Клонирование и колонии PCR
2-й Круглый ПЦР | 1 мкл |
pGEMT-EASY вектор | 1 мкл |
Лигазы | 1 мкл |
H 2 O | 2 мкл |
2x буфера лигирования | 5 мкл |
Инкубируйте ночь при 4 ° С в ПЦР машины.
20 мкМ M13 Прямой праймер | 0,7 мкл |
20 мкМ M13 обратного праймера | 0,7 мкл |
5X Зеленый Go Taq буфер | 7,0 мкл |
10 мМ дНТФ | 0,7 мкл |
Taq ДНК-полимеразы | 0,28 мкл |
H 2 O | 25,62 мкл |
35 мкл Всего |
Добавить 35 мкл колонии PCR Master Mix в ПЦР-пробирку. Выберите белый бактериальных колоний от пластины с кончика пипетки, и закружить в реакции ПЦР.
6. Представитель Результаты
В нашей работе мы запечатлены анализа метилирования в отдельных ооцитов и эмбрионов (рис. 1). После вложенный ПЦР использованием бисульфита превращается грунтовки, можно подтвердить успешный переход к визуализации правильный размер фрагмента на агарозном геле (рис. 2). Отдельные яйцеклеткипредставляет собой один родительский аллель, и в теории, имеет один запечатлел метилирования. Таким образом, второй раунд ПЦР-продукты могут быть проверены на непреднамеренного загрязнения. Рестрикции чувствительны к метилирования ДНК (например, HinfI или DpnII) могут быть использованы, чтобы переварить второй раунд ПЦР-продукт оценить, насколько он содержит метилированные или неметилированной аллели (рис. 3). Метилированных C в последовательности ферментов расщепляется признания в то время как неметилированной C, который преобразуется в T больше не признаются фермента и режиссерский. Любой образец MII яйцеклетки, содержащие как метилированные и неметилированной аллелей должны быть отброшены, так как это свидетельствует о кучевых клетки загрязнения (рис. 3). После перевязки и преобразования, успешно колонии ПЦР-амплификации могут быть визуализированы в агарозном геле для обеспечения образцы правильного размера продукта направляются для секвенирования (рис. 4). Наконец, последовательность из пяти отдельных слте из ооцитов MII должны произвести пять одинаковых моделей метилирования и одинаковые nonCpG конверсии (рис. 5а). Любые образцы, которые содержат более чем один шаблон должен быть уничтожен (рис. 5б). С овулировавших ооцитов MII два хромосомы копии или прилагаемой полярное тельце, есть возможность получения двух одинаковых моделей последовательность (рис. 5в). Мы рекомендуем отбросить данные из яйцеклеток, которые имеют весьма разнородные модели метилирование с загрязнением кучевые клетка не может быть исключена.
Рисунок 1. Схема единого анализа бисульфит мутагенеза яйцеклетки.
Рисунок 2. Представителю результаты 2-го тура для усиления Snrpn от поютле MII ооцитов на 1,5% агарозном геле. Дорожки 1-4 четырех отдельных ооцитов MII и переулок 5 отрицательного контроля (не яйцеклетки). Ожидаемый размер ампликона Snrpn 420 базисных пунктов. L, лестницы.
Рисунок 3. Представитель результаты 2-го тура метилирования конкретных ограничений для пищеварения Snrpn из одной яйцеклетки MII на 8% акриламида гель. HinfI диагностических пищеварения ограничение показывает неметилированной ДНК, которые таит в себе т, что отменяет ограничение сайта (420bp, переулок 1) или метилированных ДНК, которая содержится в C сайт узнавания (вырезать, 262, 103 и 54 б.п., дорожка 2). Пищеварение показывая и метилированных и неметилированной сайты рестрикции (сокращения и режиссерский полосы, полоса 3) свидетельствуют о кучевых загрязнения клетки. L, лестницы.
Рисунок 4. Представитель результаты колонии для ПЦР-амплификации Snrpn из одной яйцеклетки MII на 1,5% агарозном геле. Ожидаемый размер ампликонов после перевязки Snrpn в pGEM-T Easy вектор и использовании M13 прямого и обратного праймеров составляет 656 базисных пунктов. Лейн 1-8 ампликонов из клонов 1-8. Клон 5 имеет неправильный размер ампликона и не должны быть направлены для секвенирования.
Рисунок 5. Представитель последовательности результатов Snrpn из одной яйцеклетки MII. Snrpn метилируется в ооциты. Черные кружки метилированных CpGs. Белые кружки неметилированной CpGs. CpG количество и расположение является репрезентативной для B6 деформация женских мыши. а) Ожидаемые результаты секвенирования Snrpn из одной яйцеклетки MII. Только одна нить ДНК должны усилить во всех пяти клонов. Яйцеклетки с одним метилирования и одинаковые, не CpG преобразования скороговоркойп. должны быть включены в анализ (процент конверсии, не CpGs указано право рассчитывался как количество не-CpG цитозина в тимин превращается в процентах от общего числа не-CpG цитозина). б) Последовательность результатов Snrpn из одной яйцеклетки MII с кучевые загрязнения клетки. Обратите внимание на различие между метилирование государства и преобразования модели указывает несколько усиление цепи. в) Последовательность результатов Snrpn из одной яйцеклетки MII с обеих хромосом копии или полярные включения тела.
Это один анализ ооцитов содержит много шагов, число которые имеют решающее значение и требуют особого ухода. Первый яйцеклетки стирки. Это особенно важно мыть каждую яйцеклетку несколько раз в свежей среде падает после гиалуронидазы лечение, чтобы удалить как многие клетки кучевые на?...
Авторы не имеют ничего раскрывать.
Эта работа была поддержана в Университете Западного Онтарио, кафедра акушерства и гинекологии, а также грант ER06-02-188 от исследований и инноваций Ministryof, ранний премии научный сотрудник. MMD была поддержана Программой CIHR Обучение в репродукции, раннему развитию и воздействие на здоровье (REDIH) Высшее стипендии.
Таблица специфических реагентов и оборудования.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Название реагента | Компания | Номер по каталогу | Комментарии |
Коллекция ооцитов | |||
Гиалуронидаза | Сигма | H4272 | |
Кислотные Тироде | Сигма | T1788 | |
Протеиназы K | Сигма | P5568 | |
10% Igepal | Bioshop | NON999.500 | |
Лизис решения | |||
Трис, рН 7,5 | Bioshop | TRS001.5 | |
LiCl | Сигма | L9650 | И яBSP; |
EDTA рН 8,0 | Сигма | E5134 | |
КРЫШКИ | Bioshop | LDS701.10 | |
DVB-T | Invitrogen | P2325 | |
SDS буфере для лизиса | |||
ТЕ рН 7,5 | Bioshop (Трис) Sigma (ЭДТА) | TRS001.5 E5134 | |
10% SDS | Bioshop | SDS001.500 | |
Бисульфит преобразования | |||
Едкий натр | Сигма | S8045 | |
Натрий Hydrogensulfite (бисульфит натрия) | Сигма | 243973 | ; |
Гидрохинон | Сигма | H9003 | |
Низкую температуру плавления (LMP) агарозном | Сигма | A9414 | |
Минеральное масло | Сигма | M8410 | |
М2 среднего | Сигма | M7167 | |
GIBCO дистиллированная вода | Invitrogen | 15230-196 | |
Автоклавного бидистиллированной (день) воды | |||
ПЦР | |||
Illustra Hot Start Mix RTG | GE Healthcare | 28-9006-54 | |
240 нг / мл дрожжевой тРНК | Invitrogen | 15401-011 | |
5x Зеленый Реакция GoTaq буфер | Замега | M7911 | |
Внутренняя и внешняя вложенных грунтовки | Сигма | ||
Перевязка | |||
Promega pGEM-T Easy векторного | Fisher Scientific | A1360 | |
TA Cloning | |||
Компетентные клетки E.coli | Zymo исследований корпорации | T3009 | |
Оборудование | |||
Препаровальная лупа | |||
70 ° C и 90 ° C тепла блоки | |||
37 ° C и 50 ° C Waterbaths (42 ° C для преобразования) | |||
Рокер | |||
ПЦР машины |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены